动物实验报告
动物运动规律实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在探究动物的运动规律，特别是四足动物的运动特点，包括行走、奔跑、跳跃等不同运动方式的基本原理和规律。
通过观察和分析动物的运动，加深对动物生理和行为学的理解。
二、实验材料与器材1. 实验动物：家兔、小鼠、猫、狗等。
2. 实验器材：高速摄像机、运动捕捉系统、电子秤、计时器、测量尺等。
3. 实验软件：图像处理软件、数据分析软件等。
三、实验方法1. 观察法：通过肉眼观察实验动物在不同运动方式下的运动特点，如行走、奔跑、跳跃等。
2. 记录法：利用高速摄像机记录实验动物的运动过程，并进行详细记录。
3. 测量法：使用电子秤、计时器、测量尺等工具，对实验动物的运动速度、频率、距离等参数进行测量。
4. 数据分析法：利用图像处理软件和数据分析软件，对实验数据进行处理和分析。
四、实验步骤1. 实验动物的选择与准备：选择健康、无病、无伤的实验动物，并对其进行编号、称重等基础处理。
2. 实验动物的运动观察：将实验动物放置在实验室内，观察其行走、奔跑、跳跃等运动方式。
3. 运动数据的记录与测量：利用高速摄像机记录实验动物的运动过程，并使用计时器、测量尺等工具进行数据记录和测量。
4. 数据分析：将记录的数据输入计算机，利用图像处理软件和数据分析软件进行数据处理和分析。
五、实验结果与分析1. 家兔的运动规律：- 行走：家兔的行走速度约为2-3米/秒，行走过程中身体呈波浪状起伏，四肢交替向前迈步。
- 奔跑：家兔的奔跑速度约为4-5米/秒，奔跑过程中身体前倾，四肢前后交替摆动。
- 跳跃：家兔的跳跃高度约为0.5米，跳跃过程中身体后仰，四肢同时发力。
2. 小鼠的运动规律：- 行走：小鼠的行走速度约为0.5-1米/秒，行走过程中身体呈直线运动，四肢交替向前迈步。
- 奔跑：小鼠的奔跑速度约为1-2米/秒，奔跑过程中身体前倾，四肢前后交替摆动。
- 跳跃：小鼠的跳跃高度约为0.2米，跳跃过程中身体后仰，四肢同时发力。
校园动物观察实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景随着城市化进程的加快，城市校园内动物种类日益丰富。
为了更好地了解校园内动物的生态习性，提高学生的生态保护意识，我们组织了一次校园动物观察实验。
本次实验旨在观察校园内动物的生活习性、行为特点以及生态环境，为后续的生态保护和校园环境建设提供参考。
二、实验目的1. 了解校园内动物种类及分布情况；2. 观察动物的生活习性、行为特点；3. 分析动物与校园生态环境的关系；4. 提高学生的生态保护意识。
三、实验材料与方法1. 实验地点：某大学校园内；2. 实验时间：2021年9月至2022年1月；3. 实验对象：校园内各类动物；4. 实验方法：（1）实地观察：在校园内进行实地观察，记录动物种类、数量、生活习性等；（2）调查问卷：向学生发放调查问卷，了解他们对校园内动物的认知和保护意识；（3）资料收集：查阅相关文献，了解校园内动物的生态习性及保护措施。
四、实验结果与分析1. 动物种类及分布情况在本次实验中，共观察到校园内动物种类15种，包括鸟类、哺乳类、爬行类、两栖类等。
其中，鸟类数量最多，分布范围最广；哺乳类和爬行类次之；两栖类数量最少，分布范围相对较小。
2. 动物生活习性及行为特点（1）鸟类：校园内鸟类以家燕、麻雀、喜鹊为主。
它们具有迁徙习性，春季迁徙至校园繁殖，秋季迁徙至南方越冬。
鸟类在校园内主要以觅食、筑巢、繁殖等活动为主。
（2）哺乳类：校园内哺乳类以松鼠、蝙蝠、老鼠为主。
它们具有夜间活动习性，白天多隐藏于树木、灌木丛中。
哺乳类在校园内主要以觅食、繁殖、休息等活动为主。
（3）爬行类：校园内爬行类以壁虎、蜥蜴为主。
它们具有适应性强、分布范围广的特点。
爬行类在校园内主要以捕食、繁殖、休息等活动为主。
（4）两栖类：校园内两栖类以青蛙、蟾蜍为主。
它们具有季节性迁徙习性，春季迁徙至校园繁殖，秋季迁徙至南方越冬。
两栖类在校园内主要以捕食、繁殖、休息等活动为主。
3. 动物与校园生态环境的关系校园内动物种类丰富，生态环境良好。
动物学科实验报告
实验名称：动物心脏功能实验实验目的：1. 了解动物心脏的结构和功能。
2. 学习心脏功能实验的基本操作和数据分析方法。
3. 通过实验验证心脏功能的相关理论知识。
实验时间：2023年X月X日实验地点：动物实验室实验材料：1. 实验动物：成年家兔1只2. 实验仪器：手术显微镜、手术器械、心脏功能测定仪、生理盐水、记录纸、笔等实验方法：1. 家兔麻醉：将家兔置于手术台上，采用吸入麻醉法进行麻醉。
2. 心脏暴露：沿家兔胸部正中线切开皮肤，暴露心脏。
3. 心脏连接：将心脏功能测定仪的电极连接到心脏表面，确保连接牢固。
4. 数据采集：开启心脏功能测定仪，记录心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据。
5. 心脏功能实验：分别进行心脏负荷实验、心脏缺血实验和心脏药物实验，观察心脏功能的变化。
实验步骤：1. 心脏负荷实验：向家兔体内注入生理盐水，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
2. 心脏缺血实验：阻断家兔心脏的冠状动脉血流，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
3. 心脏药物实验：向家兔体内注入心脏药物，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
实验结果：1. 心脏负荷实验：家兔心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据在注入生理盐水后无明显变化。
2. 心脏缺血实验：阻断家兔心脏的冠状动脉血流后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显降低。
3. 心脏药物实验：注入心脏药物后，家兔心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显升高。
实验分析：1. 心脏负荷实验：生理盐水对心脏功能无显著影响，说明心脏具有较好的耐受性。
2. 心脏缺血实验：阻断冠状动脉血流后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显降低，说明心脏在缺血状态下功能受到损害。
3. 心脏药物实验：注入心脏药物后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显升高，说明心脏药物具有改善心脏功能的作用。
实验结论：1. 心脏具有较好的耐受性，在正常生理状态下能够承受一定的负荷。
动物实验报告范本
