植物氧化应激活性氧单线态氧气比色法定量检测试剂盒产品说
氧化应激的指标
氧化应激的指标
氧化应激的指标有很多，以下列出了一些常见的指标：
1. ROS（Reactive Oxygen Species，活性氧）：活性氧是氧化应激的主要物质，可以通过荧光染料或自由基捕捉剂等方法检测。
2. MDA（Malondialdehyde，丙二醛）：MDA是膜脂过氧化反应的产物，是氧化应激的重要指标之一，可以通过比色法或荧光法检测。
3. SOD（Superoxide Dismutase，超氧化物歧化酶）：SOD是一种重要的抗氧化酶，可以检测SOD的活性或基因表达水平来评估氧化应激的程度。
4. CAT（Catalase，过氧化氢酶）：CAT也是一种重要的抗氧化酶，可以检测其活性或基因表达水平来评估氧化应激的程度。
5. GSH（Glutathione，谷胱甘肽）：GSH是一种重要的抗氧化剂，可以通过比色法或荧光法等方法检测。
6. 线粒体膜电位（Mitochondrial membrane potential，MMP）：MMP是线粒体功能的重要指标，氧化应激可改变MMP，可通过荧光染料检测。
7. DNA氧化损伤：DNA氧化损伤是氧化应激的重要标志之一，可以通过单核苷酸多态性（Single Nucleotide Polymorphism，SNP）或8-OHdG 等指标检测。
8. 炎症因子：氧化应激可引起炎症反应，相关炎症因子如TNF-α（Tumor Necrosis Factor-α）和IL-6（Interleukin-6）等可以作为氧化应激的指标之一。
活性氧检测试剂盒 说明书
活性氧检测试剂盒 Reactive oxygen species assay kit
货号：CA1410
规格：100-500T
产品内容：
10 mM DCFH-DA in DMSO 活性氧供体 说明书
0.1 ml 1 ml 1份
20 ºC 保存 20 ºC 保存
产品简介：
活性氧(Reactive oxygen species, ROS) 包括超氧自由基、过氧化氢、及其下游产物过氧化物和羟化
物(O2•−, H2O2, •OH, ONOO−, •NO)等，参与细胞生长增殖、发育分化、衰老和凋亡以及许多生理和病理过
程。采用 2,7-dichlorofluorescin diacetate (DCFH-DA)是迄今常用也是较灵敏的细胞内活性氧检探针。
DCFH-DA 没有荧光，进入细胞后被酯酶水解为 dichlorofluorescin (DCFH)。在活性氧存在时 DCFH 被氧化
3. PBS 洗涤细胞 2 次。 三、荧光检测
采用荧光显微镜、激光共聚焦显微镜图像检测照相，绿色荧光强度代表活性氧水平。也可进行微板荧 光分析仪(multiwell fluorescence plate reader)实时或每 10 分钟分时逐点检测荧光强弱。对于流式细 胞仪可将细胞用胰酶消化 PBS 洗涤后重悬检测。
1. 加入 DCFH-DA 于培养基，推荐初始工作浓度为 10 µM。对不同的细胞和处理，DCFH-DA 工作浓度可 为 100 nM~20 µM，需进行预实验确定合适的浓度。总体稀释倍数应在 1:500~1000 以上以避免 DMSO 对细胞 的影响。以 DMSO 作为溶剂对照。
2. 37 ºC 孵育细胞 30min~至几个小时，通常 30-60min 即可。孵育时间长短与细胞类型、刺激条件、 DCFH-DA 浓度有关。
活性氧（ROS）测定试剂盒说明书
②、波长设置：最佳激发波长 500(50015nm)，最佳发射波长 525 (53020 nm)。也可按照 FITC 荧光检
测条件检测。 ③、结果以荧光度值表示。
四、细胞样本操作步骤：（可用激光共聚焦显微镜观察，也可用于流式细胞仪、荧光酶标仪、荧光分光度 计测定）
二、试剂组成及保存： 1、0.1ml 10mM DCFH-DA in DMSO，20℃保存。 2、1ml 活性氧供氢体，4-8℃保存。
三、组织样本操作步骤：（可用激光共聚焦显微镜观察，也可用于流式细胞仪、荧光酶标仪、荧光分光度 计测定）
1、单细胞悬液制备： 方法 1、采用单细胞悬液制备仪制备单细胞悬液。 方法 2、酶消化法： 方法 3、机械法（网搓法）：
本试剂盒仅用于科研实验
1、直接将探针加入培养液中： ①、直接将 DCFH-DA 探针加入无血清培养基中：一般按照 1 ：1000 用无血清培养液稀释 CFH-DA。加入的体积以能充分盖住细胞为宜， 通常对于 6 孔板的一个孔加入稀释好的 DCFH-DA 不少于 1ml。 ②、取一份不加探针，只加入培养基的细胞设为阴性对照管。阳性对照管：取一份已加入探针的细胞，同 时加入活性氧供氢体诱导细胞，推荐该试剂的工作浓度为 20～100µM。 ③、37℃孵育细胞 30min～几小时，通常为 30～60min 即可，孵育时间长短与细胞类型、刺激条件、DCFH-DA 浓度有关。一般阳性对照在刺激细胞 30 分钟左右，即可观察到明显的绿色荧光。 ④、吸去培养液，利用无血清培养液或者 0.01MPBS 反复吹打，肉眼观察瓶底由半透明(细胞单层连接成 片)转为透明，细胞层几乎全部吹打到 PBS 中。 ⑤、将细胞悬液全部收集到 1.5ml 离心管中。用无血清培养液或者 PBS 洗涤 2 次，以充分去除未进入细 胞内的 DCFH-DA。1000rpm/min，5min，吸净上清后加入 PBS 重新悬浮细胞进行测定。
