疟原虫显微镜镜检技术

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疟原虫的显微镜检查

疟原虫的显微镜检查

疟疾(Malaria)•系世界六大热带病和我国五大寄生虫病之一,危害极大,非洲每年约100万儿童死于疟疾•疟疾主要分布于热带、亚热带各国,我国的华南、华中(特别是云南和海南)•疟原虫属原生动物亚界--顶复门--孢子纲--疟原虫属•寄生人类的疟原虫有:间日疟原虫、恶性疟原虫、三日疟原虫和卵形疟原虫等•疟原虫通过蚊叮咬而感染人,疟疾的典型临床表现是周期性寒战、发热和出汗•疟疾诊断主要靠外周血涂片检查•用磷酸氯喹及磷酸伯氨喹治疗,对于抗氯喹虫株则宜用青蒿素类药物、或与奎宁、咯萘啶、磺胺多辛和乙胺嘧啶等联合用药疟疾的临床症状临床表现•周期性:冷(1-2h)à热(4-6h) à汗。

实际上发作周期多不典型,尤其是儿童、初发时和进入疟区的初患病例•冷:全身颤拦、皮肤鸡皮样、面色苍白,口唇与指甲发紫等;夏天盖几层棉被也不暖•热:面色绯红、皮肤灼热、体温39-40℃可伴头痛\全身酸痛,小儿或严重成人可发生惊厥、谵亡或昏迷•汗:大汗淋漓、体温急降,乏力•贫血:发作次数越多、病程越长贫血越严重。

•脾肿大、硬化:脾切面颜色变深;大可达脐下;重量可达500至1000g.慢性患者脾纤维化,包膜增厚而变硬原因•发作周期和红内期裂体增殖周期一致。

•疟原虫代谢产物(外源性热原质)和裂殖子、残余和变性血红蛋白、红细胞碎片被吞噬细胞吞食而产生内源性热原质•疟原虫对红细胞的直接破坏•脾巨噬细胞吞噬红细胞•骨髓造血受抑制•免疫病理(正常抗疟抗体+红细胞自身抗体)疟原虫的生活周期生活史中的关注点:1.感染阶段:子孢子2.感染方式:蚊虫叮咬和输血3.致病阶段:红内期原虫4.寄生部位:肝、红细胞5.媒介:蚊(为终宿主)6.诊断阶段:红内期原虫疟疾的实验诊断病原检查:1. 血涂片染色取外周血制成厚、薄血膜,经吉氏或瑞氏液染色镜检2. 采血时间•恶性疟:发作时、查环状体,发作数小时后因晚期滋养体寄生虫的红细胞滞留下皮下脂肪及内脏微血管中,不易查见。

疟原虫镜检技术操作规范

疟原虫镜检技术操作规范

疟原虫镜检技术操作规范疟原虫镜检是诊断疟疾、确定虫种及发现传染源的重要手段和方法,具有严格的操作程序和技术要求,为了统一方法、规范程序、提高血检质量,特制定本操作规范。

一、血片制作(一)所需器材载玻片玻片3张(1张作载玻片,1张作推片,1张作采血后滴于玻片备血用)采血针采用一次性采血针。

玻片盒存放50或100片玻片的木质或塑料盒。

皮肤消毒液、棉签或酒精棉球75%的酒精、安尔碘、碘伏等皮肤表面消毒剂。

记号笔用于玻片上书写血检病人基本信息。

(二)操作步骤1、载玻片基本信息登记取1张载玻片,首先用目测法将载玻片从右(磨砂处为右)到左等分成6格,接着用记号笔在第1、2格即(磨砂处)写下血检病人基本信息:编号、姓名、制片日期结果(镜检结束后补写)。

载玻片上信息应与血检登记表中的项目对应。

如图12、采血采血部位为手指末端或耳垂,婴儿可从拇趾或足跟取血。

用消毒剂消毒取血部位皮肤后,以一次性采血针迅速刺入取血部位1~2mm 深,约挤出1-2滴血,滴于玻片上(以备涂制厚薄血膜用)。

3、涂制血膜用推片的左下角刮取玻片上的血液4~5μl,涂于载玻片的第三格(靠近磨砂侧),由里向外一个方向旋转2~4圈,涂成直径为0.8~1.2cm的圆形厚血膜;再用该角沾取血液1~1.5μl血置于载玻片的中心点即(第四格前缘中点);接着用干棉球或卫生纸擦净推片角上的血渍;最后用推片的下缘置载玻片的中心点(1~1.5μl血液处),当血液在载玻片与推片之间向两侧扩展至约2cm宽时,使两玻片保持25°~35°角,从右向左迅速推成舌状薄血膜,即(薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部)。

如(图1)、(图2)疟原虫镜检涂制血膜方法示意图2薄血膜厚度应以红细胞之间互相接触而不相互重叠为佳,(直观透过玻片能清晰看到报纸上的字);厚血膜的厚度以一个油镜视野内可见到5~10个白细胞为宜。

二、固定(一)所需器材1、甲醇2、器具玻璃棒、吸管(二)操作步骤薄血膜固定薄血膜晾干后,用玻璃棒沾取或用吸管吸取少量甲醇平铺于薄血膜上,起固定薄血膜作用,(注意不能固定厚血膜)。

