动物组织切片制作技术
动物病理玻片制作方法
动物病理玻片制作方法一、引言动物病理学是研究动物疾病病因、发病机制和病理变化的学科。
在动物病理学研究中,制作病理玻片是非常重要的步骤之一。
本文将介绍动物病理玻片的制作方法。
二、材料准备制作动物病理玻片所需的材料包括:1. 动物组织标本:包括取自动物器官的组织块或细胞涂片等。
2. 石蜡:用于包埋组织标本。
3. 切片机:用于切割组织标本的切片机器。
4. 玻片:用于固定切割好的组织标本。
5. 碱性溶液:用于去除石蜡。
6. 脱水溶液:用于去除水分。
7. 染色剂:用于染色组织切片。
8. 封片剂:用于封闭组织切片。
三、制作步骤1. 组织标本固定:将取自动物器官的组织块或细胞涂片等进行固定,常用的固定剂有福尔马林和缓冲形式的乙醛等。
2. 组织标本包埋:将固定好的组织标本放入石蜡中,经过一系列的处理,使其逐渐渗透并替代组织中的水分,最终形成石蜡包埋的组织标本。
3. 组织切片:将包埋好的组织标本放入切片机中,用刀片切割成薄片,通常为4-6微米。
4. 切片处理:将切好的组织标本片放入碱性溶液中,去除石蜡。
5. 脱水处理:将去除石蜡的组织标本片放入脱水溶液中,逐渐去除水分。
6. 染色:将脱水处理后的组织标本片放入染色剂中,使其染色,常用的染色剂有血液学常用的伊红染色和组织学常用的苏木精-伊红染色等。
7. 清洗:将染色好的组织标本片放入清水中洗涤,去除多余的染色剂。
8. 封片:将清洗干净的组织标本片放入封片剂中,再放入加热的平台上,使其干燥并形成封闭的玻片。
四、注意事项1. 在制作病理玻片的过程中,要保持操作环境的清洁和无尘。
2. 切片机的刀片要保持锋利,以确保切割出的组织标本片薄而均匀。
3. 染色剂的选择要根据研究目的来确定,不同的染色剂可以突出不同组织结构和病理变化。
4. 制作玻片时,要注意标本的编号和记录,以免混淆和丢失。
5. 制作好的病理玻片要妥善保存,避免受潮和损坏。
五、结论动物病理玻片的制作是动物病理学研究中不可或缺的一环。
动物病理解剖学实验教程
动物病理解剖学实验教程动物病理解剖学实验教程是动物医学专业中一门重要的实践课程,旨在通过实验操作,加深学生对动物病理学的理解,提高其病理诊断能力。
以下是一些常见的动物病理解剖学实验教程:1. 实验一:动物病理切片的制作与观察实验目的:通过制作动物病理切片,观察病变部位的组织学变化,学习病理学的基本概念和诊断方法。
实验材料:动物病理组织块、显微镜、切片刀、染色剂等。
实验步骤:(1)将病理组织块放入包埋盒中,用石蜡或树脂等材料进行包埋。
(2)将包埋好的组织块进行切片,制作成病理切片。
(3)将切片放在显微镜下观察,记录病变部位的组织学变化。
(4)对病变部位进行病理诊断,并与正常组织进行对比分析。
2. 实验二:动物尸体剖检与病理诊断实验目的:通过动物尸体剖检,观察动物内脏器官的病理变化,学习病理诊断的方法和技巧。
实验材料:动物尸体、手术刀、手套、器官固定液等。
实验步骤:(1)进行动物尸体剖检前的准备工作,如穿戴手套等。
(2)按照规定的剖检程序,对动物内脏器官进行观察和检查。
(3)记录内脏器官的病理变化,并进行病理诊断。
(4)对病变器官进行组织取样,制作成病理切片,进一步观察病变。
3. 实验三:肿瘤的病理诊断与鉴别实验目的:通过观察动物肿瘤的病理切片,学习肿瘤的分类、分级和鉴别诊断方法。
实验材料:动物肿瘤病理切片、显微镜、染色剂等。
实验步骤:(1)将肿瘤病理切片放在显微镜下观察,记录肿瘤的组织学特征。
(2)根据肿瘤的组织学特征,对肿瘤进行分类和分级。
(3)学习不同类型肿瘤的鉴别诊断方法,对比正常组织与肿瘤组织的差异。
4. 实验四:呼吸系统病理诊断实验目的:通过观察动物呼吸系统的病理变化,学习呼吸系统疾病的诊断方法和技巧。
实验材料:动物呼吸系统病理切片、显微镜、染色剂等。
实验步骤:(1)将呼吸系统病理切片放在显微镜下观察,记录病变部位的组织学变化。
(2)学习呼吸系统疾病的诊断标准和方法,如肺炎、支气管炎等。
兽医病理学诊断技术
兽医病理学诊断技术
兽医病理学诊断技术是兽医学中非常重要的一环,它涉及到对动物疾病病因、发病机制、病理变化和疾病发展过程的研究。
以下是一些常见的兽医病理学诊断技术:
1. 尸体剖检技术:这是兽医病理学中最基本的诊断技术之一,通过对动物尸体的剖解,观察其内部器官的形态、颜色、质地以及病理变化,以确定疾病的类型和严重程度。
2. 组织切片制作技术:组织切片是将病变组织或器官进行固定、包埋、切片和染色的过程,以便在显微镜下观察其结构和病理变化。
3. 显微镜检查技术:显微镜检查是通过显微镜观察组织切片或其他样本的方法,可以观察到细胞的形态、结构和病理变化,是诊断疾病的重要手段。
4. 生化检测技术:生化检测是对动物体内的生化物质进行检测,以了解其生理和病理状态。
例如检测血液中的血糖、血脂、肝功、肾功等指标,以评估动物的健康状况。
5. 免疫学诊断技术:免疫学诊断是通过检测动物体内免疫系统的反应来诊断疾病的方法。
例如检测抗体、抗原等,以确定疾病的类型和严重程度。
6. 分子生物学诊断技术:分子生物学诊断是通过检测动物体内的基因和蛋白质的表达情况,以了解疾病的病因和发病机制。
例如检测基
因突变、表达谱分析等。
7. 细胞培养技术:细胞培养是将动物组织或细胞在体外进行培养的技术,可以用于研究疾病的发病机制和药物筛选等。
