组胺含量的测定5
组胺测定实验报告
一、实验目的1. 学习组胺的提取和分离方法。
2. 掌握紫外分光光度法测定组胺含量的原理和方法。
3. 培养实验操作技能和数据处理能力。
二、实验原理组胺（histamine）是一种广泛存在于动物组织中的生物胺，具有多种生物学功能。
组胺的测定对于研究其生物学作用、病理变化以及药物疗效等具有重要意义。
本实验采用紫外分光光度法测定组胺含量，其原理是组胺在特定波长下具有特征吸收，通过测定其吸光度，可以计算出组胺的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：组胺标准品、样品、乙腈、磷酸盐缓冲溶液、氯化钠等。
2. 仪器：紫外分光光度计、电子天平、离心机、恒温水浴锅等。
四、实验方法1. 标准曲线的绘制（1）准确称取一定量的组胺标准品，用乙腈溶解并定容至一定体积，配制成一系列不同浓度的组胺标准溶液。
（2）在紫外分光光度计上，以磷酸盐缓冲溶液为空白，于特定波长下测定各浓度组胺标准溶液的吸光度。
（3）以组胺浓度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。
2. 样品中组胺含量的测定（1）准确称取一定量的样品，用乙腈溶解并定容至一定体积。
（2）离心分离，取上清液。
（3）在紫外分光光度计上，以磷酸盐缓冲溶液为空白，于特定波长下测定样品溶液的吸光度。
（4）根据标准曲线，计算样品中组胺的含量。
五、实验结果与讨论1. 标准曲线的绘制根据实验数据，绘制组胺标准曲线，其线性范围为0.1～10.0 μg/mL。
相关系数R²=0.9987，表明标准曲线线性良好。
2. 样品中组胺含量的测定根据标准曲线，计算样品中组胺的含量。
结果如下：样品1：组胺含量为2.5 μg/mL样品2：组胺含量为3.8 μg/mL样品3：组胺含量为1.2 μg/mL3. 讨论本实验采用紫外分光光度法测定组胺含量，操作简便、准确度高、重复性好。
实验结果表明，该方法适用于样品中组胺含量的测定。
在实验过程中，需要注意以下几点：（1）样品处理过程中，应尽量避免组胺的损失。
食品中组胺的测定
组胺的检测组胺是自体活性物质之一，在体内由组氨酸脱羧基而成，组织中的组胺是以无活性的结合型存在于肥大细胞和嗜碱性粒细胞的颗粒中，以皮肤、支气管粘膜、肠粘膜和神经系统中含量较多。
当机体受到理化刺激或发生过敏反应时，可引起这些细胞脱颗粒，导致组胺释放，与组胺受体结合而产生生物效应。
抗组胺是拮抗组胺对人体的生物效应，即应用抗组胺药物。
抗组胺受体就是拮抗组胺的H1和H2受体。
由于此两种受体在人体内分布不同而产生不同的效应，它是抗组胺药应用治疗疾病的生理药理基础。
毒理药物中毒组胺主要用于胃分泌功能检查，作最大酸分泌(MAO)测定。
但目前已被五肽胃泌素取代。
组胺通过激活体内组胺H1受体和H2受体，收缩多种平滑肌如气管、支气管和胃肠道平滑肌；但同时松弛小血管平滑肌，增加毛细血管通透性；还能强烈刺激胃酸分泌，减慢房室传导，增加心肌收缩力等。
误用大剂量或静脉给药可引起中毒。
食物中毒大量检测表明，海产鱼中的青皮红肉鱼类含组胺较高，当鱼不新鲜或腐败时，鱼体中游离的组胺酸经脱羧酶作用产生组胺. 组胺中毒潜伏期一般为0.5~1小时，最短可为5min,最长达4h.检测方法1．分光光度法1 主要仪器和试剂721型分光光度计组胺标准溶液：取经95℃干燥2．5小时的磷酸组织胺分析纯试剂配制成含20ug·ml 的组胺标准溶液。
0．2 对氨基苯磺酸溶液(简称甲液)1oNNaNO 溶液(简祢乙液)，现配现用。
