Western Blot蛋白免疫印迹法
蛋白质印迹法westernblot
蛋白质印迹法蛋白质印迹法(免疫印迹试验)即Western Blot。
它是分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种实验方法。
其基本原理是通过特异性抗体对凝胶电泳处理过的细胞或生物组织样品进行着色。
通过分析着色的位置和着色深度获得特定蛋白质在所分析的细胞或组织中表达情况的信息。
蛋白免疫印迹(Western Blot )是将电泳分离后的细胞或组织总蛋白质从凝胶转移到固相支持物NC膜或PVDF膜上，然后用特异性抗体检测某特定抗原的一种蛋白质检测技术，现已广泛应用于基因在蛋白水平的表达研究、抗体活性检测和疾病早期诊断等多个方面。
中文名蛋白质印迹法外文名Western Blot蛋白免疫印迹Western Blot类似方法1 Southern Blot 杂交方法类似方法2 Northern Blot 杂交方法使用材料聚丙烯酰氨凝胶电泳⑴原理与Southern Blot 或Northern Blot 杂交方法类似，但Western Blot法采用的是聚丙烯酰胺凝胶电泳，被检测物是蛋白质，“探针”是抗体,“显色”用标记的二抗。
经过PAG（聚丙烯酰胺凝胶电泳）分离的蛋白质样品，转移到固相载体（例如硝酸纤维素薄膜）上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。
以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应的抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体起反应，经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异性目的基因表达的蛋白成分。
该技术也广泛应用于检测蛋白水平的表达。
⑴分类Western Blot 显色的方法主要有以下几种:i. 放射自显影ii. 底物化学发光ECLiii. 底物荧光ECFiv. 底物DAB呈色现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈色，体同水平和实验条件的是用第一种方法，发表文章通常是用底物化学发光ECL。
只要买现成的试剂盒就行，操作也比较简单，原理如下(二抗用HRP标记)：反应底物为过氧化物+鲁米诺，如遇到HRR 即发光，可使胶片曝光，就可洗出条带。
western blot技术
百泰派克生物科技
western blot技术
蛋白印迹（Western Blot，WB）也称免疫印迹，是一种基于抗体的蛋白质分析技术。
利用抗体-抗原的特异性相互作用可以在复杂的蛋白质混合物中识别感兴趣蛋白
（目标蛋白质），以实现感兴趣蛋白的定性和半定量分析，在蛋白质表达水平、抗
体活性、蛋白质相互作用以及蛋白质翻译后修饰分析中广泛应用。
WB主要包括以下步骤：
（1）样品分离：利用SDS-PAGE分离蛋白混合物；
（2）转膜：将蛋白条带从凝胶转移到固相载体——例如硝酸纤维素薄膜（NC）上。
固相载体可以吸附蛋白质，并保持电泳分离的蛋白质生物学活性不变。
转移后的
NC膜就称为一个印迹（blot）；
（3）标记鉴定：用目标蛋白的抗体（一抗）处理NC膜——只有待研究的蛋白质才能与一抗特异结合形成抗原抗体复合物，这样清洗除去未结合的一抗后，只有在目标蛋白的位置上结合着一抗。
用一抗处理过的NC膜再用二抗处理，二抗是指一抗
的抗体。
通常，第二抗体带有特殊标记，当与合适的底物结合时，会产生可检测的荧光信号，信号强度与膜上的目标蛋白的丰度相关。
通过以上步骤，可以捕获与一抗相互结合的感兴趣蛋白，用于判断感兴趣蛋白的存在与否以及一抗与感兴趣蛋白的相互作用分析；此外，还可根据荧光信号强度对目标蛋白进行半定量鉴定，用于蛋白质白表达水平分析。
百泰派克生物科技基于蛋白印迹WB以及Thermo公司最新推出的Obitrap Fusion Lumos质谱平台结合Nano-LC提供蛋白质分析服务技术包裹，包括蛋白质定性定量
鉴定、蛋白质相互作用分析以及蛋白质翻译后修饰分析等，还可根据需求提供其他定制化检测方案，欢迎免费咨询。
western blot
凝胶制备
1、清洗玻璃板：洗洁精、避免划痕、水既不聚集成滴，又不成股流下
2、制胶（分离胶）：按顺序各组分加入离心管中（注意Tris-HCl的浓 度 和 PH ， 最 后 加 入 适 量 Aps 和 TEMED ） ， 混 匀 后 迅 速 灌 胶 ， 乙 醇 /ddH2O压胶（隔绝氧气对丙烯酰胺聚合的抑制作用，将胶压平），待 分离胶完全凝固（乙醇/ ddH2O 与分离胶之间有一条明显的折光线）
➢ 蛋白变性
20
聚丙烯酰胺凝胶电泳原理
电荷效应
------
-
v=at
a=F/m F=qC
v：速度 a：加速度 t：时间 F：电场力
q=nm
v=nCt
m：质量 q：粒子所带电荷 n：电荷质量系数
++++++
s：位移
s= 1 at2 = 1 nCt2
2
2
21
聚丙烯酰胺凝胶电泳原理
分子筛效应
22
聚丙烯酰胺凝胶电泳原理
33
抗体
Fc（种属特异性）
34
一抗&二抗
目的蛋白
二抗
➢ 放大信号 ➢ 标记Fra bibliotek一抗35
兔源抗体&鼠源抗体
兔源一抗 山羊抗兔
鼠源一抗
SDS-PAGE电泳
………………………………………………