8. 动物实验技术:动物实验是通过实验动物来模拟人类或动物疾病的发病过程,以研究疾病的病因、发病机制和治疗方法。
例如复制某种传染病的动物模型、药物疗效观察等。
这些诊断技术在兽医病理学中发挥着重要的作用,可以帮助兽医正确地诊断和治疗动物疾病,提高动物的健康水平和生产效益。
重要 动物组织切片制作技术
脂无作用,渗透力较弱,很少单独使用,固定后
收缩明显,用含苦味酸的固定液固定组织一般不
宜超过24小时。
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(5)重铬酸钾:其穿透速度快,对组织收缩小并
稍有膨胀,重铬酸钾常备水溶液为3-5%。其混合 固定液,如Zenker液、Helly液及Regaud液等被 广泛用于组织学,凡经重铬酸钾、铬酸、铬酸盐 固定的组织,必须以流水冲洗后方能转入脱水剂。
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(四)、固定液
1、固定液种类:一类是单纯固定液,即只有一种
试剂;另一类是混合固定液,由两种或两种以上试
剂组成。 作为较好的固定液,应有下列特性,首先,有 强渗透力,能迅速的渗入组织内部;其次,不使组 织过渡收缩或膨胀,并能使组织内欲观察的成分得 以凝固为不溶性物质;最后,能使组织达到一定的 硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的
一般厚度约 5mm 的实质性器官,总的浸蜡时间约 2-
3h,均在恒温箱内进行。较理想的的浸蜡温度是石
蜡刚溶化的温度,或在蜡杯底部尚残留一小部分未 熔完蜡时的温度,浸蜡完成后,即做成包有组织的 蜡块。包埋蜡块的器材有专用的包埋框,也有自己 制作的包埋盒,只要是具有一定形状的容器,我们
都可以把它用作包埋盒。包埋的具体过程详述。
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4、使组织块在脱水、包埋、切片、染色等过程 中不易损坏。 5、使不同组织成分对染料有不同的亲和力,经 染色处理后易于辨认。 6、防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态 结构。
7、使组织块硬化,便于制作薄片。
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(三)、注意事项及影响固定的因素
1、组织块不易过大,一般以厚度5mm,长宽不超过
15×15mm。 2、固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜。 3、必须选择渗透力强,又不使组织过渡收缩或膨 胀的试剂作为固定液。 4、有的固定剂是由氧化剂与还原剂混合而成,如 甲醛(还原剂)与重铬酸钾(氧化剂)混合成的 Helly液等。
组织切片制作方法
组织切片制作方法引言组织切片是一种将组织样本分割成薄片以供显微镜观察的常用技术。
它广泛应用于医学研究、生物学研究以及组织学等领域。
本篇文档将介绍组织切片制作的基本方法和步骤。
步骤1. 材料准备在开始制作组织切片之前,需要准备好以下材料:•组织样本:通常是从动物(如小鼠、大鼠)或人体中取得。
样本应该是新鲜的,并以生理盐水或缓冲液保存。
•定向切片机:用于将组织样本定向并切割成薄片。
可以是手动操作的或自动化的设备。
•切片刀片:高质量的切片刀片,通常是钻石刀片或碳钢刀片。
•组织固定液:通常是甲醛或琼脂糖。
•组织染色剂:用于染色和增强组织的可见性。
常用的有血红蛋白染色剂、溴甲蓝和伊红。
2. 组织固定将组织样本浸泡在组织固定液中,处理时间视样本大小和种类而定。
通常情况下,固定时间在4-48小时左右。
固定的目的是使组织保持其原有的结构和形态,同时防止细胞的腐解和坏死。
3. 组织处理经过固定后,将组织样本进行脱水和澄清处理。
这个步骤的目的是去除组织中的水分,使组织样本透明并易于切割。
脱水通常使用逐渐浓度递增的酒精溶液,如70%、80%、95%和100%的酒精。
澄清则是使用透明剂,如苯胶和二甲苯,去除酒精并降低组织折射率。
4. 定向和切割定向和切割是制作组织切片的关键步骤。
首先,将经过处理的组织样本放置在定向切片机上,调整切片机使样本达到最佳切片位置。
然后,使用切片刀片进行切割。
切割时要注意手法和切割角度,以保证切割出的组织切片薄而均匀。
5. 切片染色制作好的组织切片需要进行染色,以增加组织的可见性和对比度。
常用的染色方法包括血红蛋白染色、溴甲蓝和伊红染色等。
染色时应该根据需要选择合适的染色剂和方法,并注意染色时间和温度的控制。
6. 切片保存制作好的组织切片应该进行适当的保存,以保证其质量和稳定性。
通常情况下,切片应该放置在保存瓶中,使用无水酒精或二甲苯进行封存。
同时,切片应该存放在干燥、阴凉和避光的地方,以防止切片变形和褪色。
动物组织石蜡切片制作
具体步骤
• 100%酒精:二甲苯(1:1)0.5-1小时。 二甲苯(Ⅰ)20—30分钟。 二甲苯(Ⅱ)10—20分钟。 浸蜡(Ⅰ)40分钟。 浸蜡(Ⅱ)40分钟。 组织包埋。 蜡块整修。切片。贴好的切片置于60℃恒 温箱内干燥2小时。
H.E染色
• 二甲苯Ⅰ脱蜡 10分钟。 二甲苯Ⅱ脱蜡 10分钟。 100%酒精Ⅰ2-5分钟。 100%酒精Ⅱ2-5分钟。 95%酒精1-2分钟。 90%酒精1-2分钟。 85%酒精1-2分钟。 自来水洗 片刻 蒸馏水 片刻 苏木素 10—15分钟 自来水洗 1—2分钟 1%盐酸酒精分化 0.5—1分钟 流水冲洗 蓝化10分钟—至数小时