疟原虫镜检操作流程

疟原虫镜检操作流程

疟原虫镜检操作流程疟原虫镜检操作可有趣啦,就像一场小小的探索之旅呢。

一、准备工作。

咱们先得把要用的东西都找齐喽。

那需要啥呢?显微镜肯定是必不可少的啦,就像战士上战场不能没有枪一样。

然后就是载玻片和盖玻片,这俩就像是舞台和舞台上的小屋顶,疟原虫就在这上面表演呢。

还有采血针、酒精棉球这些小物件,采血针用来取血,酒精棉球用来消毒,它们可都是小助手。

另外,染色剂也得准备好,这染色剂就像是给疟原虫化妆的东西,能让咱们把疟原虫看得更清楚。

二、采血。

采血这一步可得小心点儿。

找个舒服的地方让被采血的人坐好或者躺好,别让人家紧张,就像跟朋友聊天似的,说“放松哈,就一下下,不疼的”。

用酒精棉球在手指尖或者耳垂轻轻擦一擦,消消毒。

然后拿起采血针,就像拿一支小小的魔法棒,轻轻一扎,血就出来啦。

把这一滴血小心地滴在载玻片的一端,可别滴太多,也别滴到外面去了,一滴小小的、圆圆的血滴就像一颗红色的小珍珠在载玻片上呢。

三、涂片。

血滴在载玻片上了,咱们就要开始涂片啦。

拿另一个载玻片的一端,轻轻地斜着靠在有血滴的载玻片上,就像小滑梯一样。

然后慢慢地把这个载玻片往前推,让血滴在两个载玻片之间均匀地铺成薄薄的一层。

这一步可有点像画画的时候把颜料涂开,要涂得薄厚均匀才好呢。

如果涂得太厚了,疟原虫就会像躲猫猫一样藏在里面,咱们就不容易看到它啦;要是涂得太薄了,可能疟原虫都没几个在上面,也不好找。

四、固定和染色。

涂片弄好之后呢,要固定一下。

这就像是给疟原虫拍个照片定住它的样子。

可以用小火苗稍微烤一烤载玻片,不过得小心别烤糊了,要不然疟原虫就被烤成小焦炭啦。

固定好之后就到染色的时候了。

把染色剂小心地滴在涂片上,让染色剂把疟原虫包裹起来,就像给疟原虫穿上一件彩色的衣服。

等染色剂在涂片上待一会儿,就像让疟原虫在染缸里泡个澡,把自己染得美美的。

五、镜检。

终于到了最激动人心的镜检啦。

把载玻片放在显微镜的载物台上,就像把宝贝放在展示台上一样。

先从低倍镜开始看,慢慢地转动粗准焦螺旋,让镜头一点点靠近载玻片,就像在寻找宝藏一样。

人体疟原虫镜检技术

人体疟原虫镜检技术

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薄血膜中大滋养体形态特征
间日疟原虫大滋养体
虫体不规则,较大;阿 米巴样空泡明显;疟色 素细小,黄褐色
恶性疟原虫大滋养体
体小,圆形;空泡小; 早期疟色素细小,金黄 色,晚期结成块状,黑 褐色
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薄血膜疟原虫形态
间日疟未成熟裂殖体
红细胞:胀大,褪色,可有薛氏 小点。
胞浆:较不规则,空泡小或消失, 浅兰色。
间日疟原虫小滋养体
约为红细胞直径的1/3; 环较粗大;核1个;2个核 和一个红细胞寄生2个环状 体,不如恶性疟原虫多见
恶性疟原虫小滋养体
约为红细胞的 1/6;环 纤细;核1~2个;
一个红细胞寄生2个环状 体的常见
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薄血膜疟原虫形态
间日疟大滋养体 红细胞:胀大褪色,出现形状大
小相等,分布均匀,数 目较多,鲜红色薛氏小 点。 大小:较大。 胞浆:不规则,浅兰色,出现阿 米巴伪足,有空泡。 核: 红色,一个。 色素:有,细小杆状,黄葛色, 分布不均匀。
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薄血膜中成熟裂殖体形态特征
间日疟原虫裂殖体
恶性疟原虫裂殖体
大于正常红细胞;裂 小于正常红细胞;裂
殖子12~24个,通常
殖子较小,8~32个,
16~18个,排列不规则; 通常8~18个,排列不
疟色素常集于一侧,
规则;疟色素成团快
黄褐色
状,黑褐色
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薄血膜疟原虫形态
间日疟大(雌)配子体 形状大小:圆或椭圆,较大。 胞浆: 深兰色。 核: 一个,较小,深红色常
卵形疟
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卵形疟
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卵形疟原虫:大滋养体

疟原虫镜检技术-制片与染色PPT课件

疟原虫镜检技术-制片与染色PPT课件
能够根据形态特征鉴别不同种类 的疟原虫,如恶性疟原虫、间日
疟原虫等。
病例分析
通过实际病例分析,提高疟原虫 形态鉴别能力。
诊断结果的判定与报告
结果判定
根据镜下观察到的疟原虫形态特征,准确判定是 否感染疟疾。
报告撰写
按照规范撰写诊断报告,包括患者基本信息、临 床表现、镜检结果和诊断意见等。
沟通与反馈
及时与临床医生沟通,提供诊断意见,并根据医 生反馈调整镜检技术。
05
注意事项与质量控制
制片过程中的注意事项
样本采集
采集的血液样本应新鲜,避免长时间放置,以免影响制片效果。
血膜制备
血膜应均匀涂片,避免出现厚薄不均或气泡,影响镜检结果。
干燥与固定
制片应在室温下自然干燥,避免过热或过冷,以免影响染色效果。
染色过程中的注意事项
染色液选择
01
根据制片要求选择合适的染色液,确保染色效果良好。
血膜的固定与干燥
固定方法
将固定液滴加在血膜上,使血膜完全浸没在固定液中,静置 10分钟,然后晾干或用吹风机吹干。
干燥注意事项
确保血膜干燥彻底,以免在染色过程中出现脱落或染色不均 的情况。同时,干燥后的血膜应妥善保存,避免污染和损坏 。
03
染色技术
染料的种类与选择
染料种类
注意事项
生物染料、荧光染料、酸性染料等。
02
制片技术
血液样本采集与处理
血液样本采集
采集患者耳垂或指尖血,确保血 液新鲜、无污染。
血液处理
将采集的血液与等量抗凝剂混合 ,摇匀后静置10分钟,然后离心 分离出血浆和血膜。
血膜的制作
血膜板制作
选择适当的血膜板,用吸管吸取少量 血浆,均匀滴加在血膜板上,形成圆 形血膜。

