融合蛋白表达实验报告

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基因构建与表达实验报告

实验一目的基因扩增与纯化回收

一、聚合酶链式反应

实验目的:通过PCR反应将目的片段扩增出来,获得足量的目的片段。

实验原理:DNA双螺旋在90-95℃解链形成单链;50-55℃引物与单链结合;70-72℃TaqDNA 聚合酶从结合在模板上的引物出发,以dNTP为原料,按碱基配对方式,从5’—3’方向合成新的DNA链。经变性、退火和延伸若干个循环后,DNA扩增2的n次方倍。

实验仪器和材料:PCR仪PCR管移液器tip枪头

实验试剂:

双蒸水(ddH2O)

10×PCR缓冲液(含Mg2+)

4种10×dNTP 混合

Taq酶(Easy Taq)

DNA模板

两种引物(上游和下游)

实验步骤:

试剂ddH2O Easy Taq

Buffer dNTP Easy

Taq酶

甘油上游

引物

下游

引物

DNA

模板

100ul大

体系

6510100.210222

注:一般情况下先依次加入ddH2O、10×Buffer、10×dNTP、Easy Taq酶、甘油配体系分装到PCR管中(100ul/管),再加入对应的上下游引物和模板

2、放入PCR仪,按照实验设计的温度进行PCR,反应参数如下:

(1) 94℃预变性4min;

(2) 94℃变性1min;

(3) 55℃退火1.5min;

(4) 72 ℃延伸2min;

(5) 重复(2)-(4)30个循环;

(6)72 ℃终延伸10min;

二、琼脂糖凝胶电泳检测

实验目的:通过琼脂糖凝胶电泳检测DNA分子量的大小,检测目的基因片段是否扩增出来。实验原理:DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应,DNA在碱性溶液中带有负电荷,在电场作用下朝正极移动。在琼脂糖凝胶中电泳时,由于琼脂糖凝胶具有一定孔径,长度不同的DNA分子由于所受凝胶的阻遏作用大小不一,迁移的速度不同,从而可以按照分子量大小得到有效分离。溴化乙锭(EB)可插入到DNA分子的相邻碱基之间,在紫外光的照射下出现荧光,从而指示DNA含量和位置。

实验仪器:电泳仪、紫外检测仪、水平电泳槽、移液枪、一次性手套

实验试剂:TAE 、EB溶液、凝胶加样缓冲液、琼脂糖

实验步骤:

1、1%琼脂糖凝胶的制备(以制备5块胶为例):

(1)称取琼脂糖1.6g,加入160ml 1 x TAE缓冲液,在微波炉上加热溶解煮沸熔化,取出摇匀至无沉淀。

(2)取有机玻璃内槽,放置于水平位置,用移液枪吸取少量胶将有机玻璃内槽两端密封。冷却到60℃左右(手感温度不烫手即可)加入7ulEB溶液,摇匀后倒入有机玻璃内槽,等距插入5个样品梳子。

(3)冷凝后将梳子拨出,电泳胶放入电泳槽中,加入TAE电泳缓冲液没过胶面。

2、加样

用移液枪取缓冲液,依次点3ul缓冲液在点样板上,再取PCR样品溶液10ul左右与缓冲液混匀后,加入样品孔中,并记录好点样顺序。(大体系PCR产物需要回收,点样时更换枪头避免交叉污染)

3、电泳及结果观察

接通电泳槽与电泳仪的电源,170V恒压电泳20min,电泳至溴酚蓝接近胶底部边缘即可;电泳完毕,取出凝胶,放在紫外灯下观察DNA条带的位置,根据DNA条带与溴酚蓝的相对位置估算DNA分子量大小,记录结果。

三、DNA片段回收:

1、摇匀GS树脂,用移液枪取500ul树脂分装于1.5mlEP管中,将PCR大体系产物加入到GS树脂中,用移液枪吹打混匀,静置10min,让片段结合到GS树脂上

2、将混合液转入纯化柱中,13000rpm瞬时离心,弃收集管中液体

3、加600ul80%异丙醇洗脱两次,13000rpm瞬时离心,弃收集管中液体,13000rpm空甩20min ;取出回收柱放入干净的1.5mlEP管中,放入30-40摄氏度烘箱烘干10min左右,使异丙醇完全挥发。

4、取出加入50ul ddH2O浸润树脂干粉,静置10min让ddH2O充分浸润树脂干粉,13000rpm 离心2-3min,得到的PCR产物用于双酶切。

实验结果:

实验二DNA双酶切及酶切产物纯化

实验目的:

通过DNA限制性内切酶对DNA双链进行双酶切,使DNA片段露出相应的粘性末端。

实验原理:

1、核酸限制性内切酶是在原核生物中发现的一类专一识别双链DNA中特定碱基序列的核酸水解酶,他们的功能类似动物的免疫系统,用于抗击外来DNA的侵袭,具有自我保护机制。一种限制性内切酶只能识别一种特定的核苷酸序列,并在特定的位点上以内切方式水解核酸链中的磷酸二酯键,切割DNA分子。在酶切反应中,DNA的纯度、缓冲液中的离子强度、Mg2+等因素均可影响酶切反应,一般可通过增加酶的用量,延长反应时间等措施以达到完全酶切。

2、Ⅱ型限制性核酸内切酶是基因工程中剪切DNA分子的常用工具酶,其优点是:只具有限制性活性,无甲基化修饰活性;对DNA的切割要求严格的序列作为靶位点,切割精确;此类酶作用时只需要Mg2+参与,无需ATP。

3、DNA双酶切可有效防止载体自连形成空载体,双酶切应选择公用的Buffer

实验仪器和材料:PCR仪、PCR管、移液枪、tip枪头、限制性内切酶

实验步骤:取5ul通用酶切buffer Tango,加入1ul限制性内切酶1和1ul限制性内切酶2,将PCR回收产物全部(大约43ul)加入混匀,体系配好后盖上PCR管并做好编号,放入PCR仪中,设定37℃酶切过夜。用含有GS结合液的树脂纯化酶切产物,操作方法同PCR 产物回收方法。

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