14
电泳
带电颗粒在电场作用下，向着与其电性相反的电极 移动，称为电泳
15
电泳设备
16
SDS-PAGE凝胶
➢ Tris-HCL（PH6.8/8.8）
➢ 30%丙烯酰胺/双丙烯酰胺
➢ SDS
➢ APS ➢ TEMED
westernblot法
Western blot，也称为蛋白质印迹或免疫印迹，是一种常用的生物化学技术，用于分析样品中特定蛋白质的存在、细胞中特异蛋白质的半定量分析以及蛋白质分子的相互作用研究等。
下面是Western blot的基本步骤和注意事项：一、实验步骤蛋白样品制备：从细胞或组织中提取蛋白质样品，常用的方法有细胞裂解、组织匀浆等。
蛋白定量：使用BCA蛋白浓度测定法等对蛋白质样品进行定量，以便后续的Western blot分析。
凝胶电泳：将蛋白质样品在聚丙烯酰胺凝胶中电泳分离，根据蛋白质的大小和电荷进行分离。
转膜：将电泳分离后的蛋白质样品转移到硝酸纤维素膜上，以便进行后续的免疫检测。
免疫检测：使用特异性抗体对转移后的蛋白质样品进行免疫检测，抗体与目标蛋白质结合后，通过显色反应呈现阳性结果。
数据分析：对免疫检测结果进行定量和定性分析，如条带大小、灰度值等。
二、注意事项实验前要充分了解实验原理和操作流程，确保实验的正确性和可行性。
蛋白样品制备过程中要保证细胞或组织充分裂解和匀浆，以获得更纯的蛋白质样品。
在进行Western blot分析前，要对蛋白质样品进行定量，以保证实验结果的准确性。
在转膜过程中，要选择合适的转移缓冲液和转移时间，以保证蛋白质样品的完整转移。
在免疫检测过程中，要选择合适的抗体和显色试剂，以保证免疫检测结果的特异性。
在数据分析过程中，要选择合适的分析方法和软件，以保证数据分析的准确性和可靠性。
总之，Western blot是一种常用的生物化学技术，在蛋白质分析领域具有广泛的应用价值。
在进行Western blot实验时，要严格遵守实验步骤和注意事项，以保证实验结果的准确性和可靠性。
免疫印迹怎么测定磷酸化的蛋白
免疫印迹怎么测定磷酸化的蛋白免疫印迹（Western blot，WB）是利用抗原抗体特异性结合的原理，基于SDS-PAGE凝胶电泳进行蛋白质分离、纯化以及相互作用研究的技术，也是评估蛋白磷酸化状态的最常用方法。
蛋白印迹技术先利用SDS-PAGE分离蛋白质样品，随后将电泳条带转移到固相载体膜上（如PVDF或尼龙膜），再利用磷酸化特异的抗体（一抗）来鉴定目的蛋白，能与磷酸化特异抗体结合的蛋白质即为磷酸化蛋白，最后通过标记的二抗识别一抗可以指示一抗的位置，即是待研究的磷酸化蛋白质的位置。
免疫印迹法不适用放射性32P标记，避免了使用放射性同位素时的危险品和废物处理。
此外，磷酸化抗体的灵敏性较强，可以轻松的检测常规细胞提取物中的磷酸化蛋白，对样品的用量要求不算严格。
WB除了能定性检测磷酸化蛋白外，还能一定程度上评估磷酸化蛋白质的水平，由于受到不同实验处理和凝集上样误差的影响，通常先用一个抗体来检测同源蛋白的总水平(而不考虑磷酸化状态)，以确定磷酸化组分相对于总组分的比例，并充当上样内对照。
百泰派克生物科技拥有纯熟的免疫印迹技术，专业的技术分析团队，为您提供一站式磷酸化蛋白免疫印迹鉴定服务，可以根据您的需求定制实验，并对可能影响结果的潜在因素进行评估。
我们承诺给出的数据可靠，且可重复性高。
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相关服务：Far-Western Blot分析。
翻译后修饰蛋白组分析。
磷酸化定量蛋白组学研究。
免疫共沉淀法（CO-IP）结合质谱联用的蛋白互作分析。
蛋白质相互作用分析。
蛋白质相互作用质谱分析。
SILAC与免疫共沉淀质谱联用的蛋白互作分析。
交联法蛋白相互作用分析。
标记转移法蛋白相互作用分析。
Pull-down靶蛋白质谱鉴定。
蛋白质免疫印迹法原理
蛋白质免疫印迹法原理
蛋白质免疫印迹法（Western Blot）是一种常用于检测蛋白质的方法。
其原理基于蛋白质电泳分离和特定抗体与目标蛋白质的特异性结合。
1. 样品制备：首先，待检样品经过蛋白质提取，然后经过电泳分离，通常使用聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）将样品中的蛋白质根据其分子量大小分离。
2. 蛋白转膜：随后，将分离得到的蛋白质通过电泳转印到聚合物（如聚偏氟乙烯）膜上，形成蛋白质膜。
3. 阻断：将膜置于含有蛋白质阻断剂（如牛血清白蛋白）的缓冲液中，阻止非特异性结合。
4. 抗体结合：将膜与特异性抗体一起孵育，抗体与目标蛋白质特异性结合。
这些抗体通常是经过免疫动物制备，针对目标蛋白质的特定抗原位点。
5. 靶蛋白检测：使用荧光标记或酶标记的二抗（即与第一抗体结合的抗体）与第一抗体结合。
这些二抗能够使特定结合的蛋白质与检测标记发生反应。
6. 信号检测：使用荧光标记物或底物，通过荧光检测或发色反应检测结合的蛋白质。
常用方法是使用化学发光底物，比如辣根过氧化物酶和酮硫磺胺基碳酸红等底物。
通过这个原理，蛋白质免疫印迹法可以提供关于特定蛋白质的存在、相对丰度以及蛋白质分子量等信息。
它在分子生物学和生物医学研究中被广泛应用于蛋白质分析和诊断。
WesternBlot蛋白免疫印迹法
3 Western blot3.1试剂配制1）30%聚丙烯酰胺储备液（Acr/Bis）：丙烯酰胺（Acr）, 29g；N,N-亚甲基双丙烯酰胺（Bis）, 1g,去离子水溶解，37℃ 水浴助溶，定容至100mL。