疟原虫实验室镜检-课件(1)

疟原虫实验室镜检-课件(1)

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以下照片在一般发热病人血片中是观察不到的
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寄生的红细胞
染色后,寄生的红细胞溶解,轮 廓消失,但有时尚留下一“影子” 或小点。
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实图
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混合感染
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谢谢!
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小于正常红细胞;裂殖子 较小,8~26个,通常8、 18个,排列不规则,疟 色素成团块状,黑褐色
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雌配子体(薄血膜)
间日疟
恶性疟
大于正常红细胞,圆形;核 小.致密,深红色,偏于一 侧,胞浆深蓝色;疟色素散 在

疟原虫显微镜镜检技术

疟原虫显微镜镜检技术
(2)染液的新旧 新配制的染液因色素尚 未充分溶解,染色力较弱且常呈现偏碱性。 染液存放时间越久,染色力越强。通常在 染液配制1~2周后才使用,盛装染液的瓶 子应加塞盖密。以防吸潮而影响染液质量。
影响染色效果的因素
(3)染液稀释后使用时间 吉氏和瑞氏染 液的主要成份是美蓝、伊红和由美蓝氧化 产生的天青,三者能在酒精溶液中溶解, 但在水溶液中伊红遇到美蓝和天青即产生 沉淀。因此,必须在稀释染液当时使用, 一般在半小时内染色力最强。
正确的推片姿势
取血量及涂片法(涂片操作)
厚血膜 用推 片的一角, 从取血部位刮取约4微升 血量(相当于火柴头 小),使血滴与平置的 载玻片接触,再由里向 外一个方向旋转,转 2~4圈,涂成直径 0.8~1厘米大小圆形厚 血膜,血膜厚薄均匀, 过厚易于脱落,过薄达 不到检出率的要求。
涂制厚、薄血膜的位置
影响染色效果的因素
(4)染液的稀释浓度 染液的浓度高其着 色就快而深,从而疟原虫寄生红细胞的薛 氏点粗大显著,但颜色常偏碱;染液浓度 过低则染色时间久,颜色偏酸,薛氏点不 明显或消失。
(5)染色时间 染色时间长染色效果好, 反之较差。室温高则着色快,染色时间可 略缩短,气温低可适当延长。因此染色时 间应根据染液的质量、新旧、稀释浓度和 气温而适当增减。
4. 被寄生的红细胞 •被间日疟原虫寄生的红细胞胀大、颜色变淡。 疟原虫发育至阿米巴样体,红细胞出现薛氏 点。 •被恶性疟原虫寄生的红细胞大小正常或稍微 缩小,红细胞上有时见到茂氏点。 •被三日疟原虫寄生的红细胞大小正常,红细 胞上可见到齐氏点。 • 被卵形疟原虫寄生的红细胞稍胀大或不胀大, 呈卵形或一端呈伞矢状,薛氏点出现较早, 于环状体阶段便可查见。
血片的染色
单张血片染色:薄血膜经固定干燥后,用 2%吉氏染液稀释液1~2毫升,滴入血片标本 上染色30分钟左右;或用中性蒸馏水1毫升, 加吉氏母液1~2滴,混合均匀后滴入血片标 本上,染色10~20分钟,然后用清水轻轻将 片上的染液冲洗干净,(切勿先倒掉染液 再用水冲洗)晾干镜检。

疟原虫的镜检技术-制片染色

疟原虫的镜检技术-制片染色
免疫染色技术
利用特异性抗体对疟原虫进行染色, 提高疟原虫的染色效果和特异性。
人工智能在疟原虫镜检中的应用
图像识别与分类
利用人工智能技术对显微镜下的疟原虫图像进行自动识别、分类和计数,提高镜 检的准确性和效率。
数据挖掘与分析
通过人工智能技术对疟原虫镜检数据进行分析和挖掘,发现数据间的关联和规律 ,为疟疾防控提供科学依据。
固定涂片时要选用适当的 固定剂,避免涂片脱落。
染色时要选用适当的染色 剂,按照染色剂的要求进 行操作,确保染色效果良 好。
镜检时要仔细观察疟原虫 的结构特征,避免误诊和 漏诊。
冲洗时要彻底去除多余的 染料和杂质,避免干扰观 察。
03
疟原虫镜检制片染色技 术
疟原虫镜检制片染色技术的原理
原理概述
疟原虫镜检制片染色技术是一种 用于检测疟原虫的病理学方法。 通过制备血液涂片,并对其进行 染色,可以观察到疟原虫的存在
疟原虫镜检技术的应用场景
在疟疾流行地区,疟原虫镜检技 术常用于对疑似疟疾患者进行快
速诊断,以指导治疗和防控。
在实验室研究中,疟原虫镜检技 术可用于研究疟原虫的生物学特 性、药物敏感性以及疫苗开发等
方面。
在公共卫生领域,该技术也可用 于监测和评估疟疾的流行趋势和
传播风险。
02
制片染色技术
制片染色技术的原理
疟原虫的镜检技术-制 片染色
目 录
• 疟原虫镜检技术简介 • 制片染色技术 • 疟原虫镜检制片染色技术 • 疟原虫镜检制片染色技术的发展趋势
01
疟原虫镜检技术简介
疟原虫镜检技术的定义
01
疟原虫镜检技术是指通过显微镜 观察疟原虫在人体内的形态、结 构和生长过程,从而对疟疾进行 诊断和研究的实验技术。