动物组织石蜡切片制作
实验目的
• 制作实验动物的组织切片并染色,掌 握动物组织制片技术
实验用品
1.动物的组织。 2.器材和仪器:切片机、展片仪、毛笔、载 玻片、盖玻片、烤箱、显微镜。 3.试剂:60%乙醇、70%乙醇、80%乙醇、90% 乙醇、95%乙醇、无水乙醇、二甲苯、石蜡、 中性树胶。
石蜡切片的制作
H.E染色
• 蒸馏水冲洗 1-2分钟 70%酒精1-2分钟 85%酒精1-2分钟 90%酒精1-2分钟 伊红(醇溶)5-20秒 95%酒精(Ⅰ)1秒 95%酒精(Ⅱ)1秒 100%酒精(Ⅱ)1-210分钟 中性树胶封片 镜检
基本制作过程:
1.取材
2.固定 3.脱水、透明及浸蜡
4.包埋
5. 切片 6. 染片 7. 封片
石蜡切片的制作技术
• 组织取材1*1*0.5厘米,固定于福尔马林一周左右。 组织流水冲洗过夜。 70%酒精2-4小时。 85%酒精2-4小时。 95%酒精(Ⅰ)2-3小时。 95%酒精(Ⅱ)1-2小时。 100%酒精(Ⅰ)1-2小时。 100%酒精(Ⅱ)0.5-1小时。
动物组织的石蜡切片制作及HE染色
• 返蓝作用 苏木素在酸性环境下成红色,在碱性环境下成蓝色。因 此分化后,细胞核成红色,用弱碱性水,可是细胞核成蓝色,增强 对比。
• 细胞浆染色 伊红为酸性染料,带负电荷,与胞浆中的带正电荷的蛋 白结合,使胞浆成红色。
实验流程:
1.取材
2. 固定、脱水、透明
3. 浸蜡
4. 包埋
5. 切片
6. 展片
石蜡切片法广泛应用于医学、农学、动植物学等学科。是教学、 科研中的常用实验技术。
实验原理:
苏木素(Hematoxylin)和伊红(Eosin)联合染色,简称HE染色, 是病理学常规制片中最基本的染色方法,应用极其广泛。苏木精是从 洋苏木中提取出来的浅黄褐色的结晶,是一种碱性染色剂,它在被氧 化后生成苏木素,同媒染剂(常用的是三价的铝或盐铁)一起使用,能 够使细胞核染色。在H.E.染色的组织切片中,细胞核呈蓝色,细胞浆 呈红色,二者形成鲜明的对比,易于观察分析。
动物组织的石蜡切片制作 及H.E.染色
实验目的:
1. 掌握动物材料的石蜡切片制作方法。 2. 学习H.E.染色方法。
实验原理:
石蜡切片法,是以石蜡作为包埋剂的一种显微制片方法,是形 态学观察最基本、最经典的技术之一。
一般来说,凡是可以经受石蜡法中各试剂处理的材料都可以用石 蜡法制片。石蜡切片一般要经过取材、固定、脱水、透明、浸蜡、包 埋、切片、展片、粘片、复水、染色、封藏等过程。
鼠肝组织-脱蜡前 40×
鼠肝组织-脱蜡后 40×
鼠肝组织-苏木素染色 400×
鼠肝组织-伊红B染色 1000×
实验结果
学生实验结果
注意事项:
• 使用试剂时注意戴好口罩、手套,必要时使用通风橱。 • 包埋过程尽量连贯、快速。 • 操作切片机时,务必注意安全,防止刀片伤手。 • 展片过程中确保组织蜡片始终正面朝上。 • 粘附载玻片只在正面涂有粘片剂,样品要粘在正面。 • 吸水后观察样品应紧贴在玻片上,方可避免在后续的处理中样品丢
重要动物组织切片制作技术
注意组织的新鲜度和 保存方式,避免组织 腐败和自溶。
根据实验需求选择适 当的组织部位,如肝 脏、肾脏、心脏等。
动物组织的固定
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固定是制作切片的关键步骤,有助于保持组织结构的完整性。
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选择适当的固定剂,如甲醛、乙醇等,根据组织类型和实验要
求进行固定。
固定时间要适当,不宜过长或过短,以确保组织结构和细胞形
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态的清晰度。
动物组织的脱水
脱水是去除组织中多余水分的过程,为后续的包 埋做准备。
选择适当的脱水剂,如乙醇、丙酮等,逐步替换 组织中的水分。
注意脱水时间和程度,避免组织过度干燥和结构 破坏。
动物组织的包埋
包埋是将脱水后的组织包裹在包埋剂 中,以便于切片操作。
包埋过程中要保持组织结构的完整性 ,避免产生气泡和裂痕。
选择染色剂
根据观察目的选择适当的染色剂,如苏木精-伊红 染色、银染色等。
染色过程
按照染色剂的要求进行染色,控制染色时间和温 度等参数。
复染
在染色后进行复染,以提高染色效果和对比度。
切片的观察与记录
显微镜观察
使用显微镜观察切片,记 录组织结构和形态等信息 。
图像采集
使用图像采集设备将观察 到的切片图像保存下来。
切片制作技术还可以用于土壤污染监测。通过对土壤中的 动植物组织进行切片制作,可以观察到土壤污染对生物的 影响,为土壤污染治理提供支持。
切片制作技术在法医学中的应用
在法医学中,切片制作技术主要用于 对死因的鉴定和物证分析。通过对死 者的组织和器官进行切片制作,可以 了解死因和死亡方式,为刑事案件的 侦破提供依据。
标准化和规范化
为了提高切片制作技术的准确性和可靠性,标准化和规范化的操作流 程和技术标准正在不断完善和推广。
动物组织切片观察
动物组织切片观察为了进行动物组织切片观察,首先需要制备切片。
制备切片的方法有多种,其中一种常用的方法是石蜡包埋法。