所用水均为二次蒸馏水。
2 组胺测定方法及条件试验2．1 测定方法：在25ml容量瓶中，移入一定量的组胺标准溶液，依次加入0-2 甲液、0．4%HCI、10%乙液和2．0%NaCO 溶液，用水稀释至刻度，摇匀。
于25℃室温下放置20分钟，用试剂空白为参比，测其吸光度值。
2．2 吸收光谱：取2．0ml组胺标准溶液，按上述方法显色，以水为参比，分别测定显色化合物和试剂空白的吸收光谱。
图1表明显色化合物在506nm 处有一最大吸收，本实验取506nm 作为吸收波长。
偶氮比色法测定鱼类组胺含量实验报告
偶氮比色法测定鱼类组胺含量实验报告
偶氮比色法测定鱼类组胺含量实验报告
本实验旨在使用偶氮比色法测定鱼类中组胺的含量。
组胺是一种
常见的生物胺，其含量高会对人体健康造成危害。
因此，对食品中组
胺含量的检测十分必要，本实验将使用偶氮比色法对鱼类中组胺含量
进行测定。
实验材料：鱼类样品、无水乙醇、氯化钠、三氯乙酸、偶氮二甲苯、去离子水、标准组胺溶液等。
实验步骤：
1.取适量鱼类样品，用无水乙醇将其浸泡3小时，摇匀后离心10分钟。
取上清液置入容量瓶中，加去离子水至刻度线。
2.取5ml上清液放入离心管中，加入氯化钠和三氯乙酸，离心10分钟，取上清液备用。
3.取出0.5ml上清液置于试管中，加入偶氮二甲苯溶液和氯化钠
溶液，摇匀，静置10分钟。
4.加入去离子水至刻度线，摇匀后立即测定吸光度。
5.将标准组胺按照上述方法进行操作，测定吸光度，并以标准曲
线计算出样品中组胺的含量。
实验结果：
本实验使用偶氮比色法对鱼类样品进行测定，得出样品中组胺的
含量为50mg/kg。
实验结论：
本次实验使用偶氮比色法成功测定了鱼类样品中组胺的含量。
通
过实验结果可以看出，该样品中组胺含量较高，需要加以注意。
同时，该方法简单易操作，可用于食品中组胺含量的检测。
总结：
本次实验使用的偶氮比色法是一种常见的检测组胺含量的方法，
操作简单，结果可靠。
通过该方法可以快速准确地测定食品中的组胺
含量，对于保障人们的健康非常重要。
同时，在实验中还需要加强对化学试剂的储存和使用，避免误操作造成危险。
Ⅰ型变态反应实验室研究进展
有无过敏反应及过敏强度如何。目前公认的皮肤致敏试验体 内方法主要是豚鼠最大值试验(guinea pig maximisation test) 和局部封闭涂皮试验(occluded patch test of Buehler),这两种 试验均是根据用受试物致敏过的动物再次接触同种受试物表 现出的皮肤反应来判定受试物是否具有致敏性。 2.2 主动全身过敏试验(Active Systemic Anaphylaxis, ASA) 当药物作为抗原或半抗原初次进入体内,刺激机体产生 相应的抗体(IgE)。当同样药物再次进入机体,抗原与抗体结 合形成的抗原抗体复合物,刺激肥大细胞及嗜碱性细胞释放 活性介质,从而引起局部水肿、抓鼻、竖毛、呼吸困难、窒 息、痉挛,甚至休克死亡。本试验的目的是观察受试物给药 后对动物引起的过敏反应[1]。但值得注意的是从ASA致敏试 验观察指标来看,只是对动物进行一般整体症状的观察,而来 自于动物对药物的反应症状与临床人类反应症状存在较大差 异,如从目前有报道的中药注射剂致敏性研究论文中,我们发 现,基本上ASA试验所得出的结论均为阴性,而临床前安全性 评价得阴性结果与临床使用的致敏性间存在着一定的不相符 性。而且也有文献[3]认为ASA对于检测大分子蛋白的过敏性 有效,对于检测小分子药物可能并不适合。 2.3 被动皮肤过敏试验(Passive Cutaneous Anaphylaxis, PCA) 被动皮肤过敏试验是一种较敏感的测试特异抗体滴度 的方法。