疟原虫镜检技术

疟原虫镜检技术


甘油
3ml

纯甲醇
97 ml
• 将瑞氏染剂粉置于研钵内,加入甘油
充分研磨后,然后加入少量甲醇碾磨后倒 入有玻塞瓶中,再分次用甲醇冲洗碾钵中 的瑞氏染粉甘油液,倒入瓶中,直至洗完。 充分摇匀,一般放置一二星期后,再过滤
应用(保存时间愈久,染色力愈佳)。
• 急用时,放置24小时后过滤也可使用。
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
(2)缓冲液的配制
PH M/15 Na2HPO4 M/15 KH2PO4
(ml)
( ml)
DW (ml)
6.8
49
51
900
7.0
63
37
900
7.1
68
32
900
7.2
73
27
900
7.4
81
19
900
• 加缓冲液的PH可用试纸或0.02%酚红液测定。
• 亦可用PH7.0中性蒸馏水稀释染剂
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
可用井水、河水、泉水或雨水。为了使血膜着色较好。
• (1)两种贮备液的配制:
• 贮备液I • •
1/15M磷酸氢二钠(Na2HPO4)溶液
Na2HPO4 9.5 g 蒸馏水 1000 ml
• 贮备液Ⅱ 1/15M磷酸二氢钾 (KH2PO4 )溶液

KH2PO4 9.07 g

蒸馏水 1000 ml
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
一、显微镜镜检用于疟疾诊断
• 显微镜镜检仍是目前广泛应用的疟疾诊断
技术(金标准)
• 主要优点
- 特异高 - 能区分虫种 - 能分期 - 能计数 - 1小时内能完成诊断程序

疟原虫镜检技术

疟原虫镜检技术

疟原虫镜检技术血片制作与染色一、血片制作(一)所需器材1、载玻片:玻片使用前应清洗。

新玻片应先浸入有液态洗涤剂的清水中10~20分钟,然后用干净棉巾逐个擦拭,再用清水冲洗干净,晾干,最后用干净、柔软的棉巾将玻片擦亮。

用于特殊的目的时,最后可将玻片浸泡在95%酒精中5~10分钟,再将玻片擦干擦亮。

已用过的玻片应先浸泡于洗涤剂溶液中1~2天,或浸泡于煮沸的5%肥皂水中1~2小时,再移到新配置的洗涤剂溶液中1~2小时,逐个擦去玻片上旧的血膜痕迹,用清水漂洗干净,再将玻片擦干擦亮。

洗净的玻片每10~20张用白纸包好放入塑料袋内,保存于干燥环境中备用。

2、采血针:使用一次性釆血针。

3、玻片盒:为防止污染和苍蝇吸食血膜,新制作的血膜应放在玻片盒中,厚血膜放置时要保持水平,直到充分干燥。

4、75%酒精棉球:用于采血前后的消毒。

5、记号笔或铅笔:用于玻片上书写号码。

(二)采血部位及取血方法采血部位以耳垂较为合适,也可在手指末端采血,婴儿可从拇趾或足跟取血。

先用75%酒精棉球消毒取血部位后,以一次性采血针迅速刺入取血部位1~2mm深,然后用左手大拇指、食指和右手中指协同挤出血滴。

(三)涂制血膜取玻片2张,1张作载片,1张作推片(具有光滑边缘)。

用右手拇指和食指夹持推片侧缘中部,用推片的左下角刮取血液4~5μl,再用该端中部刮取血液1~1.5μl。

将左下角的血滴涂于载片的中央偏右处,由里向外划圈涂成直径为0.8~1cm的圆形厚血膜(厚度以1个油镜视野内可见到5~10个白细胞为宜)。

用干棉球抹净玻片角上的血渍,然后将推片下缘平抵载玻片的中线,当血液在载玻片与推片之间向两侧扩展至约2cm宽时,使两玻片保持25°~35°角,从右向左迅速向前推成舌状薄血膜,制成的薄血膜应在玻片上形成平铺的血细胞,细胞之间互相接触而不相互重叠。

每张载玻片上分别做1个薄血膜,1个厚血膜。

取干净玻片及推片各一张,用右手大拇指和食指夹持推片侧缘中部,用推片的左下角刮取血液4~5μl(约火柴头大小),再用该端中部刮取血液1~1.5μl。

疟原虫镜检技术

疟原虫镜检技术
● 如果不知患者的白细胞数,则每微升血以8 000个白
细胞计数(国际标准) 。
白细胞疟原虫计数法
●例如 计数200 WBC中有35个疟原虫,在不知患
者白细胞数的情况下,以每微升血8 000个白细 胞计数, 由此计算出每微升血液疟原虫密度为: 35(计数的疟原虫数)÷200(计数的白细胞)x 8000(每微升血白细胞数) =1400 / μl 答:该患者的疟原虫密度为1400 / μl。
2. 原虫细胞浆呈条带状或方形
3. 成熟裂殖体呈菊花状 4. 裂殖子数通常为6-12个 5. 齐氏点(西门氏点)较少见
卵形疟原虫形态特征
1. 被寄生红细胞正常大小或略涨大,边 缘呈彗星状也称齿轮状 2. 疟原虫通常呈椭圆形 3. 薛氏点与间日疟相似
4. 裂殖子数通常为6-12
● 四种人体疟原虫都有双核和多重感染现象
red cell
A typical Plasmodium malariae presentation
Female patient, arrived from Brazil two weeks previously. Flu like symptoms since arrival.
● 间日疟原虫分布于我国大部分地区, 中部 地区病例较多 ● 病程良性, 有复发
三日疟 P.malariae
●遍及热带和亚热带地区,特别是东、西非洲,呈片状、 块状分布 ●三日疟在我国非常少见,只在南方有散在报告
卵形疟 (蛋形疟) P.ovale
● 主要分布非洲。缅甸、东南亚有散在报告 ● 在我国卵形疟消灭
P. ovale
(P.m.)
(P.o.)
恶性疟 P.falciparum
● 分布热带、亚热带地区,是非洲的重要疾病 ● 我国流行区域为云南省和海南省 ● 四种疟原虫中致病力最强,无免疫力者 感染 后出现急性症状,不及时治疗可危及生命(脑 型疟)