0.45M m滤器过滤，棕色瓶4℃避光保存。
2）10%十二烷基硫酸钠（5口5）：SDS，10g；H2O，80mL。
68℃加热溶解，浓HCl 调pH 至7.2，定容至100mL，室温保存。
3）10%过硫酸铵（AP）：AP，1g；H2O，10mL。
避光，4℃保存。
（4℃2 周）4）分离胶缓冲液（1.5MTris-HCl pH8.8）：Tris，18.17g；H2O 80mL。
用浓HCl 调pH 至8.8，定容至100mL，4℃保存。
5）浓缩胶缓冲液（1.0MTris-HCl pH6.8）：Tris，12.11g；H2O 80mL。
用浓HCl 调pH 至 6.8，定容至100mL，4℃保存。
6）电泳缓冲液（10X）：甘氨酸（Glycine），188g；Tris 30.2g；SDS，10g；H2O, 800mL。
调节pH 至8.3, 定容至1L，4℃保存（用时稀释为1义）。
7）5X SDS-PAGEloadingBuffer （5mL）：1MTris-HCl（pH6.8），1.25mL；SDS，0.5g；澳酚蓝（BPB），25mg；甘油，2.5mL；加去离子水定容至5mL。
充分混匀，分装成500M L/份，室温保存。
使用前每份加入25M L p -巯基乙醇（2-ME），加入2-ME的loading buffer可在室温下保存一个月左右。
8）考马斯亮蓝染色固定液：40%双蒸水，10%醋酸,50%甲醇，室温保存9）考马斯亮蓝染色液：考马斯亮蓝R-250，250mg；甲醇，45ml；冰醋酸，10ml；H2O，定容至100ml。
室温保存。
10）考马斯亮蓝染色脱色液：醋酸，100ml；乙醇，50ml；dH2O 850ml，充分混合，室温保存11）膜转移缓冲液：甘氨酸，2.9g；Tris，5.8g；SDS，0.37g；力口H2O 600mL 充分溶解，加200mL 甲醇，混匀，定容至1匕，室温保存。
蛋白质印迹法westernblot应用介绍
定量Western Blot技术
定量Western Blot技术能够准确定量蛋白质的表达水平，为比较不同样品之间的蛋白质表达差异提供 了可靠的工具。
该技术采用了同位素标记、荧光染料标记等方法，通过与标准品进行比较，计算出蛋白质的相对表达量。
该技术的应用范围广泛，包括药物靶点筛选、疾病标志物 发现、蛋白质相互作用研究等领域。
Western Blot与其他蛋白质分析技术的联用
Western Blot可以与其他蛋白质分析技术联用，如质 谱技术、免疫共沉淀等，以获得更全面的蛋白质信息。
通过将Western Blot与质谱技术联用，可以获得蛋白 质的氨基酸序列和修饰信息，有助于深入了解蛋白质
缺点
操作繁琐、耗时长、成本较高、对实验条件和操作技能要求较高。
02 Western Blot在科研中 的应用
验证抗体特异性
抗体特异性验证
通过Western Blot，可以验证抗体的 特异性，确保抗体只针对目标蛋白进 行反应，而不与其他非目标蛋白发生 交叉反应。
抗体稀释度测试
通过Western Blot，可以测试抗体的最 佳稀释度，以获得最佳的检测效果。
定量Western Blot技术的应用范围广泛，包括生物标志物发现、药物作用机制研究、疾病发病机制研究 等领域。
蛋白质组学与Western Blot的结合应用
蛋白质组学与Western Blot的结合应用能够实现大规模蛋 白质组学研究与特异性蛋白质检测的有机结合。
通过将Western Blot技术与蛋白质组学技术相结合，可以 同时获得蛋白质的特异性和丰度信息，为深入了解蛋白质 的功能和作用机制提供有力支持。
蛋白免疫印迹（WesternBlot）
蛋白免疫印迹（WesternBlot）1.4.9 细胞裂解液50mM Tris-Cl (pH 8.0) ，1% NP-40， 150mM NaCl，0.5%去氧胆酸钠及0.1% SDS1.4.10 PMSF储存液（100mmol/L）称取PMSF17.4mg,溶于1ml异丙醇，分装后储存于－20℃。
1.4.11 5×Tris甘氨酸电泳缓冲液去离子水 500ml，Tris碱 15.1g，甘氨酸 94g，10%(w/v)电泳级SDS 50ml，补去离子水至1000ml，使用前做5×稀释。
1.4.12转膜缓冲液Tris碱3.03g，甘氨酸14.4g，甲醇200ml，补ddH2O 至1000ml , 每次配完可用2～3 次，现用现配。
4℃避光保存。
1.4.13 1.5MTris－HCl(PH8.8)Tris碱18.17g,ddH2O 80ml,浓HCL调PH8.8，定容100ml。
1.4.14 1.0MTris－HCl（PH6.8）Tris碱12.11g,ddH2O 80ml,浓HCL调PH6.8，定容100ml。
1.4.15 10%SDSSDS 10g，ddH2O定容100ml。
1.4.16 30%丙烯酰胺（29：1）丙烯酰胺29g，N，N’-Y亚甲双丙烯酰胺1g，温热去离子水分别溶解上述后,再补去离子水至100ml.滤纸过滤,储于棕色试剂瓶中,4℃保存一月。
1.4.17 10×TBST缓冲液浓度为100mmol/L Tris-HCl pH 8.0；1500 mmol/L NaCl；0.2%Tween-20，补水至1000ml. 高压灭菌，4℃保存，使用前再做10 倍稀释。