将受试物致敏动物的血清（含丰富的IgE抗体）给 正常动物皮内注射,IgE的Fc端与皮肤的肥大细胞表面的特异 受体结合,形成IgE的复合物,使肥大细胞致敏。当抗原攻击 时,抗原与肥大细胞表面上IgE的Fab端结合,导致IgE分子结 构的改变,引起肥大细胞脱颗粒,释放过敏介质如组胺、慢反 应物质等,使皮肤局部血管的通透性增加,引起渗出和水肿等 炎症反应。攻击试验中,像抗原液内混入伊文思兰(Evans)等 色素,再注射到静脉内,该抗原在抗血清注射部位与附着在肥 大细胞上的抗体起反应,释放组胺或其它生物因子等,引起局 部过敏反应,血管通透性增加,故含色素的血浆便渗漏到组 织内,使皮肤出现蓝斑。测定蓝斑的直径和蓝染的程度可判 断血管通透性变化的大小,并反映局部炎症反应的强弱。根 据局部皮肤蓝染范围或程度,可判定血管通透性变化的大小, 继而判定皮肤过敏反应的程度。值得注意的是有研究[2]指出 PCA实验结果与佐剂的使用、致敏的途径、剂量的大小、免 疫的次数均有关系,并且对于小分子药物,PCA易出现假阴性 反应,尤其是当药物可能为半抗原,需经过生物转化才能引起 机体致敏。 2.4 腘窝淋巴结试验(PLNA) 药物过敏反应机制多种多样,可能与生成新抗原和佐剂
高效液相色谱法测定发酵食品中组胺的含量
ｍｉｅ ｗａ ２．１ ／ｋ ｎ ｔ ｏ ｒ ａ ｌ ｎ ｓ３１ ５ ｍｇ ｇ ｉ ｈｅｙ ｇ ｔ ｓ ｍｐ ｅ，ａ ｄ ２． ６ ｍｇ ｎ ｔ ｅ ａ ｌ ｕ ｎ ３ ／Ｌ ｉ ｈｅｂｅ ｒｓ ｍｐ ｅ．Ｈｉｔ ｍｉｅ ｗａ ｏ ｎ ｓａ ｎ ｓｆ ｕ ｄ ｉ ｈ ｅ ｅ ｔ ｄ ｓ ｙ ａ ｏ ｕｃｓ，ｙ ｇ ａ ｎ ｅ ｒ ｓ ｍｐ ｅ ｒ ｍ ｎ ｔ ｅ ｆ ｒ ｎ ｅ ｏ ｂｅ ｎ ｐｒｄ ｔ ｍ ｏ ｕ ａ ｄ ｂ ｅ ａ ｌ ｓ ｆｏ Ｇｕａ ｇ ｈ ｕ ｍａｋｅ ，ａ ｄ ｔ ｅ ｅ ｗａ ｎ ｚ ｏ ｒ ｔ ｎ ｈ ｒ ｓ ａ
（ ．Ｃ ｌ ｇ ｆ ｕ ｌ ａｔ，Ｓ ｎＹ ｔ ｅ ｎ ｅｓｙ Ｇ ａ ｇｈ ｕＧ ａ ｇ ｏｇ １０ ０ ２ ｘ ｅｉ ｅｔ １ ｏｌ ｅｏ ｂｉ Ｈｅｌ ｅ Ｐ ｃ ｈ ｕ ａ —ｓｎＵ ｉ ｒ ｔ， ｕ ｎｚ ｏ ｕ ｎｄ ｎ ５ ０ ８ ；．Ｅ ｐｒ ｎ ｖ ｉ ｍ ａｄＴ ａ ｉｇＣ ｎ ｒ ｕ ｎ ｄ ｎ ｏｄａ ｄＤ ｕ ｏａｉ ａ ｏ ｅｅ Ｇ ａ ｇｈ ｕ Ｇ ａ ｇｏ ｇ ５ ０ ｎ ｒｉ ｎ ｅ ｔ ，Ｇ ａ ｇ ｏ ｇＦ ｏ ｎ ｒｇＶ ｃｔ ｎ ｌ ｌ ｇ ， ｕ ｎｚｏ ， ｕ ｎｄ ｎ ５ ０ ２ ） ｎ ｅ ｏ Ｃｌ １
中均有组 胺检 出 ， 中大豆发 酵制 品 中组胺含 量 普遍 较 高 。 其 关键 词 ： 高效 液相 色谱 ； 酵食 品 ； 发 组胺 中图分类 号 ： １５ ５ 文 献标 识码 ： 文章 编 号 ：０７—７６ 【０２ ０ ０ ３ — ３ Ｒ５． Ａ １０ ５ １ ２ １ ）２— ０ １ ０
高效液相色谱法测定发酵食品中组胺的含量
1
1． 1
材料与方法
仪器与试剂 1706 UV 紫 美国 Biorad 700 高效液相色谱仪，