首先,用解剖刀将待观察的组织切割成合适的大小,然后将组织用一系列浓度递增的酒精进行脱水处理。
接下来,组织被浸泡在熔化的石蜡中,使其浸渍均匀,然后固化石蜡使其成为坚硬的块状。
固化后的石蜡块用切片机切割成薄片,最后用载玻片将切片收集起来。
制备好的切片可以用不同的染色方法进行染色,以增强对组织的观察效果。
常用的染色方法有苏木精-伊红染色、嗜酸性和嗜碱性染色、免疫组织化学染色等。
经过染色后,切片中的细胞和组织结构将更加清晰可见。
通过对动物组织切片的观察,可以发现不同类型的组织具有不同的形态和结构。
例如,肌肉组织通常由纤维束组成,细胞排列有序,并且具有明显的纵横条纹。
神经组织由神经元和胶质细胞构成,神经元具有明显的细胞体、突触和轴突。
结缔组织由胶原纤维和胶原质基质组成,具有较高的胶原纤维含量。
此外,还可以观察到血管、腺体、骨骼、皮肤等各种不同的组织类型。
动物组织切片观察的结果可以为不同领域的研究提供重要的参考和依据。
例如,在医学领域中,对病理组织切片的观察可以帮助医生诊断疾病。
一些疾病的病理变化可以通过观察切片进行初步判断,如癌细胞的异型性、细胞密度的增加等。
在生理学和药理学研究中,切片观察可以帮助研究人员了解不同组织的功能和反应。
在动物学研究中,切片观察可以提供动物组织的细胞学和解剖学特征信息,为动物分类和进化研究提供参考。
总之,动物组织切片观察是一种有效的方法,可以揭示动物组织之间的结构和功能差异。
通过制备切片、染色和观察,可以获得详细的细胞和组织结构信息,为各个领域的研究提供有价值的数据。
生物解剖学实验中的组织切片技术
生物解剖学实验中的组织切片技术在生物解剖学实验中,组织切片技术是一项重要的技术手段。
通过组织切片,可以将生物体的组织结构进行细致观察和研究。
下面将介绍组织切片技术的步骤和注意事项。
一、材料准备在进行组织切片实验的时候,需要准备以下材料:1. 组织样本:可以是动物组织、植物组织或人体组织。
要确保样本新鲜且保存良好。
2. 切片刀:选择合适的切片刀能够提高切片的质量。
3. 碘酒:用于消毒和标记切片。
4. 显微镜:用于观察切片的显微结构。
5. 切片贴片:用于固定和保存组织切片。
二、切片步骤1. 样本固定:将组织样本放入含有适当浓度的缓冲液中进行固定。
固定能够保持组织结构的完整性,同时防止样本中的酶活性继续进行。
常用的固定液有福尔马林和氯乙酸。
2. 组织处理:在固定后的组织中,需要去除多余的水分,并使组织透明化。
可以使用甲醛、丙酮等试剂来进行处理。
3. 组织切片:将透明化后的组织放置在切片刀上,用切片刀沿着想要切片的方向进行切割。
要注意刀的角度和切割的速度,以保证切片的质量。
4. 切片贴片:将切好的组织切片用镊子取出,轻轻放在切片贴片上。
要避免切片的叠加和重叠,确保切片的平整和清晰。
5. 切片染色:切片染色是为了增强切片的对比度,使组织结构更加清晰可见。
可使用常见的组织染色剂,如伊红、伊红苏木、溴化乙锐等。
6. 保存和贮存:将染色好的切片放在切片贴片上,用封条封住,放置在保存盒中。
要放置在阴凉干燥的地方,避免阳光直射和湿气的侵蚀。
三、注意事项1. 操作前要熟悉实验步骤,并严格按照操作规程进行。
2. 对于有毒或易燃易爆的试剂,要注意安全操作,避免事故发生。
3. 在操作过程中要保持实验台面的清洁,避免污染样本。
4. 切片刀要保持锋利,切割时可以用适量的甘油润滑刀片。
5. 观察切片时,要调整显微镜的焦距和光线,以获得最佳的观察效果。
通过组织切片技术,可以观察和研究生物体的组织结构,进而了解其功能和生理特征。
这项技术在生物解剖学领域的应用广泛,并且在医学研究、病理诊断等领域也起到了重要的作用。
切片实验报告心得体会
一、实验背景切片实验是生物学实验中常见的一种技术,通过对生物样本进行切片,以便于观察和研究其内部结构和组织。
本次实验旨在通过切片技术,了解植物细胞的结构和功能,以及动物组织切片的制备过程。
二、实验目的1. 掌握植物细胞和动物组织切片的制备方法。
2. 观察植物细胞和动物组织的显微结构,了解其功能。
3. 培养实验操作技能和观察分析能力。
三、实验过程1. 植物细胞切片制备(1)选取新鲜的植物叶片,用剪刀剪成小块。
(2)将剪好的叶片放入装有酒精的试管中,浸泡30分钟。
(3)取出叶片,用刀片将叶片切成薄片。
(4)将切片放入装有甘油和醋酸的混合液中,浸泡10分钟。
(5)取出切片,用滤纸吸去多余液体,放入载玻片中。
(6)用显微镜观察植物细胞结构。
2. 动物组织切片制备(1)选取新鲜的小鼠肝脏,用剪刀剪成小块。
(2)将剪好的肝脏放入装有酒精的试管中,浸泡30分钟。
(3)取出肝脏,用刀片将肝脏切成薄片。
(4)将切片放入装有甘油和醋酸的混合液中,浸泡10分钟。
(5)取出切片,用滤纸吸去多余液体,放入载玻片中。
(6)用显微镜观察动物组织结构。
四、实验结果与分析1. 植物细胞切片观察结果通过显微镜观察,发现植物细胞具有细胞壁、细胞膜、细胞质、细胞核、液泡等结构。
细胞壁位于细胞的最外层,具有保护和支持细胞的作用;细胞膜是细胞内外物质交换的通道;细胞质是细胞内部的结构和功能区域;细胞核是细胞的控制中心,负责细胞的遗传信息传递;液泡是细胞内储存物质的地方。
2. 动物组织切片观察结果通过显微镜观察,发现动物组织具有细胞、血管、神经等结构。
细胞是组织的基本单位,具有多种功能;血管负责输送氧气和营养物质,以及带走代谢废物;神经负责传递信息,调节身体的各种生理活动。