1.4.18 封闭液（5%脱脂奶粉）脱脂奶粉 5g，1×TBST 80ml,充分溶解后补1×TBST 至100ml。
1.4.19 10%过硫酸胺APS（4℃避光保存）APS 10g，ddH2O定容100ml。
免疫印迹电泳法的原理
免疫印迹电泳法的原理
免疫印迹电泳法，也称为Western blot（西方印迹）或蛋白印迹法，是一种用于检测特定蛋白质在混合物中的存在和数量的分析技术。
以下是免疫印迹电泳法的基本原理：
电泳分离：首先，样品中的蛋白质被用SDS-PAGE（聚丙烯酰胺凝胶电泳）或其他电泳方法进行分离。
SDS（十二烷基硫酸钠）使蛋白质带有负电荷，同时解除蛋白质的二级结构，使其线性化。
蛋白质根据大小在凝胶中迁移，从而实现对蛋白质的分离。
转移：分离后的蛋白质被转移到聚丙烯酰胺膜（或其他类型的膜，如硝酸纤维素膜）。
这个步骤通常称为电转移，它将蛋白质从凝胶转移到膜上，保持了蛋白质的相对位置。
阻塞：通过在膜上添加一种非特异性的蛋白质，通常是牛血清蛋白（BSA）或非脂干奶粉，来“阻塞”膜上未被分析的部分。
这可以防止后续的抗体结合到非特异的位点上。
抗体结合：将一种特异性的抗体加入，使其与目标蛋白结合。
这个抗体通常是对目标蛋白的特定亚单位具有亲和力的抗体。
二次抗体结合：引入另一种被称为“二次抗体”的抗体，这种抗体通常是与常见实验动物（如兔子或小鼠）的抗体结合的抗体。
这个二次抗体被标记上荧光剂、酶或其他检测标记物，以便在后续检测步骤中识别。
检测：使用化学发光、荧光、酶标记等方法来检测标记的二次抗体，从而显示出特定蛋白质的存在和相对数量。
通过这个过程，研究人员能够确定混合物中是否存在特定的蛋白质，并定量其相对含量。
免疫印迹电泳法在分子生物学和生物化学研究中得到广泛应用。
1。
免疫印迹检测方法
免疫印迹检测方法
免疫印迹检测方法，又称蛋白质印迹或Western Blotting，是一种利用抗
原抗体的特异性结合检测复杂样品中的某种蛋白的方法。
以下是其基本步骤：
1. 取样：取上清液作为样品。
2. 电泳：制备电泳凝胶，进行SDS-PAGE。
3. 转移：通过半干式转移，将电泳后的凝胶上的蛋白质转移到膜上。
这个过程包括割胶、平衡、膜处理、转膜等步骤。
其中，转膜是关键步骤，需要将凝胶上的蛋白质精确转移到NC膜上，滤纸、凝胶、NC膜需要精确对齐，
去除气泡，并在恒流1mA/cm2下转移小时。
4. 免疫检测：在转移后的膜上，利用抗体进行检测。
这一步通常包括一抗和二抗的结合，以及通过化学发光检测或其他方法检测到结合的抗体。
5. 结果分析：通过对比染色结果和标准条带，可以分析出样品中特定蛋白质的表达情况。
此外，阴性对照是以1%BSA取代一抗，其余步骤与实验组相同。
以上信息仅供参考，具体步骤可能会根据实验需求和条件有所不同，建议咨询专业人士获取具体信息。
免疫印迹法原理
免疫印迹法原理免疫印迹法（Western Blot）是一种常用的蛋白质检测技术，广泛应用于生物医学研究领域。
它通过检测特定蛋白质在样本中的存在与否，以及其相对表达水平，帮助科研人员了解蛋白质的功能、结构和代谢途径。
本文将介绍免疫印迹法的原理及其在科研中的应用。
免疫印迹法的原理主要包括蛋白质分离、转膜、免疫印迹和检测四个步骤。
首先是蛋白质分离。
通常采用聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）将待检测样本中的蛋白质按照大小分离开来。
这一步骤是为了使得待检测的蛋白质能够被免疫印迹所检测到。
接着是转膜。
将SDS-PAGE分离出的蛋白质转移到聚丙烯酸膜或硝酸纤维膜上，形成蛋白质斑点。
这一步骤是为了将蛋白质从凝胶中转移到膜上，以便后续的免疫印迹检测。
然后是免疫印迹。
将转膜中的蛋白质用特异性的抗体进行识别和结合。
首先是将转膜进行孵育，使得抗体与特定蛋白质结合。
然后通过洗涤去除未结合的抗体，最后通过化学发光或染色等方法来检测蛋白质的存在与否。
最后是检测。
通过化学发光、荧光或染色等方法来检测蛋白质的存在与相对表达水平。
这一步骤是为了定量分析待检测蛋白质的表达水平，从而了解其在生物学过程中的功能和作用。
免疫印迹法在生物医学研究中有着广泛的应用。
首先，它可以用于检测特定蛋白质的存在与否，从而帮助科研人员了解蛋白质在细胞中的表达情况。
其次，免疫印迹法也可以用于检测蛋白质的修饰状态，比如磷酸化、甲基化等修饰形式，从而揭示蛋白质的功能和调控机制。
此外，免疫印迹法还可以用于筛选药物靶点、诊断疾病和评估治疗效果等方面。
总之，免疫印迹法是一种重要的蛋白质检测技术，其原理简单清晰，应用广泛灵活。
通过对特定蛋白质的检测和定量分析，可以帮助科研人员深入了解蛋白质的功能和调控机制，为生物医学研究提供重要的实验手段和数据支持。
western blot 免疫印迹实验
western blot 免疫印迹实验
步骤：蛋白电泳（SDS-PAGE）
转膜
封闭
加抗体
一抗
检测
可以看到目的条带
二抗上的酶：辣根 过氧化物酶，有其 底物存在时会发光
二抗：被标记了的 抗体（检测）
一个一抗可以和两 个甚至更多的二抗 结合
请老师与同学们指正
滤纸：维持transfer buffer稳定的流动 胶 膜 滤纸
海绵垫：固定整个系统
western blot 免疫印迹实验
步骤：蛋白电泳（SDS-PAGE） 转膜 封闭 加抗体 检测
所有蛋白从胶转移到膜上，并 于膜紧密结合，封闭是指还空 白的结合位点，防止后面加的 抗体和膜结合（阻止非特异性 结合）