外检测器， 分析天平， 恒温水浴箱， 均质机， 离心机， 0． 45 μm 针头微孔滤膜过滤器等。 组胺标准品由广东省疾病预防控制中心提供， 纯度 ＞ 99% 。氨水 （ 25% ） 、 碳酸氢钠、 高氯酸、 氢氧 化钠、 丹酰氯均为分析纯， 甲醇、 丙酮和乙腈均为色 实验用水均为双蒸水， 并经 Milli － Q 超纯处 谱纯， 理。 溶液配制： 称取一定量的组胺标准品， 用 0． 4 mol / L 高氯酸配制成浓度为 1 mg / mL 的组胺标准溶 液， 放于冰箱中 4 ℃ 保存， 一周一配。精确称取适量 用丙酮溶解并配制成浓度为 10 mg / mL 丹磺酰氯， 的溶液， 经 过 0． 45 μm 针 头 微 孔 滤 膜 过 滤 器 过 滤 4 ℃ 冰箱中保存， 后， 备用。 1． 2 样品采集与处理 于广州市某大型超市购买具有相近生产日期、 不同品牌的大豆发酵酱油、 豆酱各三种， 盒装及散装 酸奶六种， 啤酒 （ 易拉罐装 ） 五种。 豆 豆豉各一种， 豉和豆酱分别取出适量， 于研钵中捣碎、 混匀， 酸奶 和酱油摇匀。准确称取 2． 0 g 豆豉或豆酱样品 （ 酸 奶 5． 0 g， 酱油 2． 0 mL） ， 置于 15 mL 离心管中， 加入 10 mL 0． 4 mol / L 高氯酸， 并用均质机捣碎、 混匀， 在 3000 r / min 的条件下离心 10 min； 取出上层清液， 再 充 分 混 匀， 在 次加 入 10 mL 0． 4 mol / L 高 氯 酸， 3000 r / min 的条件下离心 10 min； 取出上层清液， 合 并两次清液并过滤， 用 0． 4 mol / L 的高氯酸定容到 25 mL。 取啤酒 样 品 20 mL 于 小 烧 杯， 室温超声脱气 20 min。准确量取 5 mL 于 15 mL 离心管中， 加入 2． 5 g 氯化 钠， 振 荡 使 之 溶 解 并 达 到 饱 和， 再加入 3 mL 正丁醇 － 氯 仿 （ 体 积 比 50 ∶ 50 ） 溶 液， 加盖旋 紧， 充 分 振 荡 10 min， 于 3000 r / min 条 件 下 离 心 10 min， 取上层清液 2 mL 于离心管中， 于 40 ℃ 水浴 条件下氮气吹干后， 再加入 0． 1 mol / L 盐酸 0． 5 mL。 瑢 瑑
第三章 原料鱼和肉的鲜 三甲胺和组胺
氧化三甲胺的生理功能
氧化三甲胺作为动物体内重要的无毒中间代谢物,氧 化三甲胺是一种蛋白质稳定剂和有机渗透剂,参与
海生硬骨鱼和某些广盐性硬骨鱼等的渗 透调节,在水产业中具有广阔应用前景。
三甲胺的产生
1. 氧化三甲胺是鱼鲜美味道的主要来源,氧化三甲胺极不稳定, 鱼死后，在腐败细菌尤其是兼性厌氧菌（如互生单孢菌、腐 败极毛菌） 的作用下, 很容易还原成三甲胺。 氧化三甲胺 是一种鲜味物质 含量与鲜度密切相关。 2.鱼类的红肌中含有内源性的氧化三甲胺还原酶。Fe2 + 在氧化 三甲胺转变为三甲胺和二甲胺(DMA) 中起重要的作用。在 Fe2 + 、血红蛋白和半胱氨酸存在下，4 ℃氧化三甲胺转变为 三甲胺和二甲胺。 2Cys＋2Fe3＋ → Cys－Cys ＋ 2Fe2＋ ＋2H＋ Me3NO＋ 2H＋ ＋ 2Fe2＋ → Me3N＋ 2Fe3＋ ＋ H2O 3.氧化三甲胺一经加热就会分解，罐头及其它海水鱼加工中常 有此反应。 Me3NO→ Me3N＋HCHO 4.水产动物中的卵磷脂经微生物分解产生三甲胺，但量较少。 －CH2OP－OCH2CH2－N（CH3）3
一、次黄嘌呤-黄嘌呤氧化酶法
（一）原理： 次黄嘌呤 黄嘌呤氧化酶
pH7.6缓冲液
波长600nm
尿酸
2,6一二氯靛酚
∆A/ ∆T
以次黄嘌呤为指标确定水产品的鲜度，黄鱼100－ 200ppm为新鲜，鲳鱼100－250ppm为新鲜，河鲫鱼 小于50ppm为新鲜。
黄嘌呤氧化酶法
（二）试验试剂 2,6一二氯靛酚溶液：用0.17mol/L磷酸缓冲液pH 7.6 配制成23 ug/mL 黄嘌呤氧化酶溶液：活力0.3单位/mL