五、心得体会1. 实验操作的重要性本次实验让我深刻认识到实验操作的重要性。
在实验过程中,要严格按照操作步骤进行,避免人为误差。
同时,要注重实验操作的规范性和安全性,确保实验顺利进行。
《动物组织制片技术》教学大纲
《动物组织制片技术》教学大纲课程名称:动物组织制片技术英文名称:Animal tissue slicing technology课程总学时:32学时课程总学分:2学分适用专业:动物医学一、课程性质与任务动物组织制片技术是动物医学及生物学领域中十分重要的实验技术,是动物医学专业必修课《动物组织学与胚胎学》的重要补充和深化,其主要内容包括组织学标本制作的基本理论、常规组织学制片技术、各组织器官的特殊染色技术、组织化学技术、胚胎标本制作技术、显微摄影技术等。
通过本课程的学习,以掌握观察和研究动物有机体细微结构的基本方法。
本课程共计32学时(理论16,实验16)。
二、教学目的与要求1.理论知识方面:掌握组织制片的基本理论,尤其牢固掌握石蜡切片的原理与步骤。
2.实验技术方面:掌握组织学常规HE染色、常用特殊染色和组织化学染色。
三.教学重点与难点教学重点:组织制片的基本原理,石蜡切片常规HE染色技术。
教学难点:特殊染色和组织化学染色技术。
四.教学方法与手段理论讲授与实验操作相结合,以实验操作为主。
五.教学内容与目标教学内容教学目标学时分配(32学时)(一)理论部分(16学时) 1.组织学技术概述 31.1 组织学技术的发展与应用了解 11.2 组织学制片方法概述掌握 11.3 实验室的主要设备及常用试剂理解 12.石蜡切片技术82.1 动物麻醉与取材掌握 12.2 固定液与组织固定掌握 12.3 组织冲洗掌握 12.4 脱水剂与组织脱水掌握 12.5 透明剂与组织透明掌握 12.6 组织渗蜡与包埋掌握 12.7 组织切片、贴片与烤片掌握 12.8 染料与组织片染色掌握 1 3.其他制片技术简介 43.1 冷冻切片技术了解0.53.2 火棉胶切片技术了解0.53.3 组织铺片技术掌握0.53.4 组织涂片技术掌握0.53.5 组织磨片技术掌握0.53.6 组织化学技术理解 1.5 4.显微摄影技术简介 14.1 全自动显微摄影及其装置了解0.54.2 摄影方法与显微照片放大倍数的计算方法了解0.5 (二)实验部分(16学时) 实验一、动物组织切片的制作 62实验二、肠系膜铺片镀银法染色或疏松结缔组织铺片地依红—HE染色实验三、胰岛三色显示法或骨骼肌切片铁苏木精染色 2实验四、肥大细胞甲苯胺蓝染色或T淋巴细胞ANAE染色法 2实验五、肝糖元PAS染色法或蛋白质汞溴酚蓝显示法 2实验六、冷冻切片实验与脂肪苏丹染色法 2 六.考核办法成绩评定比例(%)1、平时成绩50%2、期末考试50%七.教材与参考资料1.教材:组织学技术(自编. 2004)2.参考资料:杜卓民主编.1999.实用组织学技术(第2版).人民卫生出版社。
组织切片操作流程
组织切片操作流程切片法主要步骤 1、取材与固(1)取材:从动物体取下所需的器官材料。
取材的动物要健康,材料愈新鲜愈好,应在致死后即将取材,防止组织细胞自溶变性;取材的器械要锋利;所取材料力求小而薄(以不超过 0.5cm 为宜),不能挤压和损伤。
(2)固定:将所取的材料即将投入固定液中,目的是使组织蛋白迅速凝固,使细胞内的结构和成份再也不发生变化,保持组织细胞与活体相似的形态结构,固定后的组织块变硬,便于进一步处理。
常用的固定剂有甲醛、乙醇、苦味酸或者混合固定液。
实验室常用 Bouin 固定液,固定时间为 12~24 小时,其固定的组织块不需进行水洗,可直接进行脱水。
2、脱水与透明(1)脱水:固定后的组织块内含有的大量水分要彻底脱去,以便石蜡的浸入。
常用的脱水剂为乙醇,脱水过程必须循序渐进,从低浓度开始,逐步升高,使组织块中的水分逐渐被乙醇所取代。
具体操作为: Bouin 固定液固定的组织块可直接进入 70%的乙醇进行脱水,时间 12 小时摆布。
(若材料暂不制片,可保存于 70%乙醇中。
)然后将组织块挨次移入 85%乙醇(Ⅰ)、(Ⅱ)各 8-12 小时,→95%乙醇(Ⅰ)、(Ⅱ)各 2 小时,→100%乙醇(Ⅰ)、(Ⅱ)各 1 小时。
因无水乙醇对组织有脆化作用,故在无水乙醇中时间不能超过 2 小时。
(2)透明:由于乙醇与石蜡不能相溶,故浸蜡前要对脱水后的组织块进行透明。
常用透明剂有二甲苯、氯仿、苯、香柏油或者冬青油等,透明剂能同与乙醇和石蜡相溶,并能增强组织块的折光系数,故透明后的组织块呈半透明状。
使用二甲苯作透明剂的透明过程为:将脱水后的组织块放入无水乙醇与二甲苯混合液(1:1)中 30 分钟,再移入二甲苯中 15-20 分钟。
3、浸蜡与包埋(1)浸蜡:将透明后的组织块置于刚过熔点的熔化石蜡中浸渍,使石蜡逐渐渗入并彻底置换出透明剂。
过程为:先将透明的组织块移入二甲苯与石蜡混合液(1:1)中,在60℃温箱中放置 30 分钟,再移入熔化的石蜡(Ⅰ)、(Ⅱ)、(Ⅲ)中,在温箱中每级各 1 小时。
动物组织标本制作技术
动物组织标本制作技术动物组织标本制作技术是一项重要且常用的生物学实验技术,它可以有效地保存动物组织的结构和形态,为科学研究和教学提供了重要的参考材料。
本文将介绍动物组织标本制作的基本步骤以及相关的注意事项。
一、动物组织标本制作的基本步骤1. 动物标本的收集:首先需要选择合适的动物标本进行采集,可以选择已死亡的动物标本,也可以通过活体组织切片的方式进行制作。