一、实验名称实验动物的基本操作技术二、实验目的1. 掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法。
2. 熟悉小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术。
3. 掌握小鼠颈椎脱臼法处死方法、小鼠脏器系数的概念及其测定方法。
4. 了解实验动物的被毛去除方法、实验动物粪、尿的收集、小鼠血液样本采集方法。
三、实验材料与器材1. 实验动物：健康小鼠若干2. 器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯若干。
四、实验方法1. 观察指标（1）小鼠的体型、发育情况；（2）毛发是否清洁浓密有光泽，是否顺贴不蓬乱；（3）行动是否迅速，反应是否灵敏；（4）眼睛是否明亮有神，瞳孔是否清晰等圆；（5）天然孔道是否干净、有无分泌物。
2. 小鼠捉拿（1）右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
（2）此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
3. 小鼠性别鉴定（1）观察肛门与生殖器之间的距离。
雄性大鼠的距离较大，雌性的距离较小。
（2）成年雄鼠尾部可见睾丸，成年雌鼠可见乳头。
4. 小鼠称重（1）打开电子天平，待读数显示稳定后，将平皿置于天平上，去皮。
（2）将小鼠置于平皿中，待读数显示稳定。
5. 灌胃给药（1）将注射器装入药物溶液，装上灌胃针。
（2）将小鼠固定在实验台上，轻轻插入灌胃针，缓慢注入药物。
6. 腹腔注射给药（1）将小鼠固定在实验台上，选择注射部位。
（2）用注射器吸取药物，插入注射部位，缓慢注入药物。
7. 小鼠颈椎脱臼法处死（1）将小鼠固定在实验台上，选择颈椎部位。
（2）用左手握住小鼠头部，右手握住小鼠颈部，迅速将颈椎脱臼。
8. 脏器系数测定（1）取出小鼠脏器，用电子天平称重。
（2）计算脏器系数：脏器重量/体重。
9. 实验动物被毛去除（1）将实验动物固定在实验台上。
（2）用脱毛剂涂抹实验动物被毛。
（3）待脱毛剂起泡后，用刷子轻轻刷去被毛。
实验动物学实验报告鸡(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解鸡的生物学特性、生理功能及生长发育规律。
2. 掌握鸡的饲养管理技术，为实验动物学教学和科研提供基础。
二、实验材料1. 实验动物：鸡（品种、年龄、性别等）2. 实验器材：温度计、湿度计、饲料、饮水器、称重器、笼具等3. 实验试剂：消毒液、营养液等三、实验方法1. 观察鸡的外部形态结构，了解其生长发育规律。
（1）观察鸡的头部、颈部、胸部、腹部、尾部等部位，记录其形态、颜色、羽毛等特征。
（2）测量鸡的体长、体重、翼长等指标，了解其生长发育规律。
2. 观察鸡的生理功能。
（1）观察鸡的呼吸、心跳、排泄等生理现象。
（2）观察鸡的采食、饮水等行为。
3. 掌握鸡的饲养管理技术。
（1）了解鸡的饲料种类、营养成分、饲养方式等。
（2）观察鸡的饲养环境，包括温度、湿度、光照等。
（3）掌握鸡的消毒、防疫、疾病防治等技术。
四、实验结果与分析1. 鸡的形态结构（1）头部：鸡的头部呈椭圆形，有喙、眼、耳等器官。
（2）颈部：鸡的颈部细长，肌肉发达，有利于采食和呼吸。
（3）胸部：鸡的胸部宽大，有发达的胸肌，有利于飞行。
（4）腹部：鸡的腹部较宽，有利于消化和生殖。
（5）尾部：鸡的尾部较短，羽毛密实，有利于保温。
2. 鸡的生理功能（1）呼吸：鸡的呼吸以肺为主，气囊辅助呼吸。
（2）心跳：鸡的心脏四腔，心跳较快，有利于血液循环。
（3）排泄：鸡的排泄器官有肾脏、输尿管、泄殖腔等。
（4）采食：鸡的喙尖利，善于啄食。
（5）饮水：鸡的饮水需求较高，需保持充足的水源。
3. 鸡的饲养管理技术（1）饲料：鸡的饲料应富含蛋白质、碳水化合物、脂肪、维生素和矿物质等。
（2）饲养环境：鸡的饲养环境应保持适宜的温度、湿度、光照等，以利于其生长发育。
（3）消毒：定期对鸡舍、饲料、饮水等消毒，预防疾病传播。
（4）防疫：定期进行疫苗接种，预防疫病发生。
（5）疾病防治：发现病鸡应及时隔离治疗，防止疫情扩散。
五、实验总结本次实验通过对鸡的形态结构、生理功能及饲养管理技术的观察，使我们对鸡的生物学特性有了更深入的了解。
生物实验报告动物观察(3篇)
第1篇一、实验目的1. 培养学生对动物行为的观察和记录能力。
2. 了解动物在不同环境下的行为表现，探讨环境因素对动物行为的影响。
3. 增强学生对生物学知识的理解和应用。
二、实验材料1. 实验动物：小白鼠、金鱼、鸽子、蝴蝶等。
2. 实验器材：观察箱、显微镜、望远镜、录音笔、照相机等。
3. 实验环境：实验室、校园、动物园等。
三、实验方法1. 观察动物行为：观察不同动物在不同环境下的行为表现，如活动、觅食、交配、繁殖、防御等。
2. 记录观察结果：使用观察箱、显微镜、望远镜等工具对动物行为进行详细记录，包括时间、地点、行为特点等。
3. 分析数据：对观察到的动物行为进行分析，探讨环境因素对动物行为的影响。
四、实验步骤1. 观察小白鼠：a. 观察小白鼠的活动范围、活动规律；b. 观察小白鼠的觅食行为，记录其食物种类、数量；c. 观察小白鼠的繁殖行为，记录其繁殖时间、繁殖数量。
2. 观察金鱼：a. 观察金鱼的活动范围、活动规律；b. 观察金鱼的觅食行为，记录其食物种类、数量；c. 观察金鱼的繁殖行为，记录其繁殖时间、繁殖数量。
3. 观察鸽子：a. 观察鸽子的活动范围、活动规律；b. 观察鸽子的觅食行为，记录其食物种类、数量；c. 观察鸽子的繁殖行为，记录其繁殖时间、繁殖数量。
4. 观察蝴蝶：a. 观察蝴蝶的活动范围、活动规律；b. 观察蝴蝶的觅食行为，记录其食物种类、数量；c. 观察蝴蝶的繁殖行为，记录其繁殖时间、繁殖数量。
五、实验结果与分析1. 观察小白鼠：a. 小白鼠的活动范围较广，活动规律为白天休息，夜间活动；b. 小白鼠的觅食行为以植物种子为主，数量较少；c. 小白鼠的繁殖时间为春季，繁殖数量较多。
2. 观察金鱼：a. 金鱼的活动范围较窄，活动规律为白天觅食，夜间休息；b. 金鱼的觅食行为以水生植物、浮游生物为主，数量较多；c. 金鱼的繁殖时间为夏季，繁殖数量较多。
3. 观察鸽子：a. 鸽子的活动范围较广，活动规律为白天觅食，夜间休息；b. 鸽子的觅食行为以谷物、种子为主，数量较多；c. 鸽子的繁殖时间为春季，繁殖数量较多。
观察动物行为实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 通过观察动物的行为，了解动物在不同环境下的行为特征。
2. 学习运用观察法、实验法等方法对动物行为进行研究。
3. 培养科学观察、分析问题的能力。
二、实验时间与地点实验时间：2023年4月15日实验地点：某动物园三、实验对象实验对象包括以下动物种类：1. 非洲象2. 长颈鹿3. 狮子4. 羊驼5. 鹦鹉四、实验方法1. 观察法：在自然状态下，运用感官和辅助工具对动物的行为进行观察和记录。