和蛋白高度亲和
胶
膜
把蛋白转移到膜上进行检测（为于表面更容易与抗体结合） 蛋白带负电，外加一个电场，蛋白从负往正
western blot 免疫印迹实验
步骤：蛋白电泳（SDS-PAGE）
转膜 封闭
海绵垫
加抗体检测ຫໍສະໝຸດ 放入电泳槽中：胶靠近负极， 膜靠近正极，在transfer buffer中加入甲醇（甲醇促 使蛋白与SDS分离），使蛋 白更好的与膜结合。
western blot 免疫印迹实验
western blot 免疫印迹实验
目的（功能）：检测和分析蛋白
大分子量
步骤：蛋白电泳（SDS-PAGE）
转膜 封闭
小分子量
加抗体
检测
SDS带负电荷，与蛋白结合使蛋白带负电，从而能在电场作用下迁移
western blot 免疫印迹实验
步骤：蛋白电泳（SDS-PAGE） 转膜 封闭 加抗体 检测
westernblotting法
westernblotting法Western blotting法，也被称为蛋白质免疫印迹法，是一种常用的分析蛋白质的实验方法。
它通过将样本中的蛋白质经过电泳分离、转移到膜上、与抗体结合并通过化学发光的方式来检测目标蛋白质的存在与表达水平。
本文将一步一步回答关于Western blotting法的主题。
第一步：制备样品和蛋白质电泳分离Western blotting法的第一步是制备样品和将样品中的蛋白质进行电泳分离。
首先，需要从感兴趣的细胞或组织中提取蛋白质。
常见的提取方法包括细胞裂解、超声破碎、冻融破碎等。
然后，将提取的蛋白质样品加入电泳缓冲液中，通过电荷差异使蛋白质在凝胶中进行分离。
一般常用的凝胶包括聚丙烯酰胺凝胶（Polyacrylamide gel）和琼脂糖凝胶（Agarose gel）。
电泳的结果将会得到不同大小和电荷的蛋白质带。
第二步：蛋白质转印蛋白质电泳分离结束后，需要将分离出来的蛋白质转移到膜上。
常用的膜包括聚偏氟乙烯膜（Polyvinylidene difluoride membrane，PVDF）和硝酸纤维素膜（Nitrocellulose membrane，NC）。
这一步使用电泳盒装置将凝胶与膜的间隙设置好，然后将电流施加，使蛋白质从凝胶中转移到膜上。
通过此步骤，蛋白质在膜上形成与电泳凝胶相似的蛋白质“印迹”。
第三步：蛋白质与抗体结合转印到膜上的蛋白质需要与特异性的抗体结合，以便检测目标蛋白质的存在。
这一步通常被称为免疫染色。
首先，将膜上的非特异性结合位点阻塞，通常使用的是蛋白质溶液，如牛奶粉或鸡蛋清。
然后，将特异性抗体加入到膜上，与目标蛋白质结合。
这些抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体，由于抗体的特异性，只有特定的蛋白质才能与其结合。
第四步：蛋白质检测Western blotting法最后一步是检测蛋白质和目标蛋白质的表达水平。
这通常通过使用化学发光的方法来实现。
常见的检测方法包括辣根过氧化物酶检测和碱性磷酸酶检测等。
westernblot原理及步骤
westernblot原理及步骤Western blot原理及步骤。
Western blot，又称免疫印迹法，是一种用于检测特定蛋白质的方法。
它能够通过识别蛋白质在膜上的位置来确定其分子量，并且可以检测蛋白质的表达水平。
本文将介绍Western blot的原理及步骤，希望能够帮助读者更好地理解和应用这一技术。
1. 原理。
Western blot的原理基于蛋白质的电泳分离和免疫检测。
首先，待检测的蛋白样品经过SDS-PAGE凝胶电泳分离，然后将分离后的蛋白转移到膜上。
接着，膜上的蛋白与特异性抗体结合，再经过化学发光或染色等方法来检测目标蛋白的存在和表达水平。
2. 步骤。
（1）蛋白样品制备，将待检测的蛋白样品加入SDS-PAGE凝胶电泳缓冲液，使其蛋白质变性并带有负电荷，然后进行蛋白定量。
（2）SDS-PAGE凝胶电泳，将蛋白样品加载到聚丙烯酰胺凝胶中，然后进行电泳分离，使蛋白质按照大小分子量在凝胶中迁移。
（3）蛋白转膜，将分离后的蛋白转移到膜上，通常使用的是聚偏氟乙烯（PVDF）或硝酸纤维素膜。
转膜的方法有湿式转膜和半干式转膜两种。
（4）膜上抗体结合，将蛋白转膜后的膜进行封闭，然后与特异性的一抗抗体结合，再与辅助抗体结合。
（5）信号检测，通过化学发光或染色等方法来检测膜上蛋白的存在和表达水平，如辣根过氧化物酶（HRP）发光、碱性磷酸酶（AP）发光、共价结合荧光素等。
3. 注意事项。
（1）蛋白样品制备要避免蛋白降解和失活，通常在样品中加入蛋白酶抑制剂和磷酸酯酶抑制剂。
（2）SDS-PAGE凝胶电泳要注意电泳条件的选择，如电压、时间和电流密度等。
（3）蛋白转膜后的膜要保持湿润，避免膜的干燥和破裂。
（4）抗体结合和信号检测要根据实验需要选择合适的抗体和检测方法，以确保结果的准确性和可靠性。
4. 应用。
Western blot广泛应用于生物医学研究中，如检测蛋白质的表达水平、鉴定蛋白质、研究蛋白质相互作用等。
Wesern-bloing蛋白免疫印迹实验ppt课件
④ 用水冲洗一下浓缩胶，将其放入电泳槽中。（小玻璃板面向内，大玻璃板面向外。若只跑一块胶，
槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外。）
27
清洗玻 璃板
配 胶
上样
电泳
停止电 泳