植物过氧化氢(H2O2)说明书
本文由上海哈灵生物科技有限公司提供上海哈灵试剂供应商感谢您阅读本文植物过氧化氢(H2O2)酶联免疫分析(ELISA)试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的：本试剂盒用于测定植物组织，细胞及相关液体样本中过氧化氢(H2O2)的含量。
实验原理：本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中植物过氧化氢(H2O2)水平。
用纯化的植物过氧化氢(H2O2)抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入过氧化氢(H2O2)，再与HRP标记的过氧化氢(H2O2)抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物TMB显色。
TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。
颜色的深浅和样品中的过氧化氢(H2O2)呈正相关。
用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），通过标准曲线计算样品中植物过氧化氢(H2O2)浓度。
试剂盒组成：样本处理及要求：1. 组织标本：切割标本后，称取重量。
加入一定量的PBS，PH7.4。
用液氮迅速冷冻保存备用。
标本融化后仍然保持2-8℃的温度。
加入一定量的PBS（PH7.4），用手工或匀浆器将标本匀浆充分。
离心20分钟左右（2000-3000转/分）。
仔细收集上清。
分装后一份待检测，其余冷冻备用。
2. 标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。
若不能马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融.3. 不能检测含NaN3的样品，因NaN3抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。
操作步骤：1.标准品的稀释与加样：在酶标包被板上设标准品孔10孔，在第一、第二孔中分别加标准品100μl，然后在第一、第二孔中加标准品稀释液50μl，混匀；然后从第一孔、第二孔中各取100μl分别加到第三孔和第四孔，再在第三、第四孔分别加标准品稀释液50μl，混匀；然后在第三孔和第四孔中先各取50μl弃掉，再各取50μl分别加到第五、第六孔中，再在第五、第六孔中分别加标准品稀释液50ul，混匀；混匀后从第五、第六孔中各取50μl分别加到第七、第八孔中，再在第七、第八孔中分别加标准品稀释液50μl，混匀后从第七、第八孔中分别取50μl加到第九、第十孔中，再在第九第十孔分别加标准品稀释液50μl，混匀后从第九第十孔中各取50μl弃掉。
植物过氧化物酶(POD)检测试剂盒(愈创木酚比色法)说明书
检测试剂盒(愈创木酚比色法)说明书
4ml预冷的PODLysisBuffer研磨或匀浆，4 POD粗提液，-20℃冻存，用于过氧化物酶的
A测定0=加入PODAssaybuffer工作液后立即测定的测定孔吸光度值t=反应时间(min)=3
注意事项：
1、待测样品中不能含有酶抑制剂，同时需避免反复冻融。
2、POD酶液提取时注意低温操作，防止酶活性。
3、以煮沸的酶液为对照时，酶要充分失活。
4、POD氧化剂和POD终止液具有一定腐蚀性，请小心操作。
5、POD氧化剂易挥发，请密闭保存，否则检测效率下降。
6、如果没有分光光度计，也可以使用普通的酶标仪测定，每次检测指标不宜过多，否则操作时间不一，有可能导致样本间的差异。
7、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
细胞内氧化应激活性氧ROS初级荧光测定试剂盒产品说明书中文版主要用途
细胞内氧化应激活性氧（RoS）初级荧光测定试剂盒产品说明书（中文版）主要用途细胞内氧化应激活性氧（ROS）初级荧光测定试剂是一种旨在通过透膜荧光染色剂二氯荧光乙酰乙酸盐，在细胞氧化条件下，产生荧光，来定量检测细胞内活性氧族的生成和增加的权威而经典的技术方法。
该技术由大师级科学家精心研制、成功实验证明的。
可以被用于细胞凋亡、信号传递、衰老、代谢和营养学等的研究。
产品严格无菌，即到即用，操作简易，活体检测，性能稳定。
