酶的提取与分离纯化
酶的分离提纯实验原理
酶的分离提纯实验原理酶的分离提纯是指从复杂的混合物中获得纯净的酶样品的过程。
此过程旨在去除其他杂质,并提高酶的比活性和纯度。
酶的分离提纯实验原理可以分为以下几个方面:1. 根据酶的生理特性进行分离:酶的分离可依据酶对pH值、温度、离子浓度、底物特异性等因素的敏感性进行。
常用分离方法包括离子交换层析、凝胶过滤层析、亲和层析、电泳等。
2. 分离的物理性质利用:酶可根据其分子大小、电荷、溶解度等物理性质进行分离。
例如,凝胶过滤层析通过选用合适的孔径筛选凝胶,使大分子酶无法进入凝胶孔隙,进而实现分离。
3. 分离的化学性质利用:酶可通过与其他物质的特异性相互作用来实现分离。
亲和层析是一种常用的方法,利用酶与某些配体(如某种金属离子、亲合剂等)的特异性结合来分离酶。
在实验中,通常采用以下步骤进行酶的分离提纯:1. 细胞破碎:从生物体中获得酶源,如细胞、组织、分泌物等。
通常使用超声波破碎、搅拌破碎、离心等方法破碎细胞,并保持样品低温以防止酶的失活。
2. 酶提取:将破碎的细胞溶液用适当的缓冲液进行提取,并添加必要的辅助物质(如阻聚剂、金属离子等)以保持酶的稳定和活性。
3. 初步分离:通常先进行粗提,包括沉淀、超滤、离心、酒精沉淀等方法,目的是将酶与其他细胞组分分离开来。
4. 层析:根据酶的物理性质或化学性质选择适当的层析方法。
离子交换层析是常用的方法之一,根据酶与离子交换基质之间的相互作用进行分离。
5. 亲和层析:利用酶与特定配体之间的结合进行分离。
例如,选择性地将酶与亲和基质(如亲和剂或金属离子)结合,然后利用特定条件(如改变pH值或添加竞争性配体)来解离酶。
6. 离心和浓缩:通过离心和浓缩等操作,将目标酶进一步分离和提纯。
7. 再结晶:通过结晶或沉淀等方法进行酶的最终纯化。
8. 活性测定和纯度检验:测定酶的比活性,评估酶的纯度和活性。
总之,酶的分离提纯实验原理基于酶对物理、化学条件的敏感性,通过适当的分离方法和步骤,去除杂质,提高酶的纯度和比活性。
酶的分离纯化方法介绍
酶的分离纯化方法介绍酶的分离纯化一般包括三个基本步骤:即抽提、纯化、结晶或制剂。
首先将所需的酶从原料中引入溶液,此时不可避免地夹带着一些杂质,然后再将此酶从溶液中选择性地分离出来,或者从此溶液中选择性地除去杂质,然后制成纯化的酶。
关键词:酶抽提纯化结晶制剂细胞破碎cell disruption 盐析亲和沉淀有机溶剂沉淀生物细胞产生的酶有两类:一类由细胞内产生后分泌到细胞外进行作用的酶,称为细胞外酶。
这类酶大都是水解酶,如酶法生产葡萄糖所用的两种淀粉酶,就是由枯草杆菌和根酶发酵过程中分泌的。
这类酶一般含量较高,容易得到;另一类酶在细胞内产生后并不分泌到细胞外,而在细胞内起催化作用,称为细胞内酶,如柠檬酸、肌苷酸、味精的发酵生产所进行的一系列化学反应,就是在多种酶催化下在细胞内进行的,在类酶在细胞内往往与细胞结构结合,有一定的分布区域,催化的反应具有一定的顺序性,使许多反应能有条不紊地进行。
酶的来源多为生物细胞。
生物细胞内产生的总的酶量虽然是很高的,但每一种酶的含量却很低,如胰脏中期消化作用的水解酶种类很多,但各种酶的含量却差别很大。
因此,在提取某一种酶时,首先应当根据需要,选择含此酶最丰富的材料,如胰脏是提取胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶、淀粉酶和脂酶的好材料。
由于从动物内脏或植物果实中提取酶制剂受到原料的限制,如不能综合利用,成本又很大。
目前工业上大多采用培养微生物的方法来获得大量的酶制剂。
从微生物中来生产酶制剂的优点有很多,既不受气候地理条件限制,而且动植物体内酶大都可以在微生物中找到,微生物繁殖快,产酶量又丰富,还可以通过选育菌种来提高产量,用廉价原料可以大量生产。
由于在生物组织中,除了我们所需要的某一种酶之外,往往还有许多其它酶和一般蛋白质以及其他杂质,因此为制取某酶制剂时,必须经过分纯化的手续。
酶是具有催化活性的蛋白质,蛋白质很容易变性,所以在酶的提纯过程中应避免用强酸强碱,保持在较低的温度下操作。
简述酶提取的过程及其原理
简述酶提取的过程及其原理酶提取是一种将酶分离、纯化和富集的方法。
它是一项关键的生物技术,广泛应用于医学、食品工业、生物工程和农业生产等领域。
酶提取的过程涉及样品的处理、细胞破碎、分离纯化和稳定等步骤,并且其原理基于酶在化学环境中的特性和提取技术。
酶提取的过程主要包括以下几个步骤:1. 样品的处理:在进行酶提取之前,需要对样品进行必要的处理。
这可能包括去除杂质、脂肪、蛋白质以及其他可能影响酶纯化的成分。
此外,在酶提取之前,还需要对样品进行预处理,如搅拌、离心、过滤等,以达到更好的分离和纯化效果。
2. 细胞破碎:将细胞破碎是酶提取的关键步骤之一。
细胞破碎的目的是释放酶并将其分离出来。
常见的破碎方法有物理破碎、化学破碎和酶解破碎等。
物理破碎主要依靠高压机械力、超声波或高压抗冻聚能技术等。
化学破碎可以使用酸、碱或酶等化学物质来破坏细胞膜结构。
酶解破碎则利用酶的特性来破坏细胞膜。
3. 分离纯化:分离纯化是酶提取的重要步骤之一,目的是从复杂的混合物中高效地分离目标酶。
常见的分离技术有沉淀、过滤、离心、柱层析等。
其中,柱层析是一种常用且有效的方法,根据酶的特性和物理化学性质,通过选择性吸附和洗脱的方法实现酶的纯化。
柱层析常用的分离材料有凝胶过滤、离子交换、亲和层析和凝胶过滤等。
4. 稳定性评估:提取酶之后,需要对酶的稳定性进行评估。
酶在提取过程中常常会受到温度、pH、离子浓度和蛋白质浓度等环境因素的影响,从而导致酶的活性损失或失活。
稳定性评估试验可以通过测定酶的活性来评估其在不同条件下的稳定性,并找出最适宜的储存和使用条件。