①测完蛋白含量后，计算含50mg蛋白的溶液体积即为上样量。适量蛋 白加入4：15*Loading Buffer于离心管，100℃水中煮5min使蛋白 变性。放置冰上3min，离心15min，13000rpm，4℃。
2.结果分析
3.注意事项
四
实验室常见问题解答
20
蛋白样品制 备 蛋白含量测
定
21
在六孔板中，按照一 个孔添加150μL的比 例添加适量RIPA裂解 液，用枪吹打均匀以 充分接触细胞。
样品放置冰上 30min（中间混 匀5-6次）直至 裂解完全。
充分裂解后，1000014000g离心3-5分钟， 取上清，即可进行后续 的PAGE、Western和免 疫沉淀等操作
②加足够的1*电泳缓冲液后开始准备上样。（电泳液至少要漫过内测的小玻璃 板。）用微量进样器贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。将加样 器针头插至加样孔中缓慢加入样品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气
泡也可能使样品溢出。）
28
清洗玻 璃板
配 胶
上样
电泳
停止电 泳
浓缩胶80V电压跑20 分钟，可多跑几分钟； 分离胶180V电压跑 至底端。
疾病早期诊断
例：诸延慧，容瓘等.酶联免疫印迹术(EITB)在小鼠日本血吸虫感染早期 诊断中的应用[J]. 中国人兽共患病杂志,1993,9(3):26-29.
5
检测样品中特异性蛋白质是否
蛋白质免疫印迹实验WesternBlot
摇动，待所检测的蛋白带显色达到最深程度后，将硝 酸纤维素薄膜转入 PBS 溶液中停止显色反应。取出 硝酸纤维素薄膜，自然晾干后拍照保存结果。
四 思考题
• 1. 为什么裁剪的滤纸必须与凝胶大小 完全一致？若不是这样结果会怎样？
• 2. 电转移时为什么都必须带手套小心 操作并除去气泡， 否则结果会怎样？
• 在进色后应时应注意哪些问题？ • 请简述免疫印迹实验的原理，并将之与
免疫学相关概念联系起来。
2024/2/11
2024/2/11
一 实验原理
• 电泳将蛋白质从凝胶转移到固体支持物 上是通过电转移仪器完成的。它是将固 体支持物面对阳极、凝胶面对阴极，二 者结合在一起，然后将外面二侧用 Whatman 3MM滤纸结合，形成“三明治 ”结构，放入电转移仪器上，加入电泳 缓冲液，通上电源后，蛋白质即可从凝 胶上转移到固体支持物上。
2024/2/11
一 实验原理
其定量关系符合以下公式： • Ve=Vo+KV1 • Ve：某一溶质的洗脱体积 • Vo：层析柱的外水体积 • Vi：层析柱的内水体积 • K：某一溶质的分配系数
2024/2/11
二试剂和器材
1．试剂
电转移缓冲液 pH8.3 • 39mM甘氨酸 • 4.8mM Tris碱 • 0.037% SDS • 20% 甲醇 • 混合2.9克甘氨酸，5.8克Tris,0.37克SDS,加200ml甲2源自24/2/11三 操作步骤
蛋白质印迹(Western blotting)实验操作步骤
蛋白质印迹/Western blotting实验操作步骤一、总蛋白的提取单层贴壁细胞总蛋白的提取：1)吸除培养液2)每皿细胞加4℃预冷的 PBS。
平放轻轻摇动 1min 洗涤细胞，然后弃去洗液。
重复上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。
将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。
（PBS会降低细胞裂解液的效价和总蛋白的浓度）3)加裂解液于冰上裂解 30 min，为使细胞充分裂解，培养瓶要经常来回摇动（可放置在4℃摇床裂解）。
4)裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至 1.5mL 离心管中。
（整个操作尽量在冰上进行）5)在EP管中将细胞震碎（10s/次，3次）6)于4℃下 12000rpm 离心 20-30 min。
（离心机提前预冷至4℃）7)将离心后的上清分装转移倒 1.5mL 的离心管中放于－20℃保存。
二、BCA法测蛋白浓度1)将BCA protein assay每孔 A液200μL,B液4μL混合，96孔板每孔加入22.5μLdd水，2.5μL蛋白提取液，200μLA+B混合液2)在烘箱中37℃，90r，孵育30min3)使用酶标仪测出吸光度后，使用公式y=0.9154x-0.118计算出蛋白浓度（浓度需要×10）4)将蛋白配成等浓度等体积（使用配置好的裂解液配），按照4：1加入5X loading buffer然后煮5min（100℃），放入-20℃保存三、SDS-PAGE电泳板子1.5mm，梳子1.5mm1）清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲洗2）验漏：玻璃板对齐后放入夹中卡紧，然后垂直卡在架子上，加满水验漏3）灌胶：验漏结束后用纸吸干水分，按方法配制下层胶（4mL+4mL+80μLAP),灌胶时，可用 1mL 枪吸取胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。
然后胶上加1 mL水，液封后的胶凝的更快。