比色 410nm比色
LC测定水产品中组胺含量
/现代食品XIANDAISHIPIN102LC 测定水产品中组胺含量Determination of Histamine in Aquatic Products by LC◎ 马烨晶（浙江华才检测技术有限公司，浙江 诸暨 311800）Ma Yejing((Zhejiang Huacai Testing Technology Co., Ltd., Zhuji 311800, China)摘 要：高效液相色谱具有检测灵敏度高、定性准确、检出限低、定量分析准确的特点，是目前水产品中生物胺含量分析测定的主要手段。
组胺的测定需经衍生，丹酰氯是液相色谱常用柱前衍生试剂，其操作简单、衍生物稳定性好、可定量完成磺酰化反应，有较强的荧光和紫外吸收、灵敏度高、基体干扰不明显等优点，是高效液相色谱检测生物胺中应用最多的柱前衍生试剂。
关键词：高效液相色谱；水产品；组胺；丹酰氯Abstract ：High performance liquid chromatography has the characteristics of high sensitivity, accurate, low detection limit and accurate quantitative analysis. Determination of histamine by derivatization with dansyl chloride reagent is commonly used in liquid chromatography with pre-column derivatization has the advantages of simple operation, good stability, can complete the quantitative derivatives sulfonylation, have strong f luorescence and UV absorption, high sensitivity, matrix interference is not obvious advantages, is the detection of biogenic amines in HPLC application most of the derivatization reagent.Key words ：High performance liquid chromatography; Aquatic products; Histamine; Dansyl chloride 中图分类号：TS254.7生物胺是一类具有生物活性含氮的低分子量有机化合物的总称，其中组胺对人类健康的影响最大。
HPLC 法检测海水鱼中组胺的含量
HPLC 法检测海水鱼中组胺的含量
□ 梁立广 李绮敏 雷 艳 广东省食品工业公共实验室 广东省食品工业研究所有限公司 广东省食品质量监督检验站
摘 要：本实验建立了检测海水鱼中组胺含量的高效液相色谱法，为检测海水鱼中组胺提供有效、快速定量的方法。 色谱柱条件为：C18 柱（4.6 mm×100 mm，粒径 5μm）；紫外检测波长 254nm；以 90% 甲醇 /10%（含 0.1% 乙酸的 0.01mol/L 乙酸铵溶液）和 10% 甲醇 /90%（含 0.1% 乙酸的 0.01mol/L 乙酸铵溶液）作为流动相；流速 0.8mL/min。结 果显示：该方法标准曲线良好稳定，组胺在 1.0~50.0mL/L 范围内线性系数为 0.9996，出峰时间在 21.654min 附近，定 量限为 50mg/kg，平均回收率在 99.8% 附近，精密度 RSD 为 5.2%。本方法测定海水鱼中组胺含量，简单、快速、易操作， 检测可靠方法，适用于样品数目较多检测。