疟疾镜检的实验室技术

疟疾镜检的实验室技术

疟疾镜检的重要性
疟疾镜检能够快速、 准确地诊断疟疾,为 及时治疗提供依据。
对于疟疾高发地区, 疟疾镜检是监测和评 估疟疾流行情况的重 要手段。
通过疟疾镜检,可以 及早发现疟疾,防止 病情恶化,减少并发 症的发生。
疟疾镜检的历史与发展
疟疾镜检最早可追溯到19世纪末期,当时使用简单的显微镜观察血液样本。
免疫学检测
检测方法
采用酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫荧光抗体试验(IFA)等方法检测血液中疟 原虫抗原或抗体。
检测原理
利用特异性抗体与疟原虫抗原结合的原理,通过显色反应或荧光标记来判断疟原 虫的存在。
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疟疾镜检的步骤与操作
样本采集与处理
采集时间
选择疟疾感染后红细胞期, 即发热后2-3天采集样本, 此时疟原虫数量最多,检 出率最高。
改进样本处理方法,提高疟原虫 的提取和富集效果,降低背景干
扰,提高检测灵敏度。
特异性抗体标记
利用特异性抗体标记疟原虫,降 低非特异性染色,提高检测特异
性。
基因检测技术
利用基因检测技术,对疟原虫基 因进行检测,提高检测的灵敏度
和特异性。
降低操作复杂度与成本
简化操作流程
优化检测流程,减少操作步骤,降低操作复杂度。
采集部位
通常采集静脉血液,常用 肘静脉或耳垂。
采集量
根据检测需求,一般采集 5-10ml血液。
血液样本处理
离心分离
将采集的血液放入离心管中,以 一定速度离心,使红细胞下沉, 分离出血浆和白细胞层。
制备涂片
用毛细管吸取白细胞层中的疟原 虫,均匀涂在载玻片上,晾干后 进行显微镜检查。
显微镜检查
显微镜类型
镜检过程需要经过多个步骤,包括血液采集、制片、染色和观察等,操作较为复杂。

疟原虫镜检技术操作规

疟原虫镜检技术操作规

疟原虫镜检技术操作规范1.目的指导实验室检验人员正确使用和维护全显微镜,完成疟原虫检测项目2、范围适用于实验室检验人员3、职责检验人员需按照本操作规程使用和维护全显微镜, 确保仪器在最佳状态下运行,以便得到正确的结果,提高结果准确率。

4、作业指导4.1.需用器材显微镜单、双目显微镜均可,目镜一般以5X为宜(有的用10X),物镜必须用油镜(100X)、镜油、擦镜纸、二甲苯或酒精乙醚4.2操作步骤4.2.1、血膜上滴加镜油滴一滴镜油在血膜上,再将血片置载物台上。

4.2.2、镜检用目镜5×和物镜10~40×低倍镜检下找到血膜,再将物镜转换成油镜(100×),查找疟原虫,吉氏染色较好的血膜,红细胞呈淡红色,嗜酸性细胞的颗粒呈鲜红色,淋巴细胞及疟原虫胞浆呈蓝色或淡蓝色,白细胞的核呈紫蓝色,疟原虫的核呈红色。