技术背景超氧自由基阴离子（superoxideradica1：O2）＞过氧化氢（hydrogenperoxide；H2O2）、羟自由基或氢氧基（hydroxy1radica1：0H）、过氧化基（peroxy1radica1；R00'氢过氧自由基Chydroperoxy1;H00烷氧自由基（a1coxy!radica1）.氮氧基（niiricOxide；NO）、过氧亚硝基阴离子（PeroXyniIri1eanion；ONOO）次氯酸（hyρoch1orousacid；HoC1）、半酸自由基（semiquinoneradica1单线态氧气（Sing1etoxygen）等细胞内活性氧族（ReaciiveOxygenSpecies;ROS）的产生和增多，将导致细胞哀老或凋亡。
2,,7-二氯荧光乙酰乙酸盐（2'.7idich1orof1uOreSCeindiaCe1ate,DCFH-DA）一种完全自由通过细胞膜的染色剂。
一旦被过氧化氢、过氧化基、过氧亚硝基阴离子等氧化，便产生荧光。
据此测定细胞内活性氧族的浓度。
产品内容清理液（Reagen1A）亳升染色液（Reagen1B）微升稀释液（Reagen1e）亳升保存液（Reagen1D）受升产品说明书1份保存方式保存染色液（Reagen1B）在一20七冰箱里，严格避免光照；其余的保存在4C冰箱里，有效保证12月用户自备胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液（GMS12024）：用于细胞脱离完全细胞培养液（GMSI2052）：用于细胞操作所需的培养基15亳升锥形离心管：用于细胞操作的容器15亮升离心管：用于细胞染色的容器血细胞计数仪：用于细胞计数台式离心机：用于沉淀细胞细胞流式仪：用于细胞荧光分析（共聚焦）荧光显微镜：用于观察荧光细胞荧光分光光度仪或衡标仪：用于定量检测荧光细胞实验步骤一、间接法实验开始前，将一20℃冰箱里的试剂盒中的染色液（ReagentB）置入冰槽里融化，稀释液（ReagentC）放进37°C恒温水槽里预热。
活性氧检测试验方案
活性氧检测试验方案活性氧检测是一种用于评估物质或生物体中产生的活性氧（ROS）水平的方法。
ROS是一类极具活性的氧化物质，可在正常细胞代谢中产生，并参与多种生理过程。
然而，当ROS的产生超过细胞的抗氧化能力时，就会导致氧化应激，对细胞和组织造成损害，并与一系列疾病的发生和发展相关。
为了测量活性氧的水平，可以使用一系列的试剂和方法。
以下是一个可能的活性氧检测实验方案：实验材料：1.活体组织样本（例如细胞培养物、小鼠肝脏组织等）2.PBS缓冲液3.DCFDA（二氟荧光二乙酸盐）染料溶液4.活性氧产生剂（例如H2O2）5.抗氧化剂（例如维生素C）6.血红素（免疫染色用）实验步骤：1.准备工作：a.将DCFDA溶液按照说明书的要求稀释到适当的浓度。
b.用PBS缓冲液洗涤和预处理样本，去除可能影响实验结果的其他物质。
2.观察基础水平：a.取一小部分样本，不加任何试剂，放入显微镜观察台下。
b.使用适当的增强型荧光显微镜观察样本的荧光强度和分布。
3.活性氧产生实验：a.取适量的样本放入显微镜观察台下。
b.添加一定浓度的活性氧产生剂（例如H2O2），混匀。
c.立即在显微镜观察荧光信号的变化。
d.记录荧光信号的强度和分布。
4.抗氧化剂实验：a.取适量的样本放入显微镜观察台下。
b.添加一定浓度的抗氧化剂（例如维生素C），混匀。
c.立即在显微镜观察荧光信号的变化。
d.记录荧光信号的强度和分布。
5.数据分析：a.使用图像分析软件测量荧光信号的平均强度和荧光染色的面积。
b.对每个样本的数据进行统计分析，如平均值、标准误差等。
c.使用统计学方法（如t检验或方差分析）比较不同处理组之间的差异。
总结：通过以上步骤，可以获得活性氧的水平，评估其在不同条件（如活性氧产生剂和抗氧化剂的存在与否）下的变化。
这个实验方案可以用于研究活性氧在细胞和组织中的作用，以及评估抗氧化剂的功效。
活性氧种类的检测和应用研究
活性氧种类的检测和应用研究随着人们对健康、环境和生物学等领域的研究逐渐加深，活性氧种类的检测和应用研究也越来越受到关注。
活性氧种类是一类强氧化剂，是生物学和医学中的重要指标。
本文将介绍活性氧种类的检测方法及其应用研究。
一、活性氧种类的检测方法1、荧光分析法荧光分析法是一种常用的活性氧种类检测方法。
此方法可用于检测各种活性氧种类，包括超氧自由基、羟自由基、过氧化氢和单线态氧等。
该方法的原理是利用荧光探针，在活性氧种类的作用下发生化学反应，导致荧光强度发生变化，从而可以间接测量样品中活性氧种类的含量。
2、化学法化学法是一种基于氧化还原反应的活性氧种类检测方法。
常用的方法包括铁离子还原法、硝酸盐还原法和硫代巴比妥酸法等。
这些方法原理相似，是通过反应与活性氧种类发生还原反应，并产生可测量的化合物来间接测量活性氧的含量。
3、电化学法电化学法是利用电化学技术来检测活性氧种类的含量。
该方法可以分为两种：一种是利用氧电极来测量活性氧种类的含量，另一种是利用循环伏安法和线性扫描伏安法等技术对活性氧种类进行检测。
电化学法具有灵敏度高、可重复性好的特点，成为了活性氧种类检测的重要手段之一。
二、活性氧种类的应用研究1、生物学研究活性氧种类常常被用于生物学研究中。