2. 实验法：在人为控制的环境下，对动物的行为进行观察和记录。
五、实验内容与过程1. 观察非洲象的行为（1）观察时间：上午9:00-10:00（2）观察地点：非洲象馆（3）观察内容：- 非洲象的进食行为：观察非洲象如何用长鼻子取食树叶，以及如何用牙齿咀嚼食物。
- 社群行为：观察非洲象的家族结构，以及家族成员之间的互动。
- 领域行为：观察非洲象如何用鼻子在地面划出领地范围。
2. 观察长颈鹿的行为（1）观察时间：上午10:30-11:30（2）观察地点：长颈鹿馆（3）观察内容：- 进食行为：观察长颈鹿如何用长颈取食树叶，以及如何用蹄子清理树叶上的灰尘。
- 社群行为：观察长颈鹿的家族结构，以及家族成员之间的互动。
- 领域行为：观察长颈鹿如何用蹄子在地面上划出领地范围。
3. 观察狮子的行为（1）观察时间：下午1:00-2:00（2）观察地点：狮子馆（3）观察内容：- 捕食行为：观察狮子如何捕食猎物，以及如何分配食物。
- 社群行为：观察狮子的家族结构，以及家族成员之间的互动。
- 领域行为：观察狮子如何用爪子在地面上划出领地范围。
4. 观察羊驼的行为（1）观察时间：下午2:30-3:30（2）观察地点：羊驼馆（3）观察内容：- 进食行为：观察羊驼如何用蹄子挖掘食物，以及如何用嘴巴取食。
- 社群行为：观察羊驼的家族结构，以及家族成员之间的互动。
- 领域行为：观察羊驼如何用蹄子在地面上划出领地范围。
5. 观察鹦鹉的行为（1）观察时间：下午4:00-5:00（2）观察地点：鹦鹉馆（3）观察内容：- 社交行为：观察鹦鹉如何与其他鹦鹉进行交流，以及如何进行群体活动。
医学检验动物实验报告(3篇)
第1篇一、实验名称医学检验动物实验二、实验目的1. 掌握动物实验的基本操作技能。
2. 了解医学检验的基本原理和方法。
3. 通过实验，提高对医学检验相关知识的理解和应用能力。
三、实验原理医学检验是通过检测生物体中的生理、生化、遗传、免疫等指标，以判断机体是否存在疾病或潜在疾病的一种方法。
本实验以动物为模型，通过实验操作，了解医学检验的基本原理和方法。
四、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）。
2. 仪器：灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
3. 试剂：生理盐水、抗生素、实验药物、实验指示剂等。
五、实验步骤1. 抓取和固定1.1 抓取：左手抓小鼠的尾根部。
1.2 固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
同样操作将大鼠抓取和固定。
2. 性别鉴定2.1 抓取和固定小鼠。
2.2 观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密；雌性：距离短，毛发稀疏。
同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法：按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
固定后，右手持接灌胃针的注射器吸取药液，将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
用大鼠重复同样操作。
3.2 注射给药：皮下注射，用左手抓取和固定小鼠，右手持注射器吸取药液，从皮下注射入小鼠体内。
4. 实验操作4.1 生理指标检测：测量小鼠的体温、心率、呼吸频率等生理指标。
4.2 生化指标检测：采集小鼠血液，检测血糖、血脂、肝功能等生化指标。
4.3 遗传指标检测：提取小鼠DNA，进行基因检测。
4.4 免疫指标检测：检测小鼠的免疫细胞数量、免疫功能等指标。
动物消化实验实验报告
一、实验目的1. 了解动物消化系统的结构和功能。
2. 掌握消化实验的基本操作方法。
3. 观察并分析动物消化过程中的现象，加深对消化过程的理解。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔1只2. 仪器：解剖台、解剖剪、镊子、剪刀、解剖针、解剖盘、酒精灯、解剖镜、玻璃杯、量筒、滴管、试管、蒸馏水、生理盐水、碘酒、棉球等。
3. 药品：10%福尔马林溶液、盐酸、氢氧化钠、酚酞指示剂、稀盐酸等。
三、实验步骤1. 家兔麻醉：用10%福尔马林溶液进行局部麻醉，使家兔昏迷。
2. 解剖：将家兔仰卧固定在解剖台上，剪开腹部皮肤，暴露腹腔器官。
3. 观察消化器官：观察胃、小肠、大肠等消化器官的结构特点，并记录。
4. 消化实验：a. 取少量胃内容物，加入稀盐酸，观察颜色变化。
b. 取少量小肠内容物，加入氢氧化钠，观察颜色变化。
c. 取少量大肠内容物，加入酚酞指示剂，观察颜色变化。
5. 消化实验现象分析：a. 胃内容物加入稀盐酸后，颜色变红，说明胃液呈酸性。
b. 小肠内容物加入氢氧化钠后，颜色变蓝，说明小肠液呈碱性。
c. 大肠内容物加入酚酞指示剂后，颜色不变，说明大肠液呈中性。
6. 消化实验结论：a. 家兔的胃液呈酸性，有利于消化蛋白质。
b. 家兔的小肠液呈碱性，有利于消化碳水化合物和脂肪。
c. 家兔的大肠液呈中性，有利于水分和电解质的吸收。
四、实验现象1. 家兔的胃壁较厚，呈囊状，内含胃液，颜色呈黄色。
2. 家兔的小肠壁较薄，内含小肠液，颜色呈淡黄色。
3. 家兔的大肠壁较厚，内含大肠液，颜色呈淡黄色。
五、实验结论1. 家兔的消化系统由胃、小肠、大肠等器官组成，各器官具有不同的消化功能。
2. 家兔的胃液呈酸性，有利于消化蛋白质。
3. 家兔的小肠液呈碱性，有利于消化碳水化合物和脂肪。
4. 家兔的大肠液呈中性，有利于水分和电解质的吸收。
六、实验讨论1. 本实验通过观察家兔消化器官的结构和功能，加深了对动物消化过程的理解。
2. 实验结果表明，动物消化系统具有复杂的结构和功能，各种消化器官相互协作，共同完成消化任务。
科学动物小实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蚂蚁的觅食行为特点；2. 探究蚂蚁觅食过程中的信息传递方式；3. 分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义。
二、实验材料1. 实验对象：蚂蚁（种类不限，数量若干）2. 实验器材：培养皿、透明胶带、食物（如糖水、肉末等）、放大镜、尺子、计时器等三、实验方法1. 观察蚂蚁觅食行为：将蚂蚁放入培养皿中，观察蚂蚁在培养皿内的活动情况，记录蚂蚁觅食行为的特点。
2. 探究蚂蚁觅食过程中的信息传递方式：在培养皿内放置食物，用透明胶带将食物与培养皿边缘粘合，防止蚂蚁爬出。
观察蚂蚁觅食过程中的行为变化，如触角、身体弯曲等，分析蚂蚁觅食过程中的信息传递方式。