在采集过程中需要注意保持标本的完整性,避免损坏或变形。
2. 组织固定:采集到的动物标本需要进行组织固定,以保持组织的结构和形态。
常用的组织固定剂有福尔马林、乙醛等,根据实验需要选择适当的固定剂进行处理。
3. 组织切片:固定后的动物组织需要进行切片,以便观察组织的细胞结构和形态。
切片的厚度一般为5-10微米,可以使用专用的切片刀或者切片机进行切割。
4. 切片染色:切片完成后,需要进行染色处理,以使组织结构更加清晰可见。
常用的染色方法有血液染色、组织染色等,可以选择适当的染色方法根据实验的需要。
5. 覆盖玻片:染色完成后,需要将切片放置在玻片上,并在上方加上透明的覆盖玻片。
覆盖玻片的目的是保护切片,防止切片脱落或受到污染。
6. 标本保存:制作完成的动物组织标本需要进行保存,以便长期保存和使用。
标本可以保存在特制的盛放容器中,也可以进行冷冻保存或者石蜡包埋保存。
二、动物组织标本制作的注意事项1. 样本选择:选择合适的动物标本对于制作高质量的组织标本非常重要。
标本的选择应尽量保持完整无损、结构清晰、形态规整,以有利于后期的观察和分析。
2. 组织固定剂的选择:不同的固定剂会对组织产生不同的影响,因此需要根据实验的需要选择合适的固定剂。
固定剂浓度和固定时间也需要进行合理的控制,避免过度固定导致组织结构的改变。
3. 切片技术的掌握:切片技术对于制作高质量的组织标本至关重要。
切片时需要注意切割均匀、厚度一致,避免切片过厚或过薄,以免影响观察结果。
4. 染色方法的选择:染色方法可以增强组织标本的对比度和清晰度,但染色过程中也需要注意方法的选择和操作的规范性,避免染色不均匀或染色剂超出时间导致结果不准确。
动物组织的包埋切片染色及显微镜观察
动物组织的包埋切片染色及显微镜观察具体来说,动物组织的包埋、切片、染色及显微镜观察包括以下几个步骤:1.组织准备:选择合适的动物组织样本,如皮肤、肌肉、肝脏等。
将组织样本取出并快速进行处理,这样可以避免组织的腐坏或细胞结构的破坏。
2.固定组织:将组织样本放入一种适当的固定剂中进行固定。
常用的固定剂包括福尔马林、布洛佐液等。
固定剂的选择取决于研究需求和组织类型。
3.组织包埋:将固定后的组织进行包埋,这样可以使组织成为一个坚硬的块,便于后续的切片。
常用的包埋剂包括蜡和冰。
4.切片:将包埋好的组织块用切片机切割成薄片,厚度通常为几微米至几十微米。
切片的厚度取决于研究需要和组织类型,较薄的切片适用于一些细胞结构的观察,较厚的切片适用于组织结构的观察。
5.染色:为了增强组织的对比度和细胞结构的可见度,需要对切片进行染色。
常用的染色剂有伊红、尼氏染色、嗜酸性染色等。
不同的染色剂能够染出不同部分的细胞结构,使其更容易被观察和分析。
6.显微镜观察:将染色好的切片放置在显微镜的载玻片上,用显微镜进行观察。
显微镜可以放大切片,并通过透射光或荧光来帮助观察者对细胞结构进行观察和分析。
通过以上步骤,研究人员可以观察到动物组织的细胞结构和组织结构,并进一步研究细胞或组织的功能。
这些观察结果可以提供有关动物生物学、疾病病理学和药物研发等方面的重要信息。
总结起来,动物组织的包埋、切片、染色及显微镜观察是一项重要的实验技术,可以帮助研究人员观察和研究动物的细胞和组织结构,并进一步了解其功能和相关的生物学过程。
它在生物学研究中起着重要的作用,为科学家们提供了对动物组织结构和功能进行深入研究的手段和工具。
河北中学生物切片制作方法
河北中学生物切片制作方法河北中学的学生们在研究生物学上经常会遇到切片制作式的任务。
这种任务要求学生用不同的工具和方法来制作准确的生物切片。
准确的切片是一种非常重要的实验工具,也是基础研究的重要依据。
为了使学生更好地掌握和掌握技能,以便在学习过程中应用,本文将详细介绍河北中学生物切片制作的方法。
第一步:准备物料和工具首先,学生需要准备生物标本、解剖刀、研磨机和研磨碗、切片机、湿度控制器、横向支架、液氮罐、乙醚和乙醇等物料和工具。
第二步:解剖动物标本河北中学生物学课程中,学生需要制作动物标本切片。
首先,学生需要用消毒后的解剖刀,将动物分割成具有一定形状和大小的组织块,以便后续的切片工作。
第三步:用研磨机研磨组织块学生需要将组织块放入清洗干净的研磨碗中,然后在温度控制范围内用研磨机研磨生物组织,使其成为一个细小、均匀的薄片。
第四步:制作切片制作切片有两种方法,一种是使用切片机,另一种是手工制作。
1. 使用切片机如果学生使用切片机,需要先将研磨好的薄片放入切片机的夹具内,然后按照操作说明进行操作,最后即可完成切片。
2.工制作学生也可以直接用手工制作切片。
首先,学生需要在平整的表面上放置一块均匀的研磨片,然后用解剖刀精细地削下每一块切片,使其厚度均匀。
第五步:切片固定将切片放入乙醚和乙醇混合溶液中,让切片固定,以防止切片晃动。
第六步:切片染色需要将切片放入液氮罐中进行染色,以使切片看得更清晰,以便查看细胞的结构和形状。
第七步:储存切片将染色后的切片放入干净的盒子中,然后放入恒温恒湿的地方进行储存,以便后期查看和研究。
以上是河北中学生物切片制作方法的详细介绍,希望通过本文给学生们一个清晰的指导,能够帮助学生更好地掌握生物切片制作技能,学以致用。
重要动物组织切片制作技术
4、使组织块在脱水、包埋、切片、染色等过程中不易损坏。 5、使不同组织成分对染料有不同的亲和力,经染色处理后易于辨认。 6、防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态结构。 7、使组织块硬化,便于制作薄片。