在生物体内，活性氧种类的产生和去除平衡对细胞功能和健康至关重要。
例如，自由基在细胞内参与许多生理和病理过程，红细胞及其它体细胞在某些疾病中会大量产生活性氧种类，导致细胞损伤和组织器官崩溃。
因此，研究活性氧种类的生物学效应与作用机制，为探索生物体的生理与病理机制提供了有力的工具。
2、医学应用活性氧种类的产生与病理过程和某些疾病密切相关，如心血管疾病、肿瘤等。
现在，活性氧种类的检测已经成为一种常见的生物学检测手段，是诊断和治疗许多疾病的重要方法。
3、环境监测活性氧种类在环境污染和环境保护中也发挥着重要作用。
例如，活性氧种类可以导致大气污染、水源污染以及土壤的腐蚀和酸化等，因此对于环境中活性氧种类的监测和控制也变得尤为重要。
动物细胞氧化应激活性氧（ROS）光泽精化学发光法定量检测试剂盒说明书
动物细胞氧化应激活性氧(ROS)光泽精化学发光法定量检测试剂盒说明书一、检测原理动物细胞氧化应激活性氧(ROS)光泽精化学发光法定量检测试剂盒是血液卵磷脂胆固醇乙酰转移酶(LCAT)活性比色法定量检测试剂是一种旨在通过非界面性的水溶性单体底物，在磷脂酶或乙酰转移酶的水解下，其释放的产物发生吸收峰值的变化，即采用比色法来测定血液样品中酶活性的权威而经典的技术方法。
该技术经过精心研制、成功实验证明的。
其适用于各种血液样品(动物、人体等)卵磷脂胆固醇乙酰转移酶的活性检测。
产品严格无菌，即到即用，操作简捷，性能稳定。
二、样品收集、处理及保存方法血液样品分为耳静脉采血、颈静脉采血、前腔静脉采血、心脏采血、翅静脉采血，应根据工作实际选择合适的采血方式。
全血样品是在样品中加抗凝剂，可用0.1%肝素、阿氏液、3.8%枸橼酸钠。
我们通常做免疫效果抗体检测需要血清，血液在采集后室温静置2小时以上，冬季需要加温，高速离心，或者4度过夜，抽取血清。
注意事项：1每份样品一定按要求采够量，比如禽血清一般要求不少于0.5毫升，猪血清一般要求不少于1毫升。
2血清样品要清亮、无溶血、无变质。
3样品容器上贴详细标签4尽量防止或避免反复冻融。
组织样品：采集的每个组织块要单独放一个已消毒的容器内，贴详细标签，防止组织间相互污染，注意消毒，以防散毒。
做好个人防护。
分泌物和排泄物：常用的就是禽流感咽喉拭子和泄殖腔拭子的采集。
容器中首先放入含有抗菌素的PH值为7.0-7.4的PBS液，原则上咽喉、泄殖腔拭子分别放置。
抗生素的浓度为青霉素2000IU/ml,链霉素2mg/ml,庆大霉素(卡那霉素)50ug/ml,制霉菌素10000IU/ml,粪便和泄殖腔拭子所用的抗生提高5倍。
加入抗生素后应调整PH值至7.0-7.4。
粪便样品：常用的是禽流感野鸟粪便的采集，注意样品一定为新鲜粪便。
皮肤样品三、储存条件14℃或-20℃四、试剂盒内容标准品样本稀释液检测抗体-HRP20×洗涤缓冲液底物A底物B终止液说明书自封袋五、操作方法1. 从室温平衡20min 后的铝箔袋中取出所需板条，剩余板条用自封袋密封放回4℃。
活性氧的检测方法
活性氧的检测方法活性氧（reactive oxygen species，ROS）是指一类具有高度活性的氧气衍生物，包括超氧阴离子（superoxide anion，O2·-）、过氧化氢（hydrogen peroxide，H2O2）、羟基自由基（hydroxyl radical，·OH）等。
它们在正常生物体内起到重要的信号传导和正常生理功能的调节作用，但当其产生过量或生物体的抗氧化防御系统受损时，可引发氧化应激反应，导致蛋白质、脂质、DNA等生物分子的氧化损伤，从而参与多种疾病的发生和发展过程。
由于活性氧的生成和清除速度都非常快，直接测量活性氧的浓度和活性是非常困难的，因此科学家们开发了多种间接检测方法。
以下是几种常见的活性氧检测方法。
1. 过氧化物酶法（oxidative enzyme assay）该方法通过利用特定的过氧化物酶（例如超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶等）将活性氧转化为可测量的反应物质。
测量该反应物质的生成速率或浓度变化，可以间接反映出活性氧的产生量或含量。
2. 化学荧光探针法（chemical fluorescence probe）该方法使用特定的化学荧光探针，探针分子结构中含有特异性的活性氧敏感团或特异的活性氧响应元件。
当探针与活性氧反应时，荧光强度变化或荧光发射峰位移动，可以通过荧光光谱或荧光显微镜等技术手段来测定活性氧的产生量或含量。
3. 化学显色法（chemical colorimetric assay）该方法基于活性氧与一些特定的化学物质（如戊二醛、硫代巴比妥酸钠等）反应生成产物，这些产物具有特定的吸收光谱，可以通过比色法来测定活性氧的产生量或含量。
该方法简便易行，仪器设备要求低，适用于较低灵敏度的活性氧检测。
4. 高效液相色谱法（high-performance liquid chromatography该方法通过高效液相色谱技术将待测样品中的活性氧产生物（如羟基自由基产生物3,4-二羟基苯乙酮酸）分离和检测，根据活性氧产生物的峰面积或峰高变化来测定活性氧的产生量。