酶提取过程的原理主要基于酶分子的特性和物理化学性质,如分子量、电荷、亲和性等。
不同的酶在提取过程中会因其特性的不同而选择不同的提取方法。
下面是几个常见的酶提取原理:1. 溶液条件:酶在某一特定条件下,如适宜的pH、离子浓度、温度等,具有较高的活性和稳定性。
通过调整溶液条件,可以提高酶的活性和稳定性,从而更好地提取酶。
酶的提取与分离纯化
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2
酶的提取、分离纯化技术路线
细胞破碎 动物、植物或微生物细胞
酶提取( 粗提) 酶分离纯化
发酵液
酶浓缩 酶贮存
离心分离,过滤分离,沉淀分 离,层析分离,电泳分离,萃 取分离,结晶分离等。
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3
酶分离纯化不同阶段
酶的纯化过程,约可分为三个阶段:
(1) 粗蛋白质 (crude protein): 采样 → 均 质打破细胞 → 抽提出全蛋白,多使用 盐析沉淀 法;可以粗略去除蛋白质以外的物质。
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14
3、超声波破碎法
超声波:通常人的耳朵可听到的 声音频率范围为16-20kHz,频率 高于20 kHz的波。
其破碎机理可能与空化现象引起 的冲击波和剪切作用有关。在超 声波作用下,细胞膜由于空穴作 用而破碎。
由于空化作用而使液体形成局部 减压引起液体内部发生流动,旋 涡生成与消失时,产生很大的压 力使细胞膜破裂到达破碎细胞的 效果。
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5
表4-1 细胞破碎方法及其原理
分类
细胞破碎方法
捣碎法
机械破碎法 研磨法
匀浆法
温度差破碎法
压力差破碎法 物理破碎法 超声波破碎法
反复冻融法
干燥法
细胞破碎原理
通过机械运动产生的剪切力, 使组织、细胞破碎
通过各种物理因素的作用,使 组织、细胞的外层结构破坏, 而使细胞破碎
.
6
化学破碎法
添加有机溶剂、 通过各种化学试剂对细胞膜 添加表面活性剂 的作用,而使细胞破碎
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2、表面活性剂
可促使细胞某些组分溶解,其增溶作用有助于细胞 的破碎。表面活性剂可与细胞膜中的磷脂及脂蛋白 作用而破坏膜结构,增加膜的通透性。
酶的分离纯化过程中要注意什么问题
酶分离纯化过程中的问题以及进行酶活力等测定的意义班级:生物技术133 组别:第六组姓名:董冰夏学号:2013013906酶的分离纯化一般包括三个基本步骤:即抽提、纯化、结晶或制剂。
首先将所需的酶从原料中引入溶液,此时不可避免地夹带着一些杂质,然后再将此酶从溶液中选择性地分离出来,或者从此溶液中选择性地除去杂质,然后制成纯化的酶制剂。
酶的来源多为生物细胞。
生物细胞内产生的总的酶量虽然是很高的,但每一种酶的含量却很低,如胰脏中期消化作用的水解酶种类很多,但各种酶的含量却差别很大。
因此,在提取某一种酶时,首先应当根据需要,选择含此酶最丰富的材料,如胰脏是提取胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶、淀粉酶和脂酶的好材料。
由于从动物内脏或植物果实中提取酶制剂受到原料的限制,如不能综合利用,成本又很大。
目前工业上大多采用培养微生物的方法来获得大量的酶制剂。
从微生物中来生产酶制剂的优点有很多,既不受气候地理条件限制,而且动植物体内酶大都可以在微生物中找到,微生物繁殖快,产酶量又丰富,还可以通过选育菌种来提高产量,用廉价原料可以大量生产。
生物细胞产生的酶有两类:一类由细胞内产生后分泌到细胞外进行作用的酶,称为细胞外酶。
这类酶大都是水解酶,如酶法生产葡萄糖所用的两种淀粉酶,就是由枯草杆菌和根酶发酵过程中分泌的。
这类酶一般含量较高,容易得到;另一类酶在细胞内产生后并不分泌到细胞外,而在细胞内起催化作用,称为细胞内酶,如柠檬酸、肌苷酸、味精的发酵生产所进行的一系列化学反应,就是在多种酶催化下在细胞内进行的,在类酶在细胞内往往与细胞结构结合,有一定的分布区域,催化的反应具有一定的顺序性,使许多反应能有条不紊地进行。
由于在生物组织中,除了我们所需要的某一种酶之外,往往还有许多其它酶和一般蛋白质以及其他杂质,因此为制取某酶制剂时,必须经过分纯化的手续。
因为酶是具有催化活性的蛋白质,蛋白质很容易变性,所以在酶的提纯过程中应避免用强酸强碱,保持在较低的温度下操作。
酶的提取及纯化
1,盐析
■ 盐对蛋白质溶解度的影响:
● 盐溶 Salting-in:
加盐使蛋白质溶入水溶液中
● 盐析 Salting-out:
加盐使蛋白质由水溶液中沉淀出來
■ 提高盐浓度会增加蛋白质的溶解度:
溶
pI [NaCl]
解
0.005M
度
0.02M
pH > 5.2
2
0.01M
1
0.001M
pH = 5.2
3) 不易引起变性,有稳定酶与蛋白质结构的作用。 有的酶或蛋白质用2~3mol/L浓度的(NH4)2SO4保存可 达数年之久。
4) 价格便宜。
盐析剂用量的确定
盐浓度的表示法
盐析法中的盐浓度通常以盐溶液的饱和度表示,饱 和的溶液成为100%饱和度。
影响盐析的因素
蛋白质浓度 离子强度和类型 pH 温度
1、动植物酶、微生物胞内酶的酶液制备流程
收集细胞 细胞破碎 固液分离 酶液浓缩
酶液
一、酶液的制备
2、微生物胞外酶的酶液制备流程
发酵液预处理 固液分离 酶液浓缩 酶液
3、细胞破壁的方法:
● 干式: 液态氮研磨, 磨粉机, 球磨机 (ball mill)