(三)、注意事项及影响固定的因素 1、组织块不易过大,一般以厚度5mm,长宽不超过15×15mm。 2、固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜。 3、必须选择渗透力强,又不使组织过渡收缩或膨胀的试剂作为固定液。 4、有的固定剂是由氧化剂与还原剂混合而成,如甲醛(还原剂)与重铬酸钾(氧化剂)混合成的
(三)、其他包埋法 除上述常用包埋法以外,还有其他一些包埋方法,如塑料包埋法、碳蜡包埋法、明胶包埋法、松 脂醇包埋法、甲基丙烯酸甲酯包埋法、双重包埋法及二甲氧基丙烷石蜡包埋法等。
(3)醋酸:亦名乙酸,能与酒精、水、氯仿等多种试剂混合,故为许多混合固定液成分之一, 其穿透速度很快,固定小组织仅1h即可,对组织和细胞有膨胀作用,且不能凝固细胞质中的 蛋白质,一般与引起收缩的固定液一起使用,以达到平衡目的。
(4)苦味酸:苦味酸能沉淀蛋白质,对脂肪、类脂无作用,渗透力较弱,很少单独使用,固定 后收缩明显,用含苦味酸的固定液固定组织一般不宜超过24小时。
动物进行固定。这时宜采用注射固定法,将固定液注入血管,经血管分支到达整个组织和全身, 从而得到充分的固定。 3、蒸汽固定法:比较细小而薄的标本,可用锇酸或甲醛蒸汽固定。主要用于血液或细胞涂片以及某 些薄膜组织的固定。
(二)、固定的目的 1、迅速阻止组织、细胞的死后变化,防止自溶与腐败,使之尽量保持生前的状态与结构。 2、使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变为不溶性物质,以保持其原有状态。 3、使组织内各种物质成分产生不同的折光率,以便染色后易于鉴别和观察。
动物组织石蜡切片制作
大白鼠皮下组织铺片,台盘蓝活体注射,40X
致密结缔组织
大白鼠皮下组织铺片,硫堇染色,40X
兔 肌腱,H.E,40X
人 皮肤,H.E,10X
2
血液
红细胞
鸡血涂片,Wrights, 10X
蛙血涂片, Wrights,40X
软骨和骨
透明软骨
各种白细胞
1
2
1 嗜中性
2 嗜酸性
3 嗜碱性
4 中淋巴
3
5 小淋巴
实验二 动物的组织
上皮组织
单层扁平上皮
蛙肠系膜整装片,AgNO3法,40X
单层扁平上皮
血管内皮,H.E,40X
单层立方上皮
矢状断面(即 侧面)观察 时,大致呈 正方形,但 从表面观察 时呈六边形。 细胞核大致 呈圆球形, 位于细胞的 中央。
分布于甲状 腺的滤泡及 肾脏集合管 等。
兔 肾脏集合管,H.E,20X
平滑肌的收缩以波浪式进行。 多数平滑肌纤维表面没有神经
末梢,而是通过缝隙连接来传 递信息。
分离的平滑肌纤维 猫肠壁平滑肌,H.E,40X
神经组织
多极神经元
轴突和轴丘 树突 尼氏体 神经原纤维
多极运动神经元 牛脊髓涂片,美蓝,40X
有髓神经纤维
有髓鞘神经纤维横切面
有髓鞘神经纤维纵切面 兔坐骨神经 H.E 10X
方案二 石蜡切片的制作
1—6微米。制作大批的或是连续的切片。长期保存。 一、切片前的准备: 1、恒温水浴锅首先预热至35℃—40℃。 2、蜡块整修,暴露组织并修平,减少刀的磨。 3.载玻片应事先洗涤干净,无油腻和不透明现象。涂粘片
剂。 4、将锋利的刀片,调整角度和位置,以20°-30°为佳。 5、备用小型毛笔、小型无钩镊子、铅笔。
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9、切除不需要的部分
特别是组织周围的脂肪等,应尽可能清除掉,否则给固定、 特别是组织周围的脂肪等,应尽可能清除掉,否则给固定、 脱水、浸蜡、切片等带来一些不必要的问题。 脱水、浸蜡、切片等带来一些不必要的问题。
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三、 组织固定法
)、固定的方法 (一)、固定的方法
1、小块组织固定法:从人体和动物取下的小块组织,立即 小块组织固定法:从人体和动物取下的小块组织, 置入液态固定剂中进行固定,这是应用最广泛最经常的方法。 置入液态固定剂中进行固定,这是应用最广泛最经常的方法。 2、注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液 注射、灌注固定法: 极难渗入内部或需要对整个脏器或整个动物进行固定。这时 极难渗入内部或需要对整个脏器或整个动物进行固定。 宜采用注射固定法,将固定液注入血管, 宜采用注射固定法,将固定液注入血管,经血管分支到达整 个组织和全身,从而得到充分的固定。 个组织和全身,从而得到充分的固定。 3、蒸汽固定法:比较细小而薄的标本,可用锇酸或甲醛蒸汽 蒸汽固定法:比较细小而薄的标本, 固定。主要用于血液或细胞涂片以及某些薄膜组织的固定。 固定。主要用于血液或细胞涂片以及某些薄膜组织的固定。
动物组织标本制作技术
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第一章: 第一章:取材及固定
一、 动物致死法
1、麻醉法