细菌氧化应激活性氧(ROS)高质荧光测定试剂盒产品说明书
细菌氧化应激活性氧（ROS）高质荧光测定试剂盒产品说明书（中文版）主要用途细菌氧化应激活性氧（ROS）高质荧光测定试剂盒是一种旨在通过透膜荧光染色剂氯甲基二氯二氢荧光素二乙酯，在细菌氧化条件下，产生荧光，来定量检测细菌活性氧族的生成和增加的权威而经典的技术方法。
该技术经过精心研制、成功实验证明的。
其适用于各种实验用细菌菌株氧化应激活性氧的分析。
产品严格无菌，即到即用，操作简易，活体检测，性能稳定，滞留持久，荧光清晰。
技术背景细菌作为模式生物，是环境化学毒性研究的常用工具。
活性氧的检测可以用于诸如多环芳烃化合物或重金属的毒性作用以及修复（remediation）的评价指标。
超氧自由基阴离子（superoxide radical；O2-）、过氧化氢（hydrogen peroxide；H2O2）、羟自由基或氢氧基（hydroxyl radical；OH-）、过氧化基（peroxyl radical；ROO-）、氢过氧自由基（hydroperoxyl；HOO）、烷氧自由基（alcoxyl radical）、氮氧基（nitric Oxide；NO-）、过氧亚硝基阴离子（peroxynitrite anion；ONOO-）次氯酸（hypochlorous acid；HOCl）、半醌自由基（semiquinone radical）、单线态氧气（singlet oxygen）等细胞内活性氧族（Reactive Oxygen Species；ROS）的产生和增多，将导致细胞衰老或凋亡。
氯甲基二氯二氢荧光素二乙酯（6-chloromethyl-2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate, acetyl ester；CM－H2DCFDA）是取代二氯二氢荧光素二乙酯（2´,7´-dichlorodihydrofluorescin diacetate；DCFH-DA）的升级产品，一种完全自由通过细胞膜，并在细胞内长期滞留而不易外漏的染色剂。
sosg单线态氧荧光探针原理
sosg单线态氧荧光探针原理下载温馨提示：该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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细胞ROS测定试剂盒说明书1
用户自备
胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液（GMS12024）：用于细胞脱离 完全细胞培养液（GMS12052）：用于细胞操作所需的培养基 15 毫升锥形离心管：用于细胞操作的容器 1.5 毫升离心管：用于细胞染色的容器 血细胞计数仪：用于细胞计数 台式离心机：用于沉淀细胞 细胞流式仪：用于细胞荧光分析 （共聚焦）荧光显微镜：用于观察荧光细胞
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c) 或使用荧光分光光度仪检测（定量检测）：
1）移取 400 微升上述细胞悬液到 1 毫升比色杯
2）加入
微升 GENMED 保存液（Reagent D）
3）上下倾倒混匀数次
4）放进荧光分光光度仪：激发波长 540nm，散发波长 590nm――
RFU 增高，表明活性氧族（ROS）含量高
2
二、 直接法
活体组织氧化应激活性氧（ROS）初级荧光测定试剂盒 冰冻切片氧化应激活性氧（ROS）高质荧光测定试剂盒 冰冻切片氧化应激活性氧（ROS）初级荧光测定试剂盒 细胞内氧化应激活性氧（ROS）比色法定量检测试剂盒
细胞内氧化应激活性氧（ROS）红色荧光测定试剂盒 冰冻切片氧化应激活性氧（ROS）红色荧光测定试剂盒
GENMED SCIENTIFICS INC. U.S.A
GMS10111.1 v.A
GENMED 细胞内氧化应激活性氧（ROS）红色荧光测定试剂盒产品说明书（中文版）
主要用途
GENMED 细胞内氧化应激活性氧（ROS）红色荧光测定试剂是一种旨在通过透膜荧光染色剂二氢溴化乙啶， 在细胞氧化条件下，产生红色荧光，来定量检测细胞内活性氧族的生成和增加的权威而经典的技术方法。 该技术由大师级科学家精心研制、成功实验证明的。可以被用于细胞凋亡、信号传递、衰老、代谢和营养 学等的研究。产品严格无菌，即到即用，操作简易，活体检测，性能稳定。
总抗氧化能力 (ABTS 法)试剂盒说明书
总抗氧化能力(ABTS 法)试剂盒说明书微量法100T/96S注 意：正式测定之前选择2-3 个预期差异大的样本做预测定。
研究意义：测定对象中各种抗氧化物质和抗氧化酶等构成总抗氧化水平。
在生物学、医学和药学研究中常常检测血浆、血清、唾液、尿液等各种体液，细胞或组织等裂解液、植物或中草药抽提液及各种抗氧化物(antioxidant)溶液的总抗氧化能力。