4.2.3、观察血膜的方法镜检时从血膜的一端开始,自上而下,自左而右,逐个视野顺序查看。

发热病人血片至少要查完200个视野以上,普查带虫血片则需看完全片,方可报告结果。

镜检疟原虫一般只查厚血膜,薄血膜作为疟原虫的分类定种。

4.3、结果报告结果报告分阳性和阴性,阳性者至少要查见一个典型疟原虫(并需鉴别虫种和期别)方可确定;以查完整个厚血膜,未查见疟原虫者判为阴性。

4.4、注意事项4.4.1染色前血膜的保存新制作的血膜应防止污染和苍蝇吸食血膜,新鲜厚血膜放置时要保持水平,直到充分干燥后可不溶血直接染色。

血膜放置时间,夏天不宜超过48小时,冬天不宜超过72小时,否则厚血膜会自然固定而不能溶血,影响镜检。

不能即时染色的血膜,可先用甲醇固定薄血膜,将厚血膜溶血,晾干后包好,放入干燥器中,置于冰箱内保存。

临用时,将干燥器放置室温中1~2小时后取出血片。

4.4.2、患者资料应登记详细,确保能追踪随访,个案调查、登记、统计等资料应有专人负责保管。

4.4.3、镜检人员应加强自身防护,操作戴手套、穿工作服。

疟原虫的镜检技术

疟原虫的镜检技术

正确使用显微镜步骤
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将载玻片放在载物台上, 用压片夹固定。
转动转换器,将低倍物镜 对准通光孔。
调节光圈和反光镜,使视 野亮度适宜。
转动粗准焦螺旋,使镜筒 缓缓下降,直到物镜接近 载玻片。
一只眼注视目镜内,同时 逆时针方向转动粗准焦螺 旋,使镜筒缓缓上升,直 到看清物像为止。再略微 转动细准焦螺旋,使看到 的物像更加清晰。
结果判断失误
应结合临床症状和其他检查结果进 行综合判断,避免误诊或漏诊。
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镜检技术在疟疾防控中应用前景
提高镜检技术准确性和效率
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改进显微镜设备
采用高分辨率、高对比度 的显微镜,提高疟原虫检 测的准确性。
优化镜检流程
建立标准化的镜检操作流 程,减少人为因素对结果 的影响,提高检测效率。
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常见误区及问题解决方法
涂片制作中常见问题
涂片过厚或过薄
染色时间不足或过长
应掌握适当的涂片厚度,过厚会影响 观察,过薄则可能漏检。
应严格控制染色时间,确保疟原虫着 色清晰。
血液未充分干燥
涂片后应等待血液完全干燥,否则在 染色过程中可能导致颜色不均匀。
观察过程中常见问题
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Hale Waihona Puke 0103显微镜使用不当
100%
流行病学调查
通过对人群进行疟原虫检测,可 以了解疟疾的分布情况、流行趋 势和传播途径等信息,为制定防 治策略提供依据。
80%
药物疗效评价
在治疗过程中进行疟原虫检测, 可以观察药物的疗效和患者的恢 复情况,及时调整治疗方案。
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镜检技术原理及方法

镜检疟原虫技术课件

镜检疟原虫技术课件

卵形疟原虫:主要通过按蚊传播,症状较轻,周期性发作
诺氏疟原虫:主要通过按蚊传播,症状较轻,周期性发作
热带疟原虫:主要通过按蚊传播,症状较轻,周期性发作
疟原虫的生活史
疟原虫是一种单细胞原生动物,属于疟原虫属
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无性生殖阶段:疟原虫在人体内繁殖,产生大量子代疟原虫
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有性生殖阶段:疟原虫在人体内形成配子体,进行有性生殖,产生新的疟原虫
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调整显微镜:调整光源、物镜、目镜等,确保图像清晰
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观察疟原虫:在显微镜下观察疟原虫形态、运动方式等特征
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拍照记录:拍摄疟原虫图像,以便后续分析与研究
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镜检疟原虫Leabharlann 步骤采集血液样本:使用抗凝管采集患者的外周血。
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制备血涂片:将血液样本滴在载玻片上,用推片器均匀涂抹。
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固定和染色:将血涂片用固定液固定,然后用疟原虫染色液染色。
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镜检疟原虫技术的应用
疟疾的诊断与治疗
镜检疟原虫技术是诊断疟疾的重要手段
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镜检疟原虫技术可以指导抗疟药物的选择和剂量
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镜检疟原虫技术可以快速、准确地诊断疟疾
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镜检疟原虫技术可以监测抗疟药物的疗效和耐药性
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疟原虫研究的进展
疟原虫基因组测序:揭示了疟原虫的遗传信息,为抗疟药物研发提供了新思路
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镜检疟原虫时,应仔细观察,避免漏检和误检
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疟原虫检测结果分析
阳性结果的意义
感染疟原虫:阳性结果表示患者体内存在疟原虫感染。
疾病诊断:阳性结果有助于疟疾的诊断和治疗。
疾病监测:阳性结果有助于疟疾的流行病学监测和预防。

显微镜下疟原虫形态鉴别特征

显微镜下疟原虫形态鉴别特征

02 显微镜检查方法
薄血膜法
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制备薄血膜
取患者耳垂或指尖血制成 薄血பைடு நூலகம்,待其自然干燥后, 用甲醇固定,再用水冲洗。
镜检
在显微镜下观察薄血膜, 可见到红细胞内不同发育 阶段的疟原虫,如环状体、 滋养体、裂殖体等。
优缺点
薄血膜法能清晰显示疟原 虫形态,但操作繁琐,且 易漏检。
厚血膜法
制备厚血膜
生物学特性及生活史
疟原虫的生活史包括红细胞外期和红细胞内期两个阶段,其中红细胞外期主要在肝 脏中进行,红细胞内期则在红细胞中进行。
疟原虫通过蚊虫叮咬传播,进入人体后首先进入肝脏进行繁殖,然后侵入红细胞进 行裂体增殖,最后导致红细胞破裂并释放出裂殖子和代谢产物。
疟原虫具有变形能力,可以在红细胞内形成不同形态的虫体,如环状体、滋养体、 裂殖体等。
将患者血液滴在载玻片上, 用推片制成厚薄均匀的血膜 ,待其自然干燥后,用溶血 剂溶解红细胞。
镜检
在显微镜下观察厚血膜, 可见到被溶解红细胞后释 放出的疟原虫。
优缺点
厚血膜法操作简便,检出 率高,但疟原虫形态不够 清晰。
荧光抗体染色技术
荧光抗体标记
将特异性荧光抗体与疟原虫表面 抗原结合,形成荧光标记的复合
05 显微镜下鉴别诊断技巧与 注意事项
鉴别诊断流程梳理
样本制备
确保样本薄而均匀,避 免过厚导致重叠影像,
影响观察。
显微镜选择
使用高倍显微镜,确保 足够放大倍数以观察疟
原虫细节。
观察步骤
先观察整体形态,再注 意细胞核、细胞质等关
键部位特征。
鉴别诊断
结合其他相似病原体特 征进行比较,排除干扰
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2.
核 即细胞核或染色质粒。在正常情况下核呈鲜红 色,呈圆形或不规则的颗粒状。核的结构致密,只 有在个别发育阶段较为疏松,例如间日疟原虫雄配 子体的核。有时因胞浆厚密或染色深蓝,使核呈暗 红或紫红色。 3. 疟色素 不着色,颜色和颗粒的形状,因疟原虫种类而 异。间日疟原虫的色素颗粒呈短棒状,黄褐色;恶 性疟原虫的色素颗粒呈细砂状,黑褐色;三日疟原 虫的色素呈砂粒状,深褐色;卵形疟原虫的色素与 间日疟原虫相似。疟色素在虫体内散在分布或聚集 成团块。
疟原虫显微镜镜检技术
东安县疾病预防控制中心 周永玲 2011.07.10
疟疾简介
疟疾是一种古老的传染病,俗 称“冷热病”、“打摆子”、 “发疟子”、“脾寒”、 “瘴气”等,是由疟原虫寄 生于人体引起的传染性寄生 虫病。
寄生人体的四种疟原虫
间日疟原虫 [Plasmodium vivax,P.v] 三日疟原虫[P.Malariae,P.m] 恶性疟原虫 [P.Falciparum,P.f] 卵形疟原虫[P.Ovale,P.o] 我国主要是间日疟常见,恶性疟次之, 三日疟偶尔发现,卵形疟已无病例报告。