● 湿式: 均质机, 果汁机 (Waring blender), Polytron, 研砵,
几种盐在不同温度下的溶解度(克/100毫升水)
(NH4)2SO4 Na2SO4 NaH2PO4
0℃ 70.6 4.9 1.6
20℃ 75.4 18.9 7.8
80℃ 95.3 43.3 93.8
100 ℃ 103 42.2 101
2)分离效果好:有的提取液加入适量硫酸铵盐析,一 步就可以除去75%的杂蛋白,纯度提高了四倍。
酶工程-04-酶的提取与分离纯化
三足离心机 32 武汉生物工程学院生物工程系酶工程教研室
1、差速离心
采用不同的离心速度和离心时间,使不同沉降速度的颗粒 先后分离的方法。
应用范围:大小和密度有较大差别的颗粒。
大
中
小
33 武汉生物工程学院生物工程系酶工程教研室
2、密度梯度离心
在离心管中用5~60%的蔗糖溶液,形成由管底到液面逐渐 降低的梯度,将样品放在密度梯度溶液的表面,经过离心,不 同大小、具有一定沉降系数差异的颗粒在密度梯度溶液中形成 若干条不连续的区带。
广泛应用于生物工程、化学、制药、 饮料、电力、冶金、海水淡化、资源 再生等领域。
渗出液 40
膜分离技术的地位和影响
美国官方文件曾说“18世纪电器改变了整个工业进程 ,而20世纪膜技术将改变整个面貌”,“目前没有一 种技术,能像膜技术这么广泛地被应用”
日本和欧洲则把膜技术作为21世纪的基盘技术进行研 究和开发。
常用的离心介质:铯盐,如CsCl,Cs2SO4,CsBr
36 武汉生物工程学院生物工程系酶工程教研室
先把一定浓度的铯盐溶液与样品液混合均匀,也可将一定量 的铯盐加到样品液中使之溶解。 在选定的离心力作用下,经过足够时间的离心分离。 铯盐在离心力的作用下,在离心力场中沉降,自动形成密度 梯度。 样品中不同浮力密度的颗粒在其各自的等密度点位置上形成 区带。
梯度介质:蔗糖密度梯度系统
34 武汉生物工程学院生物工程系酶工程教研室
密度梯度的制备:密度梯度混合器
35 武汉生物工程学院生物工程系酶工程教研室
3、等密度梯度离心
当欲分离的不同颗粒的密度范围处于离心介质的密度范围 时,在离心力的作用下,不同浮力密度的颗粒一直移动到与他 们各自的浮力密度恰好相等的位置,形成区带。
Chapter 3 酶的提取与分离纯化
Chapter 3 酶的分离与纯化我们要研究或使用一种酶,首先要采用相关方法先得到它,因此酶的分离与纯化是酶的生产、应用及酶学性质研究的基础。
Section 1 酶制剂的制备过程一个完整的酶制剂制备方案应该包括:酶活力测定体系的建立、材料的选择、材料的预处理、酶的酶学性质初步研究、酶的分离与纯化、酶制剂的保存。
一、材料的选择注意把握植物的季节性、微生物的生长期(对数生长期)和动物的生理状态等。
二、材料的预处理(一)细胞破碎上节课我们提到根据酶的分布,可将酶分为胞内酶和胞外酶。
若是胞外酶,就不存在细胞破碎的问题,但是胞外酶的种类很少,绝大多数酶都属于胞内酶。
要想获得胞内酶,就得先进行细胞破碎,使酶从细胞内释放出来,这样才能进一步进行酶的提取和分离纯化。
细胞破碎的方法很多,有机械破碎法、物理破碎法、化学破碎法和酶溶法。
在实际使用时,我们要根据细胞的特性和酶的特性选择适宜的方法,有时也可以联合采用2种或2种以上的方法,以达到细胞破碎的效果,而又不影响酶的活性。
1、机械破碎法按照所用破碎机械的不同,又可以分为捣碎法、研磨法和匀浆法。
(1)捣碎法:常用于动物内脏、植物叶芽等比较脆嫩的组织细胞的破碎,也可以用于微生物,特别是细菌的细胞破碎。
(2)研磨法:常用于微生物和植物组织细胞的破碎。
(3)匀浆法:常用于破碎易于分散、比较柔软、颗粒细小的组织细胞。
大块的组织或者细胞团需要先用组织捣碎机或研磨器械捣碎分散后才能进行匀浆。
2、物理破碎法根据物理力的不同,可分为冻融法、渗透压法和超声波破碎法。
(1)冻融法:适用于易于破碎的细胞,如革兰氏阴性菌。
如将-20℃冷冻的细胞突然放进沸水浴中,或沸水浴中的热细胞突然放进-70℃冷冻,这样都可以使细胞破坏。
但是,在酶的提取时,要注意不能在过高的温度下操作,以免引起酶的变性失活。
(2)渗透压法:适用于易于破碎的细胞,如动物细胞或革兰氏阴性菌。
使用时,先将细胞分离出来,悬浮在高渗透压的溶液中,平衡一段时间后,将细胞迅速转入低渗透压的蒸馏水或缓冲溶液中,由于渗透压的作用而使细胞破碎。
酶工程4-1--3 酶的提取与分离提纯 酶的提取与分离提纯
用于提取在稀碱溶液中溶解度大 且稳定性较好的酶
用于提取那些与脂质结合牢固或 含有较多非极性基团的酶
有机溶剂提取 可与水混溶的有机溶剂
主要影响因素
扩散的影响:
酶分子的扩散速度与温度、溶液黏度、扩散面积、扩散距离以及两相 界面的浓度差有密切关系。提高温度、降低溶液黏度、增加扩散面积、缩 短扩散距离, 增大浓度差等都有利于提高酶分子扩散速度, 从而增大提取效 果。 含酶原料的颗粒体积越小,则扩散面积越大,有利于提高扩散速度;适当的搅 拌可以使提取液中的酶分子迅速离开原料颗粒表面,从而增大两相界面的浓 度差,有利于提高扩散速率;适当延长提取时间,可以使更多的酶溶解出来,直 至达到平衡。
2. 酸溶液提取
3. 碱溶液提取 4. 有机溶剂提取
表4-2 酶的主要提取方法
提取方法 盐溶液提取 使用的溶剂或溶液 0.02~0.5mol/L的盐溶液 提取对象 用于提取在低浓度盐溶液中溶解 度较大的酶 用于提取在稀酸溶液中溶解度大, 且稳定性较好的酶
酸溶液提取
碱溶液提取
pH值为2~6的水溶液
pH值为8~12的水溶液
指溶液中加入的饱和硫酸铵的体积与混合溶液总体积之比值。
饱和度=
溶液中饱和硫酸铵的体积
溶液的总体积
3) 调整盐浓度的方式
a.