测定原理：ABTS 法是使用最广泛的间接检测方法，可用于亲水性和亲脂性物质抗氧化能力测定。
ABTS经氧化后生成稳定的蓝绿色阳离子自由基ABTS+，能溶于水相或酸性乙醇介质中，在734nm 处有最大吸收。
被测物质加入ABTS+溶液后，所含抗氧化成分能与ABTS+发生反应而使反应体系褪色。
在734nm 检测吸光度的变化，并以Trolox 作为对照体系量化抗氧化物质的抗氧化能力。
自备实验用品：恒温水浴锅、低温离心机、酶标仪、96 孔板和蒸馏水。
试剂组成和配制：提取液：液体120mL×1 瓶，4℃保存。
试剂一：液体24mL×1 瓶，4℃避光保存。
试剂二：粉剂×2 瓶，4℃避光保存。
样品的制备：(1) 血清、血浆、唾液或尿液等液体样品血浆（制备时可以使用肝素或柠檬酸钠抗凝，不宜使用EDTA 抗凝）4℃，5000rpm 离心10min，取上清待测。
血清、唾液或尿液样品直接用于测定，也可以-80℃冻存（不宜超过30 d）后再测定。
(2) 组织样品按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10 的比例（建议称取约0.1g 组织，加入1mL 提取液）进行冰浴匀浆，然后10000g，4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
(3) 细胞样品按照细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1 的比例（建议500 万细胞加入1mL 提取液），冰浴超声波破碎（功率200W，超声3s，间隔10s，重复30 次）；10000g，4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
活性氧的检测方法
活性氧的检测方法活性氧（Reactive Oxygen Species，ROS），是指一类高度活泼的氧化剂，包括超氧阴离子自由基（O2·-）,过氧自由基（·O2-）,氢过氧化物（H2O2）和羟基自由基（·OH）等。
活性氧在生物体内产生具有重要的生物学功能，但过量的活性氧会导致细胞氧化应激和氧化损伤，甚至引发多种疾病。
因此，准确、灵敏地检测活性氧的水平对于生物医学研究和临床诊断具有重要意义。
本文旨在介绍一些常用的活性氧检测方法，包括化学发光法、流式细胞术、蛋白质标记法以及分子探针法。
1. 化学发光法化学发光法是一种常用的检测活性氧的方法，其原理是通过检测化学反应所产生的荧光信号来间接测定活性氧的含量。
其中，氧化荧光素（DHE）和二苯基五氮唑（DPI）是两种常用的探针物质。
通过与细胞或组织中的活性氧反应，这些探针物质会发生化学变化，产生荧光信号，从而可以间接测量活性氧的水平。
2. 流式细胞术流式细胞术是一种高通量、高灵敏度的活性氧检测方法。
通过将细胞与特定的探针（如二苯基五氮唑、二氧化碳和二溴苯蓝）共孵育，然后使用流式细胞仪对细胞进行检测和分析。
这种方法可以实时监测细胞中活性氧的动态变化，并且可以定量分析不同细胞群体中活性氧的水平。
3. 蛋白质标记法蛋白质标记法是一种利用免疫学原理检测活性氧的方法。
通过特异性抗体与活性氧产生的蛋白质分子进行结合，然后通过荧光或酶标记的二抗对抗原-抗体复合物进行检测。
这种方法可以定量检测活性氧在细胞或组织中的定位和分布，从而进一步研究活性氧的生物学效应。
4. 分子探针法分子探针法是一种基于分子探针的活性氧检测方法。
探针分子与活性氧存在特定的反应，通过测量探针与活性氧反应后的荧光强度或吸收光谱变化来定量分析活性氧的含量。
比如，二苯基氨基腙（DPA）和二羟基芳香乙酰胺（DMA）等探针物质被广泛应用于活性氧的检测研究中。
以上介绍了常用的活性氧检测方法，包括化学发光法、流式细胞术、蛋白质标记法以及分子探针法。
单线态氧的生理作用及其检测技术
单线态氧的生理作用及其检测技术
单线态氧是一种重要的生物活性氧，在各个领域中都有十分重要的作用。
它在
许多的的生理过程中都发挥着极其重要的作用，如：新陈代谢、免疫反应、能量代谢、细胞凋亡、凋亡信号以及炎症反应等。
对于人类的健康而言，单线态氧拥有极为重要的保健作用。
单线态氧的生理作用是通过其三种主要效应表现出来的：一是通过抗氧化能力
保护组织免受破坏；二是抑制炎症；三是促进细胞增殖和重塑，促进伤口愈合和新陈代谢。
此外，单线态氧还可以作为一种非激素的抗衰老剂，延缓衰老的过程。
由于单线态氧具有如此重要的功能，检测其水平变化对诊断疾病以及实施有效
治疗方案非常重要。
近年来，检测单线态氧水平的技术不断成熟，有多种微流检测法、吸光光度法、单线态氧催化生成物测定法以及O2-饱和度检测法等，可以实现
对单线态氧水平进行检测。
其中，细胞膜微流检测法抗干扰能力强，量程宽，是最主要的检测技术；结合消光法和补血法的复合检测，可以获得更为准确的检测结果。
从而我们可以看出，单线态氧及其检测技术在维护人类健康方面具有重要意义。
希望在以后的研究中，单线态氧的研究能够更深入，更广泛，构建更完善的体系，实现对人类健康更好的管理与保护，确保人们拥有更加完善的健康状态。