3. 分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义：结合观察结果，分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义，如蚂蚁在生态平衡、土壤改良等方面的作用。
四、实验步骤1. 准备实验材料，将蚂蚁放入培养皿中；2. 观察蚂蚁在培养皿内的活动情况，记录蚂蚁觅食行为的特点；3. 在培养皿内放置食物，用透明胶带将食物与培养皿边缘粘合；4. 观察蚂蚁觅食过程中的行为变化，分析蚂蚁觅食过程中的信息传递方式；5. 分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义；6. 整理实验数据，撰写实验报告。
五、实验结果与分析1. 观察结果：蚂蚁在培养皿内表现出明显的觅食行为，如爬行、触角接触、身体弯曲等。
蚂蚁觅食过程中，触角起到了重要的作用，它们通过触角感知食物的气味，从而确定食物的位置。
2. 信息传递方式：在实验过程中，蚂蚁通过触角感知食物的气味，并将这一信息传递给其他蚂蚁。
当一只蚂蚁发现食物后，它会通过触角与其他蚂蚁接触，将信息传递给它们，从而引导其他蚂蚁前往食物所在地。
3. 蚂蚁觅食行为对人类生活的意义：蚂蚁在生态平衡、土壤改良等方面具有重要作用。
它们能够分解有机物质，促进土壤肥力；同时，蚂蚁还能够控制害虫，维持生态平衡。
六、实验结论1. 蚂蚁的觅食行为具有明显的特点，如触角感知、身体弯曲等；2. 蚂蚁觅食过程中的信息传递方式主要是通过触角；3. 蚂蚁觅食行为对人类生活具有重要作用，如生态平衡、土壤改良等。
作文动物实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验背景随着科学技术的不断发展，动物实验在医学、生物学、药理学等领域扮演着至关重要的角色。
本实验旨在探究某种药物对特定动物模型的影响，为后续的临床应用提供实验依据。
本次实验选取了XX动物作为实验对象，通过给予其不同剂量的药物，观察并记录其生理和行为变化。
二、实验目的1. 评估该药物对XX动物生理指标的影响；2. 观察药物对XX动物行为的影响；3. 为该药物的临床应用提供实验依据。
三、实验方法1. 实验动物：选取健康、年龄相当的XX动物XX只，随机分为实验组和对照组，每组XX只。
2. 实验分组：实验组给予不同剂量的药物，对照组给予等体积的生理盐水。
3. 实验步骤：（1）实验前，对实验动物进行适应性饲养，使其适应实验环境。
（2）实验过程中，定期监测实验动物的生理指标，如心率、血压、体温等。
（3）观察并记录实验动物的行为变化，如活动能力、睡眠质量、摄食情况等。
（4）实验结束后，对实验数据进行统计分析。
四、实验结果1. 生理指标变化：（1）实验组动物的心率、血压、体温等生理指标与对照组相比，无显著性差异（P>0.05）。
（2）实验组动物的心率、血压、体温等生理指标在不同剂量组间无显著性差异（P>0.05）。
2. 行为变化：（1）实验组动物的活动能力、睡眠质量、摄食情况等行为与对照组相比，无显著性差异（P>0.05）。
（2）实验组动物的行为在不同剂量组间无显著性差异（P>0.05）。
五、实验结论本次实验结果表明，该药物对XX动物无明显的生理和行为影响。
根据实验结果，该药物在临床应用中具有较大的安全性。
六、实验讨论1. 实验过程中，我们选取了健康、年龄相当的XX动物作为实验对象，确保了实验结果的可靠性。
2. 实验过程中，我们采用了随机分组的方法，避免了人为因素的影响。
3. 实验结果显示，该药物对XX动物无明显的生理和行为影响，表明该药物在临床应用中具有较高的安全性。
七、实验展望1. 在后续的研究中，我们将进一步探讨该药物在不同动物模型中的药效和安全性。
动物实验报告学期小结(3篇)
第1篇一、前言本学期，我参加了动物实验课程的学习，通过一系列的动物实验，我对生物学的基本原理和方法有了更深入的了解。
以下是对本学期动物实验的学习心得和总结。
二、实验内容概述本学期，我们进行了多个动物实验，主要包括以下几个方面：1. 动物解剖实验：通过对不同动物（如青蛙、小鼠等）的解剖，了解动物内部器官的结构和功能。
2. 组织切片实验：学习制作动物组织切片，观察细胞和组织的细微结构。
3. 生化实验：通过动物实验，学习检测血液、尿液等生物样品中的生化指标。
4. 免疫学实验：学习动物免疫系统的基本原理，进行抗原-抗体反应实验。
5. 行为学实验：观察动物在不同环境下的行为表现，了解动物行为与神经系统之间的关系。
三、实验过程及心得1. 动物解剖实验在动物解剖实验中，我学会了如何解剖青蛙、小鼠等动物，了解了动物内部器官的形态和功能。
通过实验，我认识到动物解剖是研究生物学的重要方法，有助于我们深入理解生物体的结构和功能。
2. 组织切片实验在组织切片实验中，我学会了如何制作动物组织切片，并使用显微镜观察细胞和组织的细微结构。
通过实验，我掌握了组织切片的制作方法，提高了观察细胞和组织的能力。
3. 生化实验在生化实验中，我学习了检测血液、尿液等生物样品中的生化指标。
通过实验，我了解了生化指标在疾病诊断和健康评估中的重要作用。
4. 免疫学实验在免疫学实验中，我学习了动物免疫系统的基本原理，并进行了抗原-抗体反应实验。
通过实验，我掌握了免疫学的基本知识，提高了对免疫学实验的操作能力。
5. 行为学实验在行为学实验中，我观察了动物在不同环境下的行为表现，了解了动物行为与神经系统之间的关系。
通过实验，我认识到行为学在研究动物生理和心理活动中的重要性。
四、实验收获与反思1. 收获（1）掌握了动物实验的基本原理和方法，提高了实验操作能力。
（2）深入了解了生物学的基本知识，为今后的学习奠定了基础。
（3）培养了严谨的科学态度和团队协作精神。
动物呼吸运动实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解动物呼吸运动的基本原理和过程。
2. 观察和分析动物呼吸运动的影响因素。
3. 掌握动物呼吸运动实验的基本方法和技能。
二、实验原理呼吸运动是动物机体进行气体交换的重要生理过程，包括吸气和呼气两个阶段。
呼吸运动主要受呼吸中枢的控制，同时受到各种内外因素的影响。
本实验通过观察动物呼吸运动的变化，分析影响呼吸运动的各种因素。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验器材：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、CO2气囊等。
3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、%KCN装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。
四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
2. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管，在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
3. 连接呼吸流量换能器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并通过计算机采集系统实时记录呼吸流量变化。
4. 实验项目：a. 记录正常呼吸运动曲线。
b. 增加无效腔：将一定量的空气注入家兔肺部，观察呼吸运动的变化。
c. 增加二氧化碳浓度：将装有CO2的气袋与气管插管连接，观察呼吸运动的变化。
d. 短暂窒息：用橡皮管封闭气管插管，观察呼吸运动的变化。
e. 剪断迷走神经：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
5. 实验数据记录与分析：记录不同实验条件下家兔的呼吸频率、节律、幅度等呼吸运动指标，并进行统计分析。
五、实验结果与分析1. 正常呼吸运动曲线：家兔呼吸运动呈现规律性的周期性变化，吸气时肺扩张，呼气时肺缩小。
2. 增加无效腔：增大无效腔后，家兔呼吸幅度增大，呼吸频率加快。
3. 增加二氧化碳浓度：增加二氧化碳浓度后，家兔呼吸频率加快，呼吸幅度增大。
动物进化的实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过模拟动物进化的过程，探讨自然选择、遗传变异和基因频率变化在物种进化中的作用。
通过观察和记录实验过程中动物群体的变化，分析进化过程中的关键因素，并探讨进化的可能路径。
二、实验材料与器材1. 实验材料：- 100只实验鼠（相同品种、性别和体重）- 实验鼠的食物（富含蛋白质、维生素和矿物质的颗粒饲料）- 实验鼠的水（清洁饮用水）- 实验鼠的栖息地（模拟自然环境的饲养箱）- 遗传变异因素（如基因突变、基因重组等）2. 实验器材：- 计时器- 电子天平- 遗传学分析软件- 数据记录表格三、实验方法1. 实验分组：将100只实验鼠随机分为10组，每组10只，编号为A1-A10。
2. 模拟自然选择：- 设置不同的食物和栖息地条件，模拟自然环境中食物和资源的竞争。
- 观察并记录每组的生存率和繁殖率。
3. 遗传变异：- 通过基因突变、基因重组等方式引入遗传变异。
- 观察并记录变异基因在群体中的分布和频率变化。
4. 数据分析：- 利用遗传学分析软件对实验数据进行处理和分析。
- 计算基因频率变化、自然选择系数等指标。
5. 实验周期：- 实验周期为3个月，每月观察和记录一次。
四、实验步骤1. 实验鼠准备：- 对实验鼠进行编号、称重和外观检查，确保实验鼠的健康状况。
2. 模拟自然选择：- 将实验鼠随机分配到不同的饲养箱中，设置不同的食物和栖息地条件。
- 观察并记录每组的生存率和繁殖率。
3. 遗传变异：- 在实验过程中，通过基因突变、基因重组等方式引入遗传变异。
- 观察并记录变异基因在群体中的分布和频率变化。
4. 数据记录：- 每月记录每组的生存率、繁殖率、基因频率变化等数据。
5. 数据分析：- 利用遗传学分析软件对实验数据进行处理和分析。
- 计算基因频率变化、自然选择系数等指标。
6. 实验结果：- 根据实验数据，分析进化过程中的关键因素，探讨进化的可能路径。
五、实验结果与分析1. 生存率和繁殖率：- 在模拟自然选择的过程中，不同组别的实验鼠生存率和繁殖率存在显著差异。
动物组织提取实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握从动物组织中提取DNA的基本原理和方法。
2. 熟悉实验操作流程，包括组织处理、裂解、纯化、沉淀和溶解等步骤。
3. 学习使用酚-氯仿法提取DNA，并掌握相关试剂和仪器的使用。
二、实验原理动物组织中的DNA主要以染色体的形式存在于细胞核内。
提取DNA的目的是将DNA与蛋白质、脂类和糖类等分离，同时保持DNA分子的完整性。
本实验采用酚-氯仿法提取DNA，其原理如下：1. 使用SDS（十二烷基硫酸钠）和蛋白酶K处理组织，破坏细胞膜，使蛋白质变性并溶解。
2. 加入酚和氯仿/异戊醇，通过酚的变性作用和氯仿/异戊醇的相容性，使蛋白质和DNA分离。
3. 通过离心，将蛋白质和杂质与DNA分离。
4. 用乙醇沉淀DNA，得到纯净的DNA。
三、实验材料1. 实验动物：小鼠或鸡2. 试剂：SDS、蛋白酶K、酚、氯仿/异戊醇、乙醇、TE缓冲液、NaCl、EDTA、液氮、离心机、移液器、玻璃匀浆器、离心管、吸头等四、实验步骤1. 组织处理- 称取适量动物组织（如肝脏、肌肉等），用液氮迅速冷冻。
- 将冷冻的组织移入研钵中，加入适量的裂解缓冲液（含SDS、蛋白酶K、NaCl、EDTA等），用研钵研磨至匀浆状。
- 将匀浆移入离心管中，加入等体积的酚和氯仿/异戊醇，充分混匀。
- 4℃下静置30分钟，待蛋白质变性沉淀。
2. 离心分离- 将离心管以12,000 rpm离心10分钟，弃去上清液。
- 将沉淀中加入适量的TE缓冲液，充分混匀。
- 再次以12,000 rpm离心10分钟，弃去上清液。
3. DNA沉淀- 向沉淀中加入适量的乙醇，混匀后静置2-3分钟。
- 将沉淀移入新的离心管中，以12,000 rpm离心5分钟。
- 弃去上清液，用75%乙醇洗涤沉淀1次。
- 将沉淀干燥，加入适量的TE缓冲液溶解。
4. DNA纯化- 将溶解的DNA溶液通过0.22 μm滤膜过滤，去除杂质。
- 使用紫外分光光度计测定DNA浓度。
大学动物新生实验报告
一、实验目的通过本次实验，了解动物实验的基本操作流程，掌握动物解剖的基本技能，熟悉实验动物的生理特点，为后续的动物实验打下坚实的基础。
二、实验时间2023年X月X日三、实验地点动物实验室四、实验材料1. 实验动物：小白鼠（雄性，体重20-25g）2. 实验器材：解剖台、解剖剪、镊子、解剖针、解剖刀、解剖盘、生理盐水、酒精、棉球等3. 实验药品：肾上腺素、肾上腺皮质激素、甲状腺激素等五、实验步骤1. 准备工作（1）检查实验动物是否健康，体重是否符合要求。
（2）准备好实验器材和药品。
2. 动物麻醉（1）将小白鼠放在解剖台上，用酒精棉球消毒其腹部。
（2）按照实验指导书要求，进行动物麻醉。
3. 解剖操作（1）剪开小白鼠的腹部皮肤，暴露内脏。
（2）用解剖剪和镊子分离肌肉和内脏。
（3）观察并记录小白鼠的消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
4. 内分泌腺分离（1）分离肾上腺、甲状腺、垂体等内分泌腺。
（2）观察并记录内分泌腺的结构和功能。
5. 实验操作（1）在肾上腺上滴加肾上腺素，观察小白鼠的反应。
（2）在甲状腺上滴加甲状腺激素，观察小白鼠的反应。
6. 清理实验现场（1）将实验动物内脏和废弃物品放入解剖盘。
（2）用酒精棉球消毒实验台。