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3 Western blot3.1 试剂配制1）30%聚丙烯酰胺储备液（Acr/Bis）：丙烯酰胺（Acr），29g；N,N-亚甲基双丙烯酰胺（Bis），1g，去离子水溶解，37℃水浴助溶，定容至100mL。
0.45μm滤器过滤，棕色瓶4℃避光保存。
2）10%十二烷基硫酸钠（SDS）：SDS，10g；H2O，80mL。
68℃加热溶解，浓HCl调pH至7.2，定容至100mL，室温保存。
3）10%过硫酸铵（AP）：AP，1g；H2O，10mL。
避光，4℃保存。
（4℃2周）4）分离胶缓冲液（1.5MTris-HCl pH8.8）：Tris，18.17g；H2O 80mL。
用浓HCl调pH至8.8，定容至100mL，4℃保存。
5）浓缩胶缓冲液（1.0MTris-HCl pH6.8）：Tris，12.11g；H2O 80mL。
用浓HCl调pH至6.8，定容至100mL，4℃保存。
6）电泳缓冲液（10×）：甘氨酸（Glycine），188g；Tris 30.2g；SDS，10g；H2O，800mL。
调节pH至8.3，定容至1L，4℃保存（用时稀释为1×）。
7）5×SDS-PAGEloadingBuffer（5mL）：1MTris-HCl（pH6.8），1.25mL；SDS，0.5g；溴酚蓝（BPB），25mg；甘油，2.5mL；加去离子水定容至5mL。
充分混匀，分装成500μL/份，室温保存。
使用前每份加入25μLβ-巯基乙醇（2-ME），加入2-ME的loading buffer可在室温下保存一个月左右。
8）考马斯亮蓝染色固定液：40%双蒸水, 10% 醋酸, 50%甲醇，室温保存9）考马斯亮蓝染色液：考马斯亮蓝R-250，250mg；甲醇，45ml；冰醋酸，10ml；H2O，定容至100ml。
室温保存。
10）考马斯亮蓝染色脱色液：醋酸，100ml；乙醇，50ml；dH2O 850ml，充分混合，室温保存11）膜转移缓冲液：甘氨酸，2.9g；Tris，5.8g；SDS，0.37g；加H2O 600mL充分溶解，加200mL甲醇，混匀，定容至1L，室温保存。
12）TBS缓冲液：NaCl，8.8g；1M Tis-HCL(pH 8.0)，20ml，加入约800 H2O搅拌溶解，定容至1L，4℃保存。
13）TBST缓冲液：NaCl，8.8g；1M Tis-HCL(pH 8.0)，20ml，加入约800 H2O搅拌溶解，加入0.5 ml Tween 20后充分混匀，去离子水定容至1L，4℃保存。
14）1M Tis-HCL(pH 8.0)：Tris 121.1g 置于1L烧杯，加入约800ml去离子水，充分搅拌，加入浓HCL约42ml ，定容至1L，高压灭菌，室温保存。
3.2 Western blot电泳、转膜及显色过程3.2.1 清洗将玻璃板洗净，用ddH2O冲洗，然后晾干。
封板时保证支架与底座胶条契合，固定时两边同时均匀用力旋动齿轮把手，固定即可，不要用力过大以免压碎玻璃。
封好后可装ddH2O试试，确定不漏后再灌胶。
2、制胶①SDS-PAGE分离胶配方表（12% Gel）各种组分名称各种凝胶体积对应的各种组分的取样量(ml)10 ml 15 ml 20 mlH2O 3.3 4.9 6.630%Acrylamide4.0 6.0 8.01.5MTris-Hcl(pH8.8)2.53.8 5.010% SDS 0.1 0.15 0.210%过硫酸铵（AP）0.1 0.15 0.2TEMED 0.004 0.006 0.008②SDS-PAGE浓缩胶（5% Acrylamide）配方表各种组分名称各种凝胶体积对应的各种组分的取样量(ml) 4 ml 5 ml 6 mlH2O 2.7 3.4 4.1 30%Acrylamide0.67 0.83 1.01.0MTris-Hcl(pH6.8)0.5 0.63 0.7510% SDS 0.04 0.05 0.0610%过硫酸铵0.04 0.05 0.06（AP）TEMED 0.004 0.005 0.0063、封胶①按前面方法配分离胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
灌入2/3的分离胶后应立即封胶，胶上加一层水，液封后的胶凝的更快。
（灌胶时开始可快一些，胶面快到所需高度时要放慢速度。
操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。
加水液封时要很慢，否则胶会被冲变型。
②当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了（至少等30-40min）。
再等3min 使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
③按前面方法配5%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。
灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。
插梳子时要使梳子保持水平。
由于胶凝固时体积会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。
4、拔梳子灌好浓缩胶，约40-60min凝胶后均匀用力拔除梳子，若上样孔有变形，可用适当粗细的针头拨正。