饱和溶液法(添加饱和硫酸铵溶液)
适用于:蛋白质溶液体积不太大,而达到的盐浓度又 不太高时。
配制饱和硫酸铵溶液
在水中加入过量的固体硫酸铵, 加热至50~60℃, 保 温数分钟 , 趁热滤去过量未溶解的硫酸铵 , 滤液在0℃ 或 25℃平衡1~2 天, 有固体析出, 此溶液即为饱和硫酸铵溶 液, 其饱和度为1。
利用酶与其他杂质在有机溶剂中的溶解度不同, 通过添加 一定量的某种有机溶剂, 使酶或杂质沉淀析出, 从而使酶 与杂质分离 在酶液中加入某些物质, 使它与酶形成复合物而沉淀下来, 从而使酶与杂质分离
酶的提取与分离纯化
选择性变性沉淀法
定义:选择一定的条件使杂蛋白变性沉淀,而不影 响所需酶的方法。
方法:热处理,改变PH或加入某些金属离子 应用此法必须对与分离的酶以及酶液中的杂蛋白的 种类含量及其物理和化学性质有较全面的了解。
4 离心分离
离心分离
离心机的选择
离心方法的选用
离心条件的确定
离心机的选择
1 常速离心机 常速离心机又称低速离心机,最大转速在8000r/min以内,相对离心力(RCF )在1*104g 以下,主要用于细胞,细胞碎片和培养基残渣的分离,也用于酶的结晶等较大颗粒的分 离。 2 高速离心机 最大转速在(1~2.5)*104r/min,相对离心力达到1*104~1*105g,在酶的分离中主要用于沉 淀,细胞碎片和细胞器等的分离。由于转速过高,引起温度过高引起酶失活,故有的安 有冷冻装置,谓之高速冷冻离心机。 3超速离心机 转速能达到(2.5~12)*104r/min,相对离心力能达到5*105甚至更高。主要用于DNA,RNA, 蛋白质等生物大分子以及细胞,病毒等的分离纯化,样品纯度系数的检测,以及沉降系 数和相对分子质量的测定。超速离心机可分为制备用超速离心机,分析用超速离心机和 分析—制备两用超速离心机。
等电点沉淀法 利用两性电解质在等电点的溶解度最低的特点和不同的物质具有不同的等电 点的特 点,通过调节溶液的PH,使酶或杂质沉淀析出,从而使酶和杂质分离 有机溶剂沉淀法 和杂 利用酶在有机溶剂具有不同溶剂的特点,通过加入一定量的有机溶剂,使酶 质分离
盐析沉淀法
定义:盐析沉淀法简称盐析,是利用不同的蛋白质在不同的盐浓度下溶解度不同的 特性,通过在酶液中加入一定浓度的中性盐,使目标酶或杂质从酶液中析出,从 而达到使酶与杂质分开的方法。 原理:盐离子会改变蛋白质表面的电荷,同时改变了水的活度,使分子表面的水 化膜发生改变。 酶的溶解度和离子强度有确定的定量关系 ㏒(S/S0)=-Ks I
酶的提取和分离纯化
酶分离纯化的工艺流程设计
设计时需要考虑的因素:
酶源材料 前期工艺过程 产品对纯度的要求 酶存在的状态 设备条件 动力、原料成本及工时费用
酶分离纯化的工艺流程设计
合理的工艺应以降低成本,提高效能,同时 又提高产品纯度和质量为前提。
对一个方法好坏的评价标准是: 1.酶的回收率 2.酶产品的比活力
此法效率较低
机械破碎法
3.匀浆法
利用匀浆器所产生的剪切力将组织细胞破 碎。匀浆器一般由硬质磨砂玻璃制成,也 可由硬质塑料可不锈钢等制成。通常用来 破碎那些易于分散,比较柔软,颗粒细小 的组织细胞。
此法细胞破碎程度较高,对酶的破坏也较 少,但难于在工业生产上应用。
11.2.2 物理破碎法
通过温度、压力、声波等各种物理因素的 作用,使组织细胞破碎的方法,统称为物 理破碎法。此法多用于微生物细胞的破碎
所以在纯化前往往须先加以浓缩。沉淀法 可浓缩并去除部分杂质,此外,浓缩的方 法有 (1)蒸发法 (2)反复冻融法 (3)胶过滤 (4)超滤法
2.初步提纯
除去大分子的核酸和粘多糖 (1)加硫酸链霉素、聚乙烯亚胺、鱼精蛋白或
MnCl2可使核酸沉淀移去。必要时使用核酸酶。 (2)常用醋酸铅、乙醇、单宁和离子型表面活性
材料选择及其前处理
动物材料:事先剔除结缔组织、脂肪组织 植物材料:果实种子事先去皮壳,油质种
子用乙醚等脱脂 微生物发酵物:先将菌体和发酵物分离 胞外酶
酶 胞内酶 结酶 溶酶
11.2 细胞破碎
除了动植物体液中的酶和微生物胞外酶之 外,大多数酶都存在于细胞内,因此提取和分 离纯化前须将进行细胞的破碎。 破碎细胞的方法有:
剂等处理解决,有时也用酶。
经过初步提纯,余下来的大分子为酶与杂蛋白, 分离纯化的主要工作,同时也是比较困难的工作, 就是将酶从杂蛋白中分离出来。
第五章 酶的提取与分离纯化
把生物技术在研究、开发及应用于生产工艺过程的工作 分为上游及下游两个部分。
下游(后处理工艺)(down stream process):
如何高收率、高纯度、高质量的从微生物的发酵液中、 细胞培养液中及动、植物组织的提取液中得到所需的产 品。
第一节 细胞破碎
细胞破碎的目的是破坏细胞外围使胞内物质释放出来。
微生物细胞的外围通常包括细胞壁和细胞膜,它们起着 支撑细胞的作用。
细胞壁(外壁):具有固定细胞外形和保护细胞免受机械 损伤或渗透压破坏的功能。是细胞破碎的主要阻力。