植物中脂氧合酶（LOX）活性检测试剂盒说明书
植物中脂氧合酶（LOX微量法注意：本产品试剂有所变动，请注意并严格按照该说明书操作。
货号：BC0325规格：100T/96S产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致，有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称规格保存条件提取液液体110 mL×1瓶4℃保存粉剂一粉剂×1瓶4℃保存试剂一液体20 mL×1瓶4℃保存试剂二液体3mL×1瓶4℃保存溶液的配制：1、提取液：临用前将粉剂一倒入提取液中，溶液为悬浊液，使用前需摇匀。
产品说明：LOX广泛存在于植物组织中，特别是黄豆种子中。
LOX催化不饱和脂肪酸氧化反应，导致膜脂过氧化。
在植物的生长发育、成熟衰老及逆境胁迫过程中具有重要作用。
LOX催化亚油酸氧化，氧化产物在234nm处有特征吸收峰；测定234nm吸光度增加速率，来计算LOX活性。
注意：实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。
如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品：研钵/匀浆器、冰、台式离心机、紫外分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪和蒸馏水。
操作步骤：一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）称取约0.1g样本，加提取液1mL，冰上充分研磨，16000g 4℃离心20min，取上清液置冰上待测。
二、测定步骤1. 分光光度计/酶标仪预热30 min以上，调节波长到234nm，蒸馏水调零。
2. 试剂一在25℃水浴中预热30min以上。
3. 空白管：依次在微量石英比色皿/96孔板中加入20μL蒸馏水、160μL试剂一和20μL试剂二，迅速混匀后于234nm比色，记录15s和75s的吸光值，分别记为A1和A2。
空白管只需做1-2次4. 测定管：依次在微量石英比色皿/96孔板中加入20μL上清液、160μL试剂一和20μL试剂二，迅速混匀后于234nm 比色，记录15s和75s的吸光值，分别记为A3和A4。
氧化应激与ros关系
氧化应激与ros关系
答案：
活性氧（ROS）是含氧的化学反应性化学物质。
实例包括过氧化物，超氧化物，羟基自由基，单线态氧，和α-氧。
在生物学背景下，ROS形成为氧的正常代谢的天然副产物，并且在细胞信号传导和体内平衡中具有重要作用。
然而，在环境压力（例如，紫外线或热暴露）期间，ROS水平会急剧增加。
这可能会对细胞结构造成严重损害，这被称为氧化应激。
ROS的产生受植物中应激因子反应的强烈影响，这些增加ROS产生的因素包括干旱，盐度，寒冷，营养缺乏，金属毒性和UV-B辐射。
ROS也由外源性源如电离辐射产生。
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植物氧化应激活性氧单线态氧气比色法定量检测试剂盒产品说明书（中文版）
主要用途
植物氧化应激活性氧单线态氧气比色法定量检测试剂是一种旨在通过二甲基-4-亚硝基苯胺，受到单线态氧气-的作用，出现去色现象，由分光光度仪比色分析，定量检测植物组织细胞内单线态氧气活性氧族的生成和增加的权威而经典的技术方法。
该技术经过精心研制、成功实验证明的。
其适用于各种新鲜的植物组织（叶片、谷粒、种子等），以及叶绿体等细胞器的单线态氧气检测。
可以被用于细胞凋亡、信号传递、衰老、代谢和营养学等的研究。
产品严格无菌，即到即用，操作简捷，性能稳定，检测敏感。
技术背景
超氧自由基阴离子（superoxide radical；O2-）、过氧化氢（hydrogen peroxide；H2O2）、羟自由基或氢氧基（hydroxyl radical；OH-）、过氧化基（peroxyl radical；ROO-）、氢过氧自由基（hydroperoxyl；HOO）、烷氧自由基（alcoxyl radical）、氮氧基（nitric Oxide；NO-）、过氧亚硝基阴离子（peroxynitrite anion；ONOO-）次氯酸（hypochlorous acid；HClO）、半醌自由基（semiquinone radical）、单线态氧气（singlet oxygen）等细胞内活性氧族（Reactive Oxygen Species；ROS）的产生和增多，将导致细胞衰老或凋亡。
其中单线态氧气（singlet oxygen；1 O2）是分子氧（O2）的抗磁形式或电激发形式。
通过染料分子，例如孟加拉红（Rose Bengal）、亚甲基兰（Methylene Blue）、卟啉类化合物（Porphyrins）染料的光敏过程中能量转移产生，或过氧化氢和次氯酸的化学反应产生。
单线态氧气可以调节紫外线A辐射的生物学作用、激活各种细胞信号通路等。