达到各成分分离，但在高温及挥发性 （0.01mol/L），加入 100mL 甲醇。
时间 A（90% B（10% 流速 序号 （min） 甲醇 甲醇 （mL
/10%） /90%） /min）
1
0.0
60
40
0.8
2
22
85
15
0.8
3
25
100
0
0.8
4
32
100
0
0.8
5 32.01 60
40
0.8
检测具有重要的意义。
2.1 衍生剂溶液配制
254nm；梯度洗脱程序见表 1。
组 胺 的 检 测 方 法 有 分 光 光 度 法、
用可见-紫外分光光度法测定水产品中组胺的含量
用可见-紫外分光光度法测定水产品中组胺的含量江生;汪敏;白亚敏;韩燕【摘要】To establish a UV method for the determination of histamine in the aquatic products. With positive amyl al-cohol extraction, encounter azo reagent orange. The detection wavelength was set at 480 nm. Histamine linear range was: 0.407 81μg/mL~4.078 1μg/mL (R2=0.999 7) .The average recovery was 94.8%, and all RSD less than 1.1%(n=9) . This method is sensitive, accurate and reproducible and can be used to control the quality of the cosmetic.%建立了水产品中组胺含量的测定方法。
采用正戊醇提取，偶氮试剂显色，可见-紫外分光光度计检测，测定波长为480 nm。
试验结果表明，当组胺的质量浓度在0.40781μg/mL～4.0781μg/mL范围内，质量浓度与吸光度呈良好线性关系(R2=0.9997)。
平均回收率为94.8%， RSD为1.1%（n=9）。
本法简单，易操作，测定结果准确。
【期刊名称】《食品工程》【年(卷),期】2016(000)001【总页数】3页(P62-64)【关键词】可见-紫外分光光度法;组胺;水产品【作者】江生;汪敏;白亚敏;韩燕【作者单位】重庆市食品药品检验检测研究院，重庆 401121;重庆市食品药品检验检测研究院，重庆 401121;重庆市食品药品检验检测研究院，重庆 401121;重庆市食品药品检验检测研究院，重庆 401121【正文语种】中文【中图分类】TS207.3组胺中毒是由于食用含有一定数量组胺的某些鱼类而引起的过敏性食物中毒，主要是因为此类鱼含有较高的组氨酸，当鱼体不新鲜或腐败时，污染鱼体的细菌产生脱羧酶，使组氨酸脱羧生成组胺。
过敏源污染风险评估
过敏源风险评估根据我公司实际情况，存在的过敏源有：甲壳类动物，鱼类，还有二氧化硫及亚硫酸盐。
甲壳类动物，我公司进来的原料都是海捕，有可能捕上来的时候为了保鲜会放亚硫酸盐。
亚硫酸盐过敏是存在的，但它仍是不明确的过敏原，可能在过量食入后几分钟造成呼吸困难。
哮喘患者和对阿司匹林过敏的人更有可能对亚硫酸盐过敏。
过敏反应包括打喷嚏、喉咙肿胀以及麻疹，需要及时救治，且可能致命。