5、上样①测完蛋白浓度后，计算含20-40μg蛋白的溶液体积即为上样量。
取出上样样品至0.5ml离心管中，加入5×SDS上样缓冲液至终浓度为1×。
将加入loading buffer的蛋白样品放沸水中煮5-10分钟，高速离心30s即可上样。
上样总体积一般不超过15μl，加样孔的最大限度可加30μl体积。
②加足够的电泳液后开始准备上样，电泳液至少要漫过内测的小玻璃板，外侧漠过底部。
所有蛋白样品调至等浓度后上样，样品两侧的泳道用等体积的1×loading buffer上样。
非预染蛋白Maker准备：1M DTT 2μl与5×loading buffer 20μl混合成稀释液22μl,然后再加入protein MW maker（LOW）5μl、灭菌蒸馏水73μl,混合成蛋白Maker,混合均匀后，煮沸处理5min，分装-20℃保存，取5μl进行10%-15%凝胶电泳。
6、电泳先稳流30mA电泳至上下胶分界时改稳流45mA[直接调总时间1.5h，到时候直接调电流]。
当loading buffer泳动到胶下缘时结束。
电泳时间较长时，应用冰块放电泳槽两边防止溶胶。
7、转膜①剥胶：轻启玻璃板，将胶卸下，切除浓缩胶及无用胶，右上切角标记，在冷的电转液中平衡20-60min。
②材料准备：转一张膜需要2张滤纸（伯乐专用滤纸）和1张0.45um PVDF膜，切滤纸和膜时一定要戴手套，因为手上的蛋白会污染膜。
将切好的硝酸纤维素膜置于水上浸2h才可使用。
用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里，要使膜浮于水上，只有下层才与水接触。
这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。
若膜沉入水里，膜与水之间形成一层空气膜，这样会阻止膜吸水。
③处理：将与胶同样大小的滤纸放在转移液中浸泡片刻，PVDF膜需浸泡甲醇1-2min，再孵育于冰的电转液中5min。
④电转仪转膜：A、打开保护罩，按照如下准备凝胶三明治：B、从底部铂金正极开始放置：●预湿-滤纸●预湿-膜●已平衡的胶●预湿-滤纸注意：每层之间赶走气泡C、连接顶部不锈钢阴极，盖上保护罩D、不同蛋白需要不同优化的条件：参考范围：小胶10V 30min 或者15V 15min大胶25V 30min 或者15V 60min注意：当前不要超过25V，且大胶不要超过3mA/cm2、小胶不要超过5.5 mA/cm2 E、关闭电源，拔掉电极，移除胶注：为了防止溶胶，可将转移缓冲液提前放4℃冰箱预冷过夜⑤膜上蛋白检测：丽春红2%的丽春红储备液（10×）：0.4g丽春红、6g三氯乙酸、6g磺基水杨酸溶于20ml。
丽春红染色工作液：2%的丽春红储备液1:10稀释，即加9倍的ddH2O染色方法：将膜放入TBST洗一次，再置于丽春红染色工作液中，在室温下摇动染色5分钟，大量的水洗膜直至水变清无色，marker条带处用铅笔做好标记。
[回收]PVDF膜需用甲醇再活化后用TBST洗后进行封闭。
8、膜的封闭膜用TBST洗完后，移至含有封闭液[加入一定量的磷酸酶抑制剂1-2ul/20ml]的平皿中，室温下脱色摇床上摇动封闭1h。
再用TBST洗5秒，进入下一步抗体的孵育。
配制5%脱脂奶粉或BSA溶液：每100ml TBST中加入5g脱脂奶粉或BSA，混匀后过滤，如不过滤会导致膜污染上细微黑颗粒。
9、一抗的孵育一抗的准备：将一抗按适当的比例用抗体稀释液稀释。
[加入一定量的磷酸酶抑制剂1-2ul/20ml]孵育buffer：按抗体说明书建议的稀释倍数，用TBST稀释一抗。
一般参考推荐的稀释倍数1:100-1:3000，[1:1000]一抗浓度过高会导致产生非特异性条带。
将PVDF膜浸没于含有一抗的抗体稀释液中室温（25℃左右）轻摇3小时或放4℃冰箱过夜。
若放入4℃冰箱过夜则第二天还应放室温缓慢摇荡1小时。
10、洗涤：一抗孵育结束后，用TBST漂洗膜后再浸洗三次（漂洗后应换容器浸洗），每次10min，以去除残留的一抗。
洗涤结束后进行二抗的孵育。
11、二抗的孵育孵育buffer和稀释倍数：用TBST按说明书推荐的倍数稀释二抗。
常规稀释倍数1:1000-1:20,000[1:1000]，二抗的浓度过高也会导致非特异性条带。
根据一抗来源选择合适的二抗（HRP标记），按相应比例用抗体稀释液稀释，室温轻摇1-2小时。
12、洗涤：二抗孵育结束后，用TBST漂洗膜后再浸洗三次（漂洗后应换容器），每次10min，最后用TBS清洗一次。
注：抗体稀释液稀释的一抗或二抗可回收重复利用数次，抗体稀释液稀释后的抗体可4℃保存约半个月时间。
13、显色-DAB辣根过氧化物酶显色试剂盒（生工）①溶液A在使用之前，37℃温育10分钟，以免产生沉淀。
②在免疫印迹实验中，先将相应的HRP（辣根过氧化物酶）标记的二抗覆盖膜后，在37℃的情况下，于震荡器[摇床]上，震荡[轻摇]一个半小时左右，再用TBST 洗涤膜3~4次，最后一次用TBS洗涤膜，再将膜转移到阴暗处。
③显色前在干净棕色瓶子中配制显色工作液，充分混匀。
反应液10 ml [大培养皿] 5ml [小培养皿]溶液A 200 μl 100ul溶液B 100 μl 50ul溶液C 20 μl 10ul④在阴暗处，将显色液加入膜上，将膜覆盖，在37℃的情况下，摇床反应5min 左右即可，这时棕褐的条带出现⑤倒掉反应液，双蒸水冲洗条带3~4次，[自然干燥]⑥照相记录实验结果。