单线态氧气会导致植物的光动力损伤（photodynamic damage）和动物心血管问题。
基于二甲基-4-亚硝基苯胺（N,N-Dimethyl-p-nitrosoaniline；PNDA或RNO）作为单线态氧气的选择性受体，在单线态氧气的存在下，产生去色作用，在分光光度仪下（440nm波长），呈现吸光峰值的降低。
据此定量检测细胞内单线态氧气活性氧族的浓度。
产品内容
清理液（Reagent A）毫升
裂解液（Reagent B）毫升
缓冲液（Reagent C）毫升
反应液（Reagent D）毫升
阴性液（Reagent E）毫升
产品说明书1份
保存方式
保存清理液（Reagent A）在4℃冰箱里；其余的保存在-20℃冰箱里；反应液（Reagent D）避免光照；有效保证6月
用户自备
1.5毫升离心管：用于样品制备和保存的容器
15毫升锥形离心管：用于样品制备的容器
DOUNCE匀浆器：用于裂解植物组织
（微型）台式离心机：用于样品操作
培养箱：用于反应孵育
比色皿或酶标板：用于比色分析的容器
分光光度仪或酶标仪：用于比色分析
实验步骤
一、样品准备
1．准备好新鲜的植物组织（叶片、谷粒、种子等），并秤重以确定500毫克组织重量
2．（选择步骤）放进预冷的15毫升锥形离心管
3．（选择步骤）加入xx毫升清理液（Reagent A）清洗1次
4．即刻用刀片切碎组织
5．放进一个预冷的15毫升锥形离心管
6．加入预冷的xx毫升裂解液（Reagent B）
7．涡旋震荡5秒，充分混匀
8．即刻放进预冷的DOUNCE匀浆器，在冰槽里用研磨棒匀化组织（约80下）
9．将所有组织匀浆物移入1.5毫升离心管，放进4℃微型台式离心机离心10分钟，速度为5000g（或7500RPM，例如eppendorf 5415）
10．小心移出上清液（注意：不要触碰沉淀物）到另一个新的预冷的15毫升锥形离心管
11．（选择步骤）如果上清液含有肉眼可见的残渣，重复离心5分钟一次，速度为5000g（或7500RPM，例如eppendorf 5415）
12．即刻移入到1.5毫升离心管
13．移取10微升进行蛋白定量检测（注意：建议使用Bradford蛋白质浓度定量试剂盒－MB30030.1）14．放进－70℃的冰箱里保存或置于冰槽里备用
二、测定准备
1．开启并设定好分光光度仪（温度为25℃）：波长440nm，并置零
2．从－20℃冰箱里取出试剂，置于冰槽里融化；反应液（Reagent D）避免光照
三、背景对照测定
1．移取xx微升缓冲液（Reagent C）到新的比色皿
2．加入xx微升阴性液（Reagent E）
3．加入xx微升反应液（Reagent D）
4．上下倾倒数次，混匀
5．在25℃温度下孵育40分钟
6．即刻放进分光光度仪检测，此为背景空对照
四、样品测定
1．移取xx微升缓冲液（Reagent C）到新的比色皿
2．加入100微升待测样品（50微克蛋白）（注意：样品须清澈）
3．加入xx微升反应液（Reagent D）
4．上下倾倒数次，混匀
5．在25℃温度下孵育40分钟
6．即刻放进分光光度仪检测，此为样品读数
五、计算样品浓度
[（样品读数－背景读数）X 1 （体系容量；毫升）X样品稀释倍数]÷[0.1（样品容量；毫升）X 34.4（毫摩尔吸光系数）]＝微摩尔1 O2/毫升÷（样品蛋白浓度）毫克/毫升＝微摩尔1 O2/毫克
六、酶标板测定
1．在96孔酶标板上做好相应标记：背景对照和样品
2．分别移取xx微升缓冲液（Reagent C）到96孔板的所有孔中
3．分别加入xx微升阴性液（Reagent E）或待测样品（20微克蛋白）到相应孔中（注意：样品须清澈）4．分别加入xx微升反应液（Reagent D）到96孔板的所有孔中
5．轻轻摇动96孔酶标板
6．在25℃温度下孵育40分钟
7．即刻放进酶标仪检测：获得吸光读数
8．浓度计算：
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注意事项
1．本产品为20次（比色皿）或80次（酶标板）操作
2．避免使用叠氮化钠处理样品
3．操作时，须戴手套
4．孵育时，避免光照
5．系统操作过程中，背景测定只需1次
6．建议使用比色皿测定
7．样品须澄清，至关重要
8．测定值由高到低变化
9．比色测定后，比色皿须清洗彻底
10．建议待测样本蛋白浓度为50微克/100微升；如果样本浓度过低或过高，则可以增加或降低样本量（本公司提供Bradford蛋白质浓度定量试剂盒－MB30030.1）
11．如果使用叶绿体，建议蛋白浓度为100微克/100微升
12．如果待测样品浓度过高或过低，可以调整样品浓度
13．可以使用单线态氧气抑制剂或清除剂（scavenger），即NaN3和DABCO 作为抑制剂对照或阴性对照14．可以使用单线态氧气激发剂（generator），即萘啶酮酸（Nalidixic acid）等作为阳性对照
15．本公司提供系列活性氧检测试剂产品
质量标准
1．本产品经鉴定性能稳定2．本产品经鉴定检测敏感。