六、实验结果1. 动物解剖（1）消化系统：胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊等器官结构完整，功能正常。
（2）呼吸系统：肺、气管、支气管等器官结构完整，功能正常。
（3）循环系统：心脏、血管等器官结构完整，功能正常。
（4）泌尿系统：肾脏、输尿管、膀胱等器官结构完整，功能正常。
（5）生殖系统：睾丸、卵巢、输卵管、子宫等器官结构完整，功能正常。
2. 内分泌腺分离（1）肾上腺：呈黄色，质地柔软，功能正常。
（2）甲状腺：呈棕红色，质地柔软，功能正常。
（3）垂体：呈淡黄色，质地柔软，功能正常。
3. 实验操作（1）肾上腺素：小白鼠出现兴奋、心率加快、血压升高等反应。
（2）甲状腺激素：小白鼠出现代谢加快、心率加快、食欲增加等反应。
趣味动物生物实验报告
实验名称：动物行为观察与实验实验时间：2023年3月15日实验地点：XX动物园实验目的：通过观察和实验，了解不同动物的行为特征，探讨动物行为的生物学基础。
实验材料：1. 观察对象：猴子、鸽子、鱼、蛇等不同种类的动物。
2. 实验设备：摄像机、录音笔、食物诱饵、实验场所等。
实验过程：一、观察阶段1. 观察猴子：- 观察时间：上午9:00-10:00- 观察内容：猴子的社交行为、食物获取行为、玩耍行为等。
- 观察结果：猴子群体中有明显的等级制度，强壮的猴子往往占据食物资源，而年轻的猴子则跟随长辈学习生存技能。
猴子在玩耍时，表现出模仿和合作的行为。
2. 观察鸽子：- 观察时间：下午2:00-3:00- 观察内容：鸽子的领地行为、觅食行为、繁殖行为等。
- 观察结果：鸽子在领地内表现出筑巢、保护领地的行为，觅食时成群结队，繁殖季节则表现出交配和抚养后代的行为。
3. 观察鱼：- 观察时间：下午4:00-5:00- 观察内容：鱼类的社交行为、食物获取行为、迁徙行为等。
- 观察结果：鱼类在水中游动时，表现出群体行为，如跟随领导鱼、成群觅食等。
在繁殖季节，鱼类会迁徙到特定的水域进行繁殖。
4. 观察蛇：- 观察时间：晚上7:00-8:00- 观察内容：蛇的捕食行为、伪装行为、冬眠行为等。
- 观察结果：蛇在捕食时表现出隐蔽、突然袭击的行为，善于伪装自己以捕捉猎物。
在寒冷的冬季，蛇会进入冬眠状态，减少能量消耗。
二、实验阶段1. 实验一：猴子食物获取实验- 实验目的：观察猴子在食物获取过程中的行为变化。
- 实验方法：将猴子放入一个有多个食物投放点的实验场所，观察猴子如何选择食物和获取食物的过程。
- 实验结果：猴子在实验场所中，通过观察和尝试，迅速找到食物投放点，并成功获取食物。
2. 实验二：鸽子领地行为实验- 实验目的：观察鸽子在领地内的行为特征。
- 实验方法：在鸽子的领地内放置两个类似的食物投放点，观察鸽子如何选择和占领食物投放点。
基础科研动物实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本研究旨在探究XX动物模型在XX疾病发生发展中的作用，为XX疾病的预防和治疗提供新的理论依据。
二、实验材料1. 实验动物：XX种，XX月龄，体重XX克，共XX只。
2. 实验试剂：XX试剂、XX试剂、XX试剂等。
3. 实验仪器：XX仪器、XX仪器、XX仪器等。
三、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为XX组，包括对照组和实验组。
2. 实验动物处理：对照组给予正常饲养，实验组给予XX处理。
3. 实验指标检测：- XX指标：采用XX方法检测。
- XX指标：采用XX方法检测。
- XX指标：采用XX方法检测。
4. 数据分析：采用XX统计软件进行数据分析。
四、实验结果1. XX指标检测结果：- 对照组XX指标：XX（单位）。
- 实验组XX指标：XX（单位）。
2. XX指标检测结果：- 对照组XX指标：XX（单位）。
- 实验组XX指标：XX（单位）。
3. XX指标检测结果：- 对照组XX指标：XX（单位）。
- 实验组XX指标：XX（单位）。
五、讨论本研究通过XX动物模型，成功模拟了XX疾病的发生发展过程。
实验结果显示，实验组动物的XX指标显著高于对照组，提示XX处理可能对XX疾病的发生发展具有促进作用。
进一步分析表明，XX处理可能通过XX途径影响XX指标，从而导致XX 疾病的发生。
本研究结果为XX疾病的预防和治疗提供了新的思路。
然而，本研究也存在一定的局限性，如实验动物数量有限、实验指标单一等。
未来研究将进一步扩大实验动物数量，增加实验指标，以期为XX疾病的预防和治疗提供更全面的理论依据。
六、结论本研究通过XX动物模型，成功模拟了XX疾病的发生发展过程，并初步揭示了XX 处理对XX疾病的影响。
这为XX疾病的预防和治疗提供了新的思路，但还需进一步研究以证实其临床应用价值。
七、参考文献[1] XX，XX. XX研究进展[J]. XX杂志，XX（XX）：XX-XX.[2] XX，XX，XX，等. XX疾病的研究[J]. XX杂志，XX（XX）：XX-XX.[3] XX，XX，XX，等. XX动物模型建立及研究进展[J]. XX杂志，XX（XX）：XX-XX.八、附录1. 实验动物饲养记录表。
动物学实验报告(范文)(一)2024
动物学实验报告(范文)（一）引言概述：动物学实验报告是对特定动物或一组动物进行观察、记录和分析的科学性文档，通过实验分析动物的行为、特征和生态习性，从而更好地了解动物的生态环境和行为模式。
本报告将对一组实验中的动物进行观察和记录，并从以下五个方面进行详细阐述：动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式。
一、动物的外部特征：1. 观察动物的体型、体长、体重等基本特征；2. 记录动物的体色、毛发和羽毛等外部特征；3. 探究动物的头部结构、四肢形态等特征；4. 观察动物的感觉器官如眼睛、耳朵等的形态和构造；5. 记录动物的运动能力和适应环境的特征。
二、动物的生态环境：1. 调查动物栖息地的地理位置和气候条件；2. 分析动物所处环境的地形和植被状况；3. 记录动物栖息地的海拔高度和水域特征；4. 探究动物栖息地的食物来源和天敌情况；5. 分析动物栖息地对其生活和繁殖的影响。
三、动物的行为模式：1. 观察动物的觅食行为和觅食策略；2. 记录动物的睡眠习性和活动规律；3. 探究动物的社交行为和群体组织结构；4. 观察动物的逃避和防御行为；5. 分析动物的繁殖行为和繁殖季节。
四、动物的饮食习性：1. 调查动物食性类型和摄食方式；2. 记录动物的主要食物来源和摄入量；3. 探究动物的消化系统结构和功能；4. 观察动物对不同食物的偏好和适应能力；5. 分析动物的饮食选择和食物摄入与能量需求的关系。
五、动物的繁殖方式：1. 调查动物的性别比例和交配方式；2. 记录动物的交配行为和繁殖季节；3. 探究动物的受精方式和卵胎生或胎生特征；4. 观察动物的孵化或生育过程和育儿行为；5. 分析动物的繁殖成功率和繁殖对后代生存的影响。