(2)染液的新旧 新配制的染液因色素尚 未充分溶解,染色力较弱且常呈现偏碱性。 染液存放时间越久,染色力越强。通常在 染液配制1~2周后才使用,盛装染液的瓶 子应加塞盖密。以防吸潮而影响染液质量。
影响染色效果的因素

(3)染液稀释后使用时间 吉氏和瑞氏染 液的主要成份是美蓝、伊红和由美蓝氧化 产生的天青,三者能在酒精溶液中溶解, 但在水溶液中伊红遇到美蓝和天青即产生 沉淀。因此,必须在稀释染液当时使用, 一般在半小时内染色力最强。
疟原虫血片检查结果确定
检查全部厚血膜未查见疟原虫者判为 阴性。 显微镜下查见疟原虫,根据疟原虫形 态确定恶性疟、间日疟、三日疟、卵 形疟或混合感染。

制作血膜的注意事项

1. 玻片清洗时,避免玻片碰撞、磨损。制 作血膜的载玻片必须完全清洁而毫无油渍 或污垢。制片时,手指只能持载片的边缘, 不能接触玻片表面,以免油污使薄血膜产 生空白区以及厚血膜脱落。作为推片的玻 片边缘一定要平滑,才能使推出的血膜均 匀一致。
影响染色效果的因素


血片染色好坏除了与玻片是否清洁,血片 制作质量好坏等有关外,还受到以下几个 因素的影响: (1)染料溶剂的质量 染料、甲醇和甘油 如果不纯,常使配制的染液偏酸或偏碱而 影响染色效果。因此必须用分析纯的甲醇 和中性甘油,而且在配制时所用的器具必 须干净而无水份。
影响染色效果的因素



镜检疟原虫方法简述 19世纪后期,显微镜的出现使 人们不断发现了传染病的病因。 1880年法国军医拉韦朗第一次 见到并描述了人红细胞内的疟 原虫,至此才解开了困扰人们 数千年的疟疾的病因之谜。
镜检疟原虫方法简述
目前用于疟疾诊断的实验室检测包括 病原学检查、免疫学检测和分子生物 学检测三类。镜检疟原虫由于具有操 作简便、敏感、价廉和可鉴别虫种等 优点,广泛用于疟疾的病原学诊断已 愈近一个世纪,仍是目前最常用的方 法,也是我国疟疾诊断标准确定的实 验室检查方液的配制

将瑞氏染剂粉 1g 置于研钵内,加入 15ml 甘油充 分研磨后,倒入有塞玻璃瓶中,再用 500ml甲醇 洗出研钵中的甘油溶液,倒入瓶中,摇匀后,置 室温下,每天摇动5分钟,3天后即可使用。 此方法染色的时间短,但染色效果不如吉氏染液 效果稳定,又不能大量血片染色,可用于门诊应 急血片用。
制作血膜的注意事项

3. 血膜让其自然干燥,切忌用太阳晒或火 烤,干透后才能用甲醇固定薄血膜。夏天 标本尽可能24~48小时内固定染色;冬天 也不能超过72小时。放置时间越久,厚血 膜越不易脱血,染色效果也差。若不能及 时染色,薄血膜宜先用甲醇固定(1~3分 钟)然后用过滤清水对厚血膜溶血,晾干 固定后装入盒内盖严,待以后染色。
血膜的制作(取血操作)
取血方法 采血部位一般人为耳垂,指头, 通常在耳垂取血(现场取血建议用大头针 采血,一人一针,避免血传疾病)。先用 75%酒精棉球消毒取血部位(冬季用手捻 动耳垂使其充血后再行消毒),待酒精干 后,用左手拇指和食指紧捏耳垂上方,右 手持消毒针迅速刺入耳垂下端1~2毫米, 不宜过深或过浅。然后用右手中指轻轻向 挤压出血。
疟原虫在RBC内的形态 (三期六种形态)
滋养体期:大、小滋养体 裂殖体期:成熟、未成熟裂殖体 配子体期:雌、雄配子体

人体疟原虫的基本结构
疟原虫基本构造为 细胞质(胞浆)、核和 疟色素。 1.细胞浆 被染成蔚蓝色或深蓝色,随着虫体发育长 大,细胞浆逐渐增多。间日疟原虫发育到 大滋养体阶段,胞浆呈阿米巴样活动,胞 浆内有空泡。
制作血膜的注意事项

2. 刚涂制的血膜要平放在标本盒内,厚血 膜未干前勿使标本盒倾斜,以免血膜倾向 一侧,造成血膜厚薄不均,厚处不溶血和 着色而影响检查结果;晾干血膜时应注意 防尘、防止苍蝇、蟑螂等昆虫吮吸血膜, 干后应及时装入标本盒并盖严,新的木制 标本盒需敞开放置一段时间,让木醇挥发 后才能使用,以免厚血膜红蛋白被其固定, 不能溶血或染色效果不佳。
用于检查疟原虫的血涂片有两种: 一种是将血液涂呈薄膜状,称薄血膜。 一种是血液涂成圆盘,称厚血膜。 薄血膜上的血细胞要求平辅在玻片上 面。
血膜的制作(取血时间)