对亚硫酸盐过敏的人应尽量避免食用用亚硫酸盐处理过的食品。
为了控制住甲壳类动物中二氧化硫的含量，每次原料进厂，公司会派品管人员抽样对原料进行二氧化硫检测，合格后才能把原料进入仓库，不符合要求（含量超过100PPM）的应拒绝接收。
原料做成半成品、成品都需要对其检测二氧化硫含量。
当成品中二氧化硫的含量超过10mg/kg或10mg/L,应以SO2表示，并在包装上标识出来。
对于人类来说，有的人吃了鱼后会出现面部潮红、皮肤过敏、眼角膜充血，并且有头晕、头痛、心悸、口渴、喉咙灼热和嘴唇红肿等。
甚至还有的会出现四肢麻木，全身无力等，更严重的过敏患者会有呼吸困难、哮喘、晕厥等，这是因为吃含有组胺的鱼引起了组胺过敏。
我公司从原料到成品都严格控制鱼中组胺的含量。
对于原料进厂，我公司会派品管人员抽样对原料进行组胺检测，合格后才能把原料放进仓库，不符合要求（含量超过5mg/100g)的拒绝接收。
为了避免鱼类跟甲壳类交叉污染，都是分区域各自放置。
半成品，成品也亦是如此。
在成品包装上要正确的标识其名称、数量、批号、规格等。
经过公司多年来对相关人员业务水平的培训，严格把关原料进厂，没有出现过吃了我公司的产品引起的中毒，有效的控制住过敏源导致的危害。
液相色谱法测定生物胺的方法概述
液相色谱法测定食品中生物胺的方法概述摘要生物胺是生物活性分子，包括脂肪族（腐胺、尸胺,精胺、亚精胺),芳香族(酪胺、苯乙胺)或杂环(组胺、色胺)结构。
它们可以在未加工食品和通过动物、植物和微生物的代谢途径合成和分解的加工食品中被检测到。
鉴别和定量食品中的生物胺是非常重要的，因为生物胺被认为是食品质量和新鲜度的指标。
生物胺的测定通常是通过高效液相色谱法、气相色谱法、毛细管电泳等分离法来实现的。
在本文中，综述了自2007年来的食品中生物胺的测定方法。
1、简介：生物胺是具有生物活性的有机碱，经常在发酵食品和饮料中发现(Novella-Rodriguez, Veciana-Nogues, Trujillo-Mesa, &Vidal-Carou, 2002)。
它们主要来自脱羧氨基酸(ten Brink, Damink, Joosten, & Huis in ’t Veld,1990)。
在低浓度下,生物胺对于许多生理功能来说是必不可少的(Teti, Visalli, & McNair, 2002)。
然而,如果这些化合物被大量消耗,一些毒理学问题将会出现(Pe´ rez-Serradilla & Luque de Castro,2008; Saaid et al., 2009a; Shalaby, 1996)。
生物胺根据它们胺的含量可分为单胺和多胺，多胺几乎参与核酸和蛋白质合成的每一步,因此，身体每一个器官的生长、更新、新陈代谢都需要他们(Shalaby,1996)。
因此，日益生长着的组织对生物胺的需求急剧增加。
此外，非必须多胺的摄入会导致肿瘤增长。
癌症治疗的一个方法是限制多胺的摄入量(Moinard, Cynober, & de Bandt, 2005)。
还有些生物胺 (即腐胺、精脒尸胺,和精胺)可能与亚硝酸盐反应，产生挥发性的被定义为致癌物质的亚硝胺类(Wei et al.,2009)。
水产品中组胺的快速检测
食品快速检验方法犓犑２０２１０２水产品中组胺的快速检测２０２１ ０１ １３发布国家市场监督管理总局发布犓犑２０２１０２水产品中组胺的快速检测１ 范围本方法规定了水产品中组胺的快速检测方法。
本方法适用于水产品（鱼类等）中组胺的快速测定。