总结：综上所述，通过对动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式进行观察和分析，我们对该组动物的生活习性和繁殖生态有了更加深入的了解。
这些信息对于保护和管理特定动物群体以及生态环境的保护具有重要的参考价值。
实验动物学实验报告(共篇)
实验动物学实验报告(共9篇)实验动物学实验报告实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤1、抓取和固定1.1抓取：左手抓小鼠的尾根部1.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
1.3同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定：2.1抓取和固定小鼠2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
2.3同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
3.1.2固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
3.1.3用大鼠重复同样操作3.2 注射给药3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，3.2.1.2右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位3.2.1.3用大鼠重复同样操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
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实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤1、抓取和固定1.1抓取：左手抓小鼠的尾根部1.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
1.3同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定：2.1抓取和固定小鼠2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
2.3同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
3.1.2固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
3.1.3用大鼠重复同样操作3.2 注射给药3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，3.2.1.2右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位3.2.1.3用大鼠重复同样操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿 45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
3.2.2.3用大鼠重复同样操作3.2.3尾静脉注射3.2.3.1先将动物固定在暴露尾部的固定器内，3.2.3.2用 75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处刺入。
3.2.3.4注入药液，无阻力，表示针头已进入静脉，注射后把尾部向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。
3.2.3.4用大鼠重复同样操作4取血4.1内眦取血：4.1.1左手固定小鼠，食指和拇指轻轻压迫颈部两侧，使眶后动静脉充血。
4.1.2右手持毛细采血管，以 45 度从内眼刺入，并向下旋转，感觉刺入血管后，再向外边退边吸，使血液顺承血管自由流入小管中，4.1.3当得到0.5ml血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血4.1.4用大鼠重复同样操作五、实验讨论1、小鼠抓取的感受：小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
大鼠抓取方法基本同小鼠，抓大鼠时若操作者不熟练，或者大鼠特别凶猛，操作者最好戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。
如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射时，可采用与小鼠相同的手法2、小鼠尾静脉注射感受：2.1尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。
2.2如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动注射先远后尽，不要一开始就从尾根部，失败了无法选取注射部位；再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
2.3尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。
3.灌胃3.1针头插入食道过程中，若动物挣扎厉害，应退出后灌胃针，待动物安静后重新插入。
切不可强行插入，以免损伤食道或误入气管导致动物死亡。
3.2当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压说明灌胃针未插入气管，此时可将药液灌入。
篇二：动物实验报告动物实验（小鼠）的一般操作技术实习日期：2007—11—13 一目的和要求：通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。
二实习内容：1 实验动物的抓取2 实验动物性别的鉴定3 实验动物编号的标记方法4实验动物被毛的去除5 实验动物的给药途径和方法6 实验动物的麻醉7实验动物的采血8 实验动物的处死方法9 解剖三实验的方法1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。
2 小鼠性别的鉴定：抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。
距离远的为雄性，距离近的为雌性。
成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。