取血时机 现症病人一般可随时取血,疟疾普 查 时可不考虑取血时机。 在诊断或需要某期疟原虫作标本时,则应掌握 适宜的取血时机。间日疟在寒热发作时,外周 血液中主要可见环状体期;发作后数小时,环 状体发育到滋养体期,疟色素形成,形态较易 辩认,为诊断的有利时机;36~48 小时,可检 出裂殖体;发作一、二次后,配子体出现较多。 恶性疟较理想的取血时间是在发作后至20小时 内取血,初发患者退热后常查不到原虫。
4. 被寄生的红细胞 •被间日疟原虫寄生的红细胞胀大、颜色变淡。 疟原虫发育至阿米巴样体,红细胞出现薛氏 点。 •被恶性疟原虫寄生的红细胞大小正常或稍微 缩小,红细胞上有时见到茂氏点。 •被三日疟原虫寄生的红细胞大小正常,红细 胞上可见到齐氏点。 • 被卵形疟原虫寄生的红细胞稍胀大或不胀大, 呈卵形或一端呈伞矢状,薛氏点出现较早, 于环状体阶段便可查见。
影响染色效果的因素

(7)染色后不要直接将染液倒掉,应沿玻 片或染色缸边缘加水使染液表面一层溢出, 并轻轻冲洗,以免染液色素颗粒沾污血膜。
疟原虫形态特征和鉴别要点



在RBC内发现疟原虫是确诊疟疾和鉴别虫种 的重要依据 疟原虫基本构造相同--细胞膜、质、核 瑞氏或姬氏染色:核染成紫红色,胞质呈 兰色,疟原虫消化血红蛋白产物-疟色素呈 棕黄色 疟原虫在RBC内各期形态各不相同
镜检目的与意义


疟疾诊断标准中把疟疾病例分为疑似病例、 临床病例、确诊病例和带虫者,前两者依 据流行病学史和临床表现即可做出诊断, 而后两者需通过发现病原体方能做出诊断。 通过对发热病人血检达到确诊疟疾病例。 及时发现传染源和明确感染的疟原虫种类, 以能针对虫种选择正确的治疗方案。
血片镜检
血片制作

血片的染色 吉氏染液血片染色方法 (推荐使用此方法)


先用甲醇或无水酒精固定薄血膜,待干后进行染色。在 固定薄血膜后用清水对厚血膜溶脱血红蛋白可用滴管滴 水于厚血膜上,待血膜呈灰白色时,将水倾去,晾干后 进行染色。 成批血片染色:将已固定薄血膜的血片插入染色缸,倒 入2%吉氏染液稀释液(2毫升原液加中性蒸馏水98毫 升稀释均匀即成),同时对厚薄血膜染色30分钟(如染 液不合标准时,得酌情增减染色时间),然后用清水轻 轻将染液冲去,再用清水轻轻冲洗一次,干净后将血片 标本(血膜面朝下)插于晾干板上,待干镜检。


在学习镜检疟原虫之前,必须先对正常厚薄血膜 中各种血细胞的形态、内部结构和染色性质加以 识别。 学习镜检疟原虫,首先要学看薄血膜,在基本上 掌握薄血膜中疟原虫形态后,才学习镜检厚血膜。 镜检疟原虫一般只查厚血膜,薄血膜仅作为原虫 分类时参考和血片编号之用。 镜检疟原虫必须用油镜头配合5X低倍目镜镜检, 当发现疑难问题时可调换10X目镜进行观察。 检查时应从厚血膜的上缘开始,使血膜从上而下, 自左至右,由右至左,一行接一行,一个视野稍 叠一个视野顺序地查完整个血膜。
先用蜡笔在厚、薄血膜间划一界限,滴几 滴蒸馏水在厚血膜上溶血。溶血后倾去水 滴。在薄血膜上加瑞氏染液 5 ~ 8 滴,染色 1 ~ 2 分钟。然后再加 5 ~ 8 滴蒸馏水于薄血 膜上,用吸管将染液与蒸馏水混合均匀后, 把染液引到厚血膜上,使厚血膜再染色 10 分钟。用清水轻轻冲去染液,晾干。
血片的镜检
影响染色效果的因素


(4)染液的稀释浓度 染液的浓度高其着 色就快而深,从而疟原虫寄生红细胞的薛 氏点粗大显著,但颜色常偏碱;染液浓度 过低则染色时间久,颜色偏酸,薛氏点不 明显或消失。 (5)染色时间 染色时间长染色效果好, 反之较差。室温高则着色快,染色时间可 略缩短,气温低可适当延长。因此染色时 间应根据染液的质量、新旧、稀释浓度和 气温而适当增减。
血膜的制作(取血操作)
取血量及涂片法(涂片操作)
薄血膜 取洁净的载玻片2张,1张 平置在桌上,以左手拇指,食指夹 持载玻片两端(手指切勿接触玻片 表面),用另一张边缘平滑(最好 为磨口边缘)的载玻片做推片,用 推片一端边缘的中点从取血部分取 约 1 微升的血量(相当于 1/4 火柴 头大小),使血滴与平置的载玻片 接触,并形成 25~30 度夹角,待 血液向两侧扩展约 2 厘米长度时, 均 匀 而 迅 速 地 轻 轻向左推出 ( 约 2.5厘米长),整个血膜成舌形。
血片的染色
单张血片染色:薄血膜经固定干燥后,用 2%吉氏染液稀释液1~2毫升,滴入血片标本 上染色30分钟左右;或用中性蒸馏水1毫升, 加吉氏母液1~2滴,混合均匀后滴入血片标 本上,染色10~20分钟,然后用清水轻轻将 片上的染液冲洗干净,(切勿先倒掉染液 再用水冲洗)晾干镜检。
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