细胞膜(内壁):是一层半透膜。膜较薄,主要由蛋白质和脂 质组成,强度比较差,易受渗透压冲击而破碎。
抽提胞内酶:需将细胞壁破碎 破碎细胞方法:
(1)高压冲击法 (2)突然降压法
取决因素:a.压力差 b.压力降低的速度 c.细胞种类和生长期
此法对大肠杆菌等革兰氏阴性菌效果较佳,最好使用 对数生长期的细胞。
(3)渗透压差法
方法:将细胞放在高渗透压的介质中(如一定浓度的 甘油或20%蔗糖溶液),达平衡后,转入到渗透压低 的缓冲液或纯水中,由于渗透压的突然变化,水迅速 进入细胞内,引起细胞溶胀,甚至破碎。于是,细胞 内容物就释放出来。
只适用于细胞壁较脆弱的菌体,破损率低,常需反复 多次。
冻融过程中可能引起某些蛋白质变性。
5、干燥法
细胞干燥法:如气流干燥、真空干燥、喷雾干燥和冷 冻干燥等。
通过干燥使细胞壁膜的结合水分丧失,从而改变细胞 的渗透性。当采用丙酮、丁醇或缓冲液等对干燥细胞 进行处理时,胞内物质就容易被抽提出来。
适用于膜结合的酶、细胞间质酶等的提取
仅适用于细胞壁较脆弱的细胞,或者细胞壁预先用酶 处理,或者在培养过程中加入某些抑制剂(如抗生素 等),使细胞壁有缺陷,强度减弱。
第三章 酶的提取与分离纯化
第三章酶的提取与分离纯化第三章酶的提取与分离纯化第三章酶的提取与分离纯化◆酶的提取与分离纯化是指将酶从细胞或其它含酶原料中提取出来,再与杂质分开,而获得所要求的酶制品的过程。
◆主要内容包括细胞破碎,酶的提取,离心分离,过滤与膜分离,沉淀分离,层析分离,电泳分离,萃取分离,浓缩,干燥、结晶等。
1.细胞破碎细胞破碎方法可以分为机械破碎法,物理破碎法,化学破碎法和酶促破碎法等,如表3-1所示。
表1细胞破碎方法及其原理1.1 机械破碎法通过机械运动所产生的剪切力的作用,使细胞破碎的方法称为机械破碎法。
常用的破碎机械有组织捣碎机,细胞研磨器,匀浆器等。
机械破碎法分为3种:捣碎法,研磨法和匀浆法。
1.2物理破碎法通过温度、压力、声波等各种物理因素的作用,使组织细胞破碎的方法,称为物理破碎法。
物理破碎法多用于微生物细胞的破碎。
常用的物理破碎法方法有温度差破碎法、压力差破碎法、超声波破碎法等,现简介如下:(1)温度差破碎法:利用温度的突然变化,由于热胀冷缩的作用而使细胞破碎的方法称为温度差破碎法。
(2)压力差破碎法:通过压力的突然变化,使细胞破碎的方法称为压力差破碎法。
常用的有高压冲击法、突然降压法、及渗透压变化法等。
(3)超声波破碎法:利用超声波发生器所发出的声波或超声波的作用,使细胞膜产生空穴作用( cavitation)而使细胞破碎的方法称为超声波破碎法。
1.3化学破碎法通过各种化学试剂对细胞膜的作用,而使细胞破碎的方法称为化学破碎法。
常用的化学试剂有甲苯、丙酮、丁醇、氯仿等有机溶剂,和特里顿(Triton)、吐温(Tween)等表面活性剂。
有机溶剂可以使细胞膜的磷脂结构破坏,从而改变细胞膜的透过性,使胞内酶等细胞内物质释放到细胞外。
表面活性剂可以和细胞膜中的磷脂以及脂蛋白相互作用,使细胞膜结构破坏,从而增加细胞膜的透过性。
1.4酶促破碎法通过细胞本身的酶系或外加酶制剂的催化作用,使细胞外层结构受到破坏,而达到细胞破碎的方法称为酶促破碎法,或称为酶学破碎法。
《酶工程》课件-酶的提取与分离纯化
01
02
03
04
低温保存
将酶保存在低温条件下,如冰 箱或冰柜中,以降低酶的活性
损失。
添加稳定剂
在酶溶液中添加稳定剂,如糖 、甘油等,以增加酶的稳定性
。
真空干燥
将酶进行真空干燥处理,制成 干粉或结晶,以便长期保存。
调节pH值
通过调节酶溶液的pH值,可 以稳定酶的构象,降低酶的失
活速率。
实验操作中的安全防护措施
速率,从而计算酶活性。
荧光法
利用荧光物质作为底物,经酶 催化后产生荧光,通过测量荧 光强度变化来检测酶活性。
化学发光法
利用化学发光物质作为底物, 经酶催化后产生发光,通过测 量发光强度变化来检测酶活性 。
放射性同位素标记法
利用放射性同位素标记的底物 ,经酶催化后测量放射性强度
变化来检测酶活性。
酶的保存方法
回收率评估
计算分离纯化过程中酶的回收率,评估实验效率 和经济性。
活性评估
通过测定酶的活性,比较分离纯化前后的变化, 评估分离纯化的效果。
稳定性评估
比较分离纯化前后的酶在不同条件下的稳定性, 评估分离纯化的效果。
03
酶的活性检测与保存
酶活性检测的方法
比色法
通过酶催化特定底物反应产生 有色产物,通过比色测定反应
确保实验操作场所的清 洁和卫生,避免污染。
在操作过程中要轻柔, 避免剧烈搅拌或晃动, 以免酶失活。
注意控制实验温度和 pH值等参数,确保酶 的稳定性和活性。
在分离纯化过程中,要 密切关注实验进程,及 时处理通过电泳、质谱等技术手段检测酶的纯度,确保 达到实验要求。
佩戴防护眼镜和实验服
在进行实验操作时,务必佩戴防护眼 镜和实验服,以防止试剂溅出伤人和 避免污染衣物。
酶的提取和分离纯化
3.1 酶的提取、分离纯化技术路线
细胞破碎
动物、植物或微生物细胞
酶提取 发酵液
酶分离纯化 酶浓缩 酶贮存