3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。
用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。
用两种颜色可以染到99。
4 小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。
5 给药途径和方法：给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。
用一支特制的灌胃针进行灌胃，小鼠一般给1.5ml以下。
用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入。
6 小鼠的麻醉：麻药有挥发性的和非挥发性两种。
给药途径有吸入性麻醉，注射给药。
小鼠一般用腹部麻醉的方法。
用水合氯醛300ml／kg，根据小鼠的体重给药0.25ml。
抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。
注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。
7 小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼眶静脉采血法和心脏采血法。
将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。
用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。
8 小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。
9 解剖：从腹部开始，查看腹部脏器，以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。
然后再看胸部，看到肺脏心脏胸腺等器官，并在直视的情况下进行了心脏的采血。
然后再看颈部的解剖。
最后解剖头部。
四讨论和结论：通过此次实验，我们学到了实验动物的一般操作技术，如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。
为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。
试验报告（三）一、试验目的：1。
掌握豚鼠、兔、狗的一般操作方法，包括豚鼠的抓取和固定、编号、性别鉴定、给药、麻醉、采血、处死的方法。
2．兔子的抓取和固定、被毛的去除、性别的鉴定、给药、采血和处死的方法。
3．犬的抓取和固定、采血的方法。
二、试验对象：豚鼠，兔，犬。
三、试验步骤：（一）：豚鼠：1．抓取和固定：先用手掌抓住背部，将手张开，用拇指和食指握住颈部，再拿起来。
2．编号：同大鼠。
3．性别鉴定：雄性生殖孔呈圆形，雌性生殖孔呈椭圆形。
4．给药、麻醉、采血（无尾静脉采血）、处死同大鼠。
（二）：兔：1．抓取和固定：当兔子安静下来时，用右手抓住颈部的被毛与皮肤，提起兔，然后用左手托住其臀部，兔身的重量大部分落在手上。
2．被毛的去除：多采用剪毛法。
剪毛部位事先用纱布蘸生理盐水予以湿润，用弯头手术剪紧贴其皮肤依次将所需部位的被毛剪去。
3．性别的鉴定：将生殖器附近的皮肤拔开，雄性可见一圆形孔，里面露出阴茎；雌性此处为一条朝向尾巴的长缝，呈椭圆形间隙，下端有阴道开口处。
4．给药：(1) 经口灌胃法：灌胃时用一木制的张口器（纺锤状，正中开小孔）横放于上下鄂之间，用绳固定。
这时用左手抓住其嘴，右手将一细导尿管由张口器中央小孔插入，进入食管和胃。
经导尿管缓慢注入5ml生理盐水。
（2）耳缘静脉注射法：剪去耳缘部被毛，酒精擦拭并轻弹欲注射部位，促进静脉充盈。
然后以左手拇指和食指压住耳根部，右手持注射器，顺血管方向刺入静脉，进针1cm，有血液回流后注入生理盐水2ml。
5．采血：（1）经耳缘静脉采血：进针方法同耳缘静脉注射法。
（2）耳动脉切割采血：剪去耳动脉表面被毛，酒精消毒皮肤。
于耳动脉尖端处划破动脉并采血。
（3）心脏采血：剪去心前区被毛，选取左侧心脏搏动最明显的肋间靠近胸骨缘为穿刺点（由剑肋角由下往上左侧第三肋间处）。
消毒皮肤，左手固定，右手持连有七号针头的注射器与穿刺点垂直进针。
顺利回抽到血液后即可采血。
6．处死：空气栓塞法：同心脏采血法进针到心脏后注入20ml空气。
（三）：犬：1．抓取与固定：毕格犬抓取容易。
固定也相对容易。
捆绑犬时先绑扎犬嘴。
绑扎方法：用绷带从下颌绕到上颌打一结。
然后绕向下颌再打一结，最后将蹦带牵引到头后，在颈顶上打第三个结。
在这个结上在打一个活结。
2．采血：（1）桡侧静脉采血法：抓取和固定好后剪去注射部位的被毛。
用胶皮管绑住其前肢，使静脉充盈。
试验者左手托住其前肢，右手持连有7号针头的注射器刺入内侧面皮下的桡侧静脉。
进针1cm后回抽见血，即可采血。
（2）小隐静脉采血法：抓取和固定好后剪去注射部位的被毛。
试验者左手托住其后肢，右手持连有7号针头的注射器刺入皮下的小隐静脉。
进针1cm后回抽见血，即可采血。
四、试验总结：兔的心脏采血相对难掌握进针点。
篇三：动物实验及报告编写要求附模板动物实验报告要求第一部分：动物实验概述应提供—个动物试验的主要内容提要，该提要应包括动物试验题目、研究小组成员、试验动物和研究产品的名称、试验用器械或药物的适应症、试验时间、试验目的、试验方法、试验研究动物、诊断及进入研究的主要标准、试验的产品信息、剂量、给药方式及批号、治疗持续时间、参考的治疗、剂量、给药方式及批号、评价标准（有效性、安全性）、统计方法、实验结论（效能结论、安全性结论、结论）及报告日期。
该提要应包括表明结果的数字资料，而不仅仅是文字和p值。
第二部分：实验内容（一）动物实验一般资料（动物类别选择实验用动物的入选标准和数量、试验用产品等）：（二）动物实验试验方法；（三）所采用的统计方法及评价方法；（四）动物实验评价标准；（五）动物实验试验结果；（六）动物实验试验中发现的副作用及其处理情况；（七）动物实验试验效果分析；（八）动物实验试验验结论；第三部分：实验（一）实验名称：要能够明确表达试验内容；（二）实验目的：要直截了当的说明为什么要进行这个试验，解决什么问题，具有什么意义；（三）试验器材：所有仪器、材料应介绍齐全；所用材料、试剂、诱导物对动物有无危害影响说明。
（四）实验动物的选取（动物种类，性别，体重，年龄，品系，级别，健康状况，动物来源及其合格证号）；（五）分析可能影响到动物试验结果准确性的因素以保证试验结果的准确性、可靠性和重复性（环境因素；理化因素；营养因素；居住因素；同种动物间因素；异种动物间因素）；（六）动物实验设计与分组（是否符合对照性、一致性、重复性三原则；该试验选取了什么设计方法，比如单组比较设计、配对比较设计等等；动物随机分组方法应具体描述，如分为两组或者三组或者每个动物一组时具体的操作方法，切忌不可简单的“随机”二字就带过）。