第一法 胶体金免疫层析法２ 原理本方法采用竞争抑制免疫层析原理，样品中的组胺经提取（或提取衍生）后与胶体金标记的特异性抗体结合，抑制抗体和检测卡中检测线（Ｔ线）上抗原的结合，从而导致检测线颜色深浅的变化。
通过检测线（Ｔ线）与控制线（Ｃ线）颜色深浅比较，对样品中组胺进行定性判定。
３ 试剂与材料除非另有说明，本方法所用试剂均为分析纯，水为ＧＢ／Ｔ６６８２规定的二级水。
３．１ 试剂３．１．１ 无水乙醇（Ｃ２Ｈ５ＯＨ）。
３．１．２ 无水四氢呋喃（Ｃ４Ｈ８Ｏ）。
３．１．３ ４ 硝基苯甲酰氯（Ｃ７Ｈ４ＣｌＮＯ３）。
３．１．４ 三羟甲基氨基甲烷（Ｃ４Ｈ１１ＮＯ３），即Ｔｒｉｓ。
３．１．５ 盐酸（ＨＣｌ，３７％）。
３．２ 试剂配制３．２．１ ７０％乙醇溶液（体积分数）：量取乙醇（３．１．１）７００ｍＬ，加水至１０００ｍＬ，混合均匀。
３．２．２ 样品提取液：称取１２．１ｇＴｒｉｓ（３．１．４），加９５０ｍＬ７０％乙醇（３．２．１）溶解，充分混匀后，用盐酸（３．１．５）调节ｐＨ值至８．５，用７０％乙醇（３．２．１）定容至１０００ｍＬ。
或使用胶体金免疫层析检测试剂盒专用提取液。
３．２．３ 样品稀释液：称取１２．１ｇＴｒｉｓ（３．１．４），加９５０ｍＬ水溶解，充分混匀后用盐酸（３．１．５）调节ｐＨ至７．０，用水定容至１０００ｍＬ。
或使用胶体金免疫层析检测试剂盒专用稀释液。
３．２．４ 样品衍生剂（１００ｍｇ／ｍＬ）：称取１０ｇ４ 硝基苯甲酰氯（３．１．３），加９０ｍＬ无水四氢呋喃（３．１．２）溶解，用无水四氢呋喃（３．１．２）定容至１００ｍＬ。
或使用胶体金免疫层析检测试剂盒专用衍生剂。
３．３ 参考物质组胺参考物质的中文名称、英文名称、ＣＡＳ号、分子式、相对分子质量见表１，纯度≥９７．０％。
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实验五组胺含量的测定
一、实验目的：学习比色法测定组胺含量的原理和方法
二、实验原理：鱼肉中的组胺用正戊醇提取，与偶氮试剂反应显橙色，与标准系列比较定量，
即可求出组胺含量
三、实验原料：鱼肉
四、实验试剂与仪器：
Na2CO3、NaOH、对硝基苯胺、正戊醇、三氯乙酸、盐酸、组胺标准品、具塞锥形瓶、
分液漏斗、721分光光度计等
五、实验方法：
1、组胺标准曲线的制定：称取25mg于105℃干燥至恒重的磷酸组胺定容至100ml 得到250ug/ml，再稀释配制成100ug/ml的组胺标准液，取上述标准使用液0、0.4、0.8、1.
2、1.6、2.0于10ml容量瓶中，并用1mol/LHCl补足至3ml，然后加15%Na2CO3溶液3ml及偶氮试剂3ml，加蒸馏水至10ml混匀，放置10min后于480nm处测其吸光度。
作出标准曲线。
2、样品中组胺的提取：取10.0g左右切碎的鱼肉于具塞锥形瓶中，加入20ml 0.1g/ml三氯乙酸浸泡2—3h过滤小烧杯中，用NaOH跳PH为9—10，取1ml滤液于分液漏斗中，再加入3.0ml正戊醇振摇5min，吸取上层液，重复操作3次，合并上层液于10ml容量瓶，用正戊醇定容至10ml，取1.0ml正戊醇提取液于分液漏斗中提取，再加1mol/LHCl3ml振荡5min，取下层液，重复操作3次，合并下层液于10ml容量瓶中，再用盐酸定容
3、取1ml上述提取液于10ml离心管中，分别加入15%Na2CO3及偶氮试剂各3ml，加入至10ml摇匀，放置10min于480nm处测吸光度
4、计算：样品中组胺含量（mg/kg）＝1000×(A/m)×V
六、思考题
用正戊醇提取前为什么要调PH为9~10？为什么还要用HCl提取3次？。