离心分离,过滤分离,沉淀分离, 层析分离,电泳分离,萃取分离, 结晶分离等。
电渗析 离子交换膜电渗析
透析
补充1:四种常用膜分离技术的基本特征
补充2:四种常用膜分离过程的截留特性
3.4.4 层析分离(色谱技术)
❖ 定义
是一种物理的分离方法,利用混合物中各组分的 物理化学性质的差别,使各组分以不同程度分布在两 个相中。
其中一个相为固定的(称为固定相),另一个相 则流过此固定相(称为流动相)并使各组分以不同速度 移动,从而达到分离。
选择一定的条件使酶液中存在的某些杂质变性沉淀,而 不影响所需的酶
3.4.1 沉淀分离
❖盐析沉淀法
盐浓度(中性盐) 离子强度
Ks分段盐析、β分段盐析
饱和度 温度-室温 pH-欲分离酶的等电点
3.4.1 沉淀分离
❖ 等电点沉淀法
等电点沉淀法往往与其它方法一起使用。
在加酸或加碱调节pH值的过程中, 要一 边搅拌一边慢慢加进,以防止局部过酸或过碱 而引起的酶变性失活。
3.2 细胞破碎
许多酶存在于细胞内。
JY92-II D超声波 细胞粉碎机
高 压
为了提取这些胞内酶,
细 胞
首先需要对细胞进行
破
破碎处理。
碎 机
(1)机械破碎
(2)物理破碎
细胞
破
(3)化学破碎
DY89-I型 电动玻璃匀浆机
酶提取和分离纯化的大致流程
酶提取和分离纯化的大致流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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1. 细胞破裂。
机械法,例如匀浆、研磨。
酶的提取与分离纯化
常压电泳仪(600V)
高压电泳仪(3000V)
超高压电泳仪(30000V~50000V)
(2)电泳槽:
自由界面电泳槽
管状电泳槽
板状电泳槽
(3)附属设备:
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7
★
二、聚丙烯酰胺凝胶电泳!
聚丙烯酰胺凝胶电泳(polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)是以聚丙烯酰胺凝 胶作为支持介质的一种电泳方法。
通常,缓冲液离子强度在0.02-0.2之间。
电 渗:在电场中,液体对于固体支持物的相对移动。
应避免用高电渗物质作支持介质。
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3
★
2. 电泳的分类
自由界面电泳:又称移动界面电泳,指在没 有支持介质的溶液中进行的电泳。 区带电泳:指有支持介质的电泳,待分离物 质在支持介质上分离成若干区带。
支持介质的作用:防止电泳过程中的对流和扩散。
分子量成正比。
因此,蛋白质—SDS复合物在凝胶中的迁移率不
受蛋白质原有电荷和形状的影响,只与椭圆棒长度
(蛋白质分子量)有关。
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★
未知蛋白质在相同条件 下进行电泳,可在标准 曲线上求得分子量。
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★
2. 操作:(SDS-PAGE及PAGE,即变性及非变性)
1)制胶: (变性:buffer 中加0.4%SDS) a.分离胶:根据待分离样品的分子大小选择一定 浓度的分离胶(查表),配制分离胶溶液: Acr:Bis=29:1,分离胶buffer, TEMED, AP, 水 迅速倒胶,加水使液面平坦,室温0.5h聚合完 全。 b.浓缩胶:用浓缩胶buffer。插上梳子。
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酶分离纯化过程中需要注意什么问题?为什么进行酶活力、酶比活力的测定
根据酶提取时,所采用的溶剂或溶液的不同,酶抽提的方法主要 有盐溶液提取,酸溶液提取,碱溶液提取,有机溶剂提取等。
1.盐溶液提取: 大多数酶在一定浓度的盐存在条件下,酶的溶解度增加, 即盐溶,但盐浓度不能太高,否则溶解度反而降低,即盐析。 故:一般采用稀盐溶液进行酶的提取,盐浓度控制在0.020.5mol/L。如淀粉酶、蛋白酶等胞外酶0.14mol/l氯化钠溶液提 取。
2.pH: 溶液的pH对酶的溶解度和稳定性有显著影响,在达到酶等 电点时的pH值下,酶分子的溶解度最小。为了提高酶的溶解度, 提取时pH应避开酶的等电点以提高酶的溶解度。
3.提取液的体积: 增加提取液的用量,可以提高酶的提取率,但是过量 的提取液会使酶的浓度降低,对进一步的分离纯化不利。所 以提取液的总量一般为原材料的3~5倍,最好分多次提取。
酶比活力
酶比活力是在特定条件下,单位重量(mg)蛋白质或RNA所具有 的酶活力单位数。比活力为每毫克蛋白质所具有的酶活力单位 数,一般用u/mg蛋白质表示。酶的比活力在酶学研究中用来衡 量酶的纯度,对于同一种酶来说,比活力越大,酶的纯度越高。 利用比活力的大小可以用来比较酶制剂中单位质量蛋白质的催 化能力,是表示酶的纯度高低的一个重要指标。 在酶的分离纯化过程中进行酶活力及酶比活力表测定的原因 是:一方面,防止酶变性失活。一旦活力明显下降,就要考 虑换一种纯化方法;另一方面,计算纯化效率。通过总活力 和比活,评估纯化效率,寻找最佳方法。
测定酶活力需测定其初速度,如图所示,曲线的斜率表示单 位时间内产物生成量的变化,所以曲线上任何一点的斜率就 是该相应时间的反应速率。随着时间的延长,曲线逐渐平坦, 斜率降低,反应速度也就降低,显然这个时候测得的酶活力 不能代表真实的酶活力。引起酶促反应速率随时间延长而降 低的原因很多,如底物浓度降低,产物浓度增加加速了逆反 应进行,产物对酶的抑制等等。因此,测定酶活力,应该测 定酶促反应的出速率,从而避免上述种种复杂因素对反应速 率的影响。
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仅适用于细胞壁较脆弱的细胞或细胞壁预先用酶处理或在培养过程中加 入某些抑制剂(如抗生素等),使细胞壁有缺陷,强度减弱。
3. 反复冻结-融化法
(2)自溶法(Autolysis)
诱发微生物产生过剩的溶胞酶或激发自身溶胞酶的 活力,以达到细胞自溶的目的。
影响自溶过程的主要因素有温度、时间、pH值、激 活剂和细胞代谢途径等。
缺点是:对不稳定的微生物,易引起所需蛋白质的 变性,自溶后细胞悬浮液粘度增大,过滤速度下降。
4.化学渗透法(Chemical permeation)
(2)EDTA螯合剂
处理G-细菌,对细胞外层膜有破坏作用。G-细菌的外层膜结 构通常靠二价阳离子Ca2+或Mg2+结合脂多糖和蛋白质来维持, 一旦EDTA将Ca2+或Mg2+螯合,大量的脂多糖分子将脱落, 使细胞壁外层膜出现洞穴。这些区域由内层膜的磷脂来填补, 从而导致内层膜通透性的增强。
(3)有机溶剂
2.破碎技术的研究方向
❖在发1酵)培多养种过破程碎中方,法培养相基结、合生长期、操作参数(如pH、温 度 构、与通组2气成)与量有、一上搅定游拌的过转影程速响相、。结稀细释胞合率的等破)碎等与因上素游都培对 养细过胞程壁有膜关的。结 ❖此外3,)用与化基下学因法游工、工酶程程法的、相方机法结械对法合相菌结种合进。行改造,以提高胞内物质的
细胞其细胞壁有缺陷,利于破碎; ❖选择较易破碎的菌种作为寄主细胞,如革兰氏阴性细菌; ❖在细胞内引进噬菌体基因,培养结束后,控制一定条件(如温 度等),激活噬菌体基因,使细胞自内向外溶解,释放出内含 物。
第三节 酶的提取
❖ 定义:酶的提取是指在一定的条件下,用适当的溶 剂或溶液处理含酶原料,使酶充分溶解到溶剂或溶 液中的过程。也称为酶的抽提。
第六章 酶的提取和分离纯化
Go 1、酶的提取与分离纯化技术路线 Go 2、细胞破碎 Go 3、酶的提取 Go 4、酶的分离方法 Go 5、酶的组合分离纯化策略 Go 6、酶的浓缩、干燥与结晶
第一节 酶的提取、分离纯化技术路线
细胞破碎 酶提取
动物、植物或微生物细胞 发酵液
酶分离纯化
酶浓缩 酶贮存
离心分离,过滤分离,沉淀分 离,层析分离,电泳分离,萃 取分离,结晶分离等。
4.酶溶法(Enzymatic Lysis)
(1)外加酶法
常用的溶酶
溶菌酶、 溶菌酶主要用于细菌类 β-1,3-葡聚糖酶、 β-1,6-葡聚糖酶、 蛋白酶、 甘露糖酶、 糖苷酶、 肽键内切酶、 壳多糖酶等
细胞壁溶解酶是几种酶的复合物
利用溶酶系统处理细胞时必须根据细胞壁的结构和化学 组成选择适当的酶,并确定相应的次序。
自溶法 外加酶制剂法
本章 目录
1.珠磨法(Bead mill)
原理:
进入珠磨机的细胞悬浮液与极细的玻璃小珠、石英砂、氧化 铝等研磨剂(直径小于1mm)一起快速搅拌或研磨,研磨剂、 珠子与细胞之间的互相剪切、碰撞,使细胞破碎,释放出内 含物。在珠液分离器的协助下,珠子被滞留在破碎室内,浆 液流出从而实现连续操作。破碎中产生的热量一般采用夹套 冷却的方式带走。
在工业规模的细胞破碎中,对于酵母等难破碎的及 高浓度的细胞,常采用多次循环的操作方法。
易造成堵塞的团状或丝状真菌, 较小的革兰氏阳性菌, 含有包含体的基因工程菌(因包含体坚硬,易损伤匀浆阀)
不宜采用高压匀浆法。
3.超声破碎法(Ultrasonication)
在15-25 kHz的频率下操作。其原理可能与空化现象(cavitation phenomena)引起的冲击波和剪切作用有关。
❖ 原则:酶提取时首先应根据酶的结构和溶解性质, 选择适当的溶剂。一般说来,极性物质易溶于极性 溶剂中,非极性物质易溶于非极性的有机溶剂中, 酸性物质易溶于碱性溶剂中,碱性物质易溶于酸性 溶剂中。
❖ 酶都能溶解于水,通常可用水或稀酸、稀碱、 稀盐溶液等进行提取,有些酶与脂质结合或含 有较多的非极性基团,则可用有机溶剂提取。
对酵母细胞采用酶法破碎时,先加入蛋白酶作用蛋白质-甘露聚糖 结构,使二者溶解,再加入葡聚糖酶作用裸露的葡聚糖层,最后只 剩下原生质体,这时若缓冲液的渗透压变化,则细胞膜破裂,释出 胞内产物。
酶溶法的优点: 选择性释放产物,条件温和,核酸泄出量少,细胞外形完整。
缺点:溶酶价格高,溶酶法通用性差(不同菌种需选择不同 的酶),产物抑制的存在。 在溶酶系统中,甘露糖对蛋白酶有抑制作用,葡聚糖抑制葡 聚糖酶。
酶分离纯化不同阶段
酶的纯化过程,约可分为三 个阶段:
(1) 粗蛋白质 (crude protein): 采样 → 均质打破细胞 → 抽 出全蛋白,多使用 盐析沉淀 法;可以粗略去除蛋白质以 外的物质。
(2) 部分纯化 (partially purified): 初步的纯化,使用 各钟 柱层析法。
(3) 均质酶 (homogeneous): 目标酶的进一步精制纯化, 可用制备式电泳 或 HPLC。
使细胞结合水分丧失,从而改变细胞的渗透性。当采用丙酮、 丁醇或缓冲液等对干燥细胞进行处理时,胞内物质就容易被 抽提出来。
气流干燥主要适用于酵母菌,一般在25-30℃的气流中吹干; 真空干燥多用于细菌。
三、破碎率的测定与破碎技术的研究方向
1. 破碎率的测定
1)直接测定法
采用染色的方法把破碎的细胞与未破碎的细胞区别开来。 如破碎的革兰氏阳性菌可染成革兰氏阴性菌的颜色;
■ 盐溶液提取(盐溶 Salting-in ):
NaCl
溶
解
KCl
度
Ionic strength
+=+=-
NaCl
+-
- +-+
+
-
-
+
-
++
-
+
+-
-+
-
+
+
+
-
+
-
-+ +
+-
+
-
- -+- +
+
-
分子在其等电点时,容易互相吸引,聚合成沉淀;加入 盐离子会破坏这些吸引力,使分子散开,溶入水中。
空穴泡由于受到超声波的迅速冲击而闭合,从而产生一个极为强烈的 冲击波压力,由它引起的粘滞性旋涡在介质中的悬浮细胞上造成了剪 切应力,促使细胞液体发生流动,从而使细胞破碎。
一般杆菌比球菌易破碎,G-细菌比G+细菌易破碎,对酵母菌的 效果较差, 该法在实验室小规模细胞破碎中常用。 但超声波产生的化学自由基团能使某些敏感性活性物质失活。
2.高压匀浆法(High-pressure homogenization)
——大规模细胞破碎的常用方法
采用高压匀浆器(由高压泵和匀浆阀组成,英国APV公司 和美国 Microfluidics公司均有产品出售)。
原理:
利用高压使细胞悬浮液通过针形阀,由于突然减压和高速冲 击撞击环使细胞破碎,细胞悬浮液自高压室针形阀喷出时, 每秒速度高达几百米,高速喷出的浆液又射到静止的撞击环 上,被迫改变方向从出口管流出。细胞在这一系列高速运动 过程中经历了剪切、碰撞及由高压到常压的变化,从而造成 细胞破碎。
能分解细胞壁中的类脂,使胞壁膜溶胀,细胞破裂, 胞内物质被释放出来。
甲苯、苯、氯仿、二甲苯及高级醇等。
(4)变性剂
盐酸胍(Guanidine hydrochloride)和脲(Urea)是常用的 变性剂。 变性剂与水中氢键作用,削弱溶质分子间的疏水作用,从而 使疏水性化合物溶于水溶液。
化学渗透法优点:
❖ 提高温度,降低溶液粘度、增加扩散面积、缩短扩 散距离,增大浓度差等都有利于提高酶分子的扩散 速度,从而增大提取效果。
❖ 为了提高酶的提取率并防止酶的变性失活,在提取 过程中还要注意控制好温度、pH值等提取条件。
酶的主要提取方法
提取方法
使用的溶剂或溶液
提取对象
盐溶液提取 0.02~0.5mol/L的盐溶液 用于提取在低浓度盐溶液中溶解度 较大的酶
提取率也是如非用常溶重解酶要预的处。理面包酵母,然后高压匀浆,95MPa压 ❖在生长后力期下,匀加浆4入次某,些总破能碎抑率制接或近阻100止%细。胞而单壁独物采质用合高成压匀的抑制剂
(如青霉细素浆胞、法破环,丝同碎样氨与条酸件固等下)破液,碎分率继只离续有培紧32养%密一。相段时关间。后,新分裂的
本章 目录
第二节:细胞破碎
许多酶存在于细胞内。为 了提取这些胞内酶,首先
JY92-II D超声波
需要对细胞进行破碎处理。 细胞粉碎机
1)机械破碎 2)物理破碎 3)化学破碎 4)酶解破碎
DY89-I型 电动玻璃匀浆机
高 压 细 胞 破 碎 机
细 胞 破 碎 珠
细胞破碎方法及其原理
机械破碎
通过机械运动产生的剪切 力,使组织、细胞破碎。
实验室规模的细胞破碎设备有Mickle高速组织捣碎机、 Braun匀浆器; 中试规模的细胞破碎可采用胶质磨处理; 在工业规模中,可采用高速珠磨机(瑞士WAB公司和德 国西门子机械公司制造)。
珠磨法的破碎率一般控制在80%以下:降低能耗、减少大分 子目的产物的失活、减少由于高破碎率产生的细胞小碎片不 易分离而给后续操作带来的困难。
■ 酸溶液提取
❖ 有些酶在酸性条件下溶解度较大,且稳定性 较好,易用酸溶液提取。
注意事项: pH值不能过低,以免使酶变性失活。
■ 碱溶液提取
某些化学试剂,如有机溶剂、变性剂、表面活性剂、 抗生素、金属螯合剂等,可以改变细胞壁或膜的通透 性(渗透性),从而使胞内物质有选择地渗透出来。