可将浸有乙醚或氯仿的棉球连同小动物一起密封于钟罩或有 盖玻璃瓶内进行麻醉;也可用4%戊巴比妥作静脉注射,剂量 盖玻璃瓶内进行麻醉;也可用4%戊巴比妥作静脉注射, 4%戊巴比妥作静脉注射 按动物体重1ml/kg;或用20%氨基甲酸乙脂作腹腔注射, 按动物体重1ml/kg;或用20%氨基甲酸乙脂作腹腔注射,剂 1ml/kg 20%氨基甲酸乙脂作腹腔注射 量一般按动物体重5ml/kg。 量一般按动物体重5ml/kg。 5ml/kg
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醋酸:亦名乙酸,能与酒精、 (3)醋酸:亦名乙酸,能与酒精、水、氯仿等多 种试剂混合,故为许多混合固定液成分之一, 种试剂混合,故为许多混合固定液成分之一,其 穿透速度很快,固定小组织仅1h即可, 1h即可 穿透速度很快,固定小组织仅1h即可,对组织和 细胞有膨胀作用,且不能凝固细胞质中的蛋白质, 细胞有膨胀作用,且不能凝固细胞质中的蛋白质, 一般与引起收缩的固定液一起使用, 一般与引起收缩的固定液一起使用,以达到平衡 目的。 目的。 苦味酸:苦味酸能沉淀蛋白质,对脂肪、 (4)苦味酸:苦味酸能沉淀蛋白质,对脂肪、类 脂无作用,渗透力较弱,很少单独使用, 脂无作用,渗透力较弱,很少单独使用,固定后 收缩明显, 收缩明显,用含苦味酸的固定液固定组织一般不 宜超过24小时。 宜超过24小时。 24小时
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使组织块在脱水、包埋、切片、 4、使组织块在脱水、包埋、切片、染色等过程 中不易损坏。 中不易损坏。 5、使不同组织成分对染料有不同的亲和力,经 使不同组织成分对染料有不同的亲和力, 染色处理后易于辨认。 染色处理后易于辨认。 6、防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态 结构。 结构。 7、使组织块硬化,便于制作薄片。 使组织块硬化,便于制作薄片。
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)、注意事项及影响固定的因素 (三)、注意事项及影响固定的因素 组织块不易过大,一般以厚度5mm 5mm, 1、组织块不易过大,一般以厚度5mm,长宽不超过 15×15mm。 15×15mm。 固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜。 20倍为宜 2、固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜。 3、必须选择渗透力强,又不使组织过渡收缩或膨 必须选择渗透力强, 胀的试剂作为固定液。 胀的试剂作为固定液。 有的固定剂是由氧化剂与还原剂混合而成, 4、有的固定剂是由氧化剂与还原剂混合而成,如 甲醛(还原剂)与重铬酸钾(氧化剂) 甲醛(还原剂)与重铬酸钾(氧化剂)混合成的 Helly液等。 Helly液等。 液等
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重铬酸钾:其穿透速度快, (5)重铬酸钾:其穿透速度快,对组织收缩小并 稍有膨胀,重铬酸钾常备水溶液为3 5%。 稍有膨胀,重铬酸钾常备水溶液为3-5%。其混合 固定液, Zenker液 Helly液及Regaud液等被 液及Regaud 固定液,如Zenker液、Helly液及Regaud液等被 广泛用于组织学,凡经重铬酸钾、铬酸、 广泛用于组织学,凡经重铬酸钾、铬酸、铬酸盐 固定的组织,必须以流水冲洗后方能转入脱水剂。 固定的组织,必须以流水冲洗后方能转入脱水剂。 锇酸: (6)锇酸:锇酸一般只用于某些特殊染色或电镜 切片染色或固定, 切片染色或固定,配制时要用洗涤干净的玻塞棕 色瓶,最好用双蒸水配制,锇酸穿透力弱, 色瓶,最好用双蒸水配制,锇酸穿透力弱,且易 使组织硬脆,因此它固定的组织必须小而薄, 使组织硬脆,因此它固定的组织必须小而薄,体 积最好在3 2mm以内 以内。 积最好在3×3×2mm以内。
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7、选好组织块的切面
熟悉某些器官组织成分安排,然后决定其切面的走向; 熟悉某些器官组织成分安排,然后决定其切面的走向;如一 长管状器官以横切面较好。 长管状器官以横切面较好。
8、保持材料的清洁
组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等, 组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用生 理盐水冲洗,然后再入固定液,但要注意防止组织损伤。 理盐水冲洗,然后再入固定液,但要注意防止组织损伤。
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2、单纯固定液 酒精:既是配制混合固定液的基本成分, (1)酒精:既是配制混合固定液的基本成分, 又可作为单纯固定液使用。用于固定时以80% 80%又可作为单纯固定液使用。用于固定时以80%95%浓度为好。 95%浓度为好。缺点是经酒精固定的组织容易变 浓度为好 对组织收缩较大。 硬,对组织收缩较大。 甲醛水溶液: (2)甲醛水溶液:常用的甲醛水溶液即市售的 福尔马林,常用浓度为10% 指以10ml 10%, 10ml的商品甲 福尔马林,常用浓度为10%,指以10ml的商品甲 醛(37%-40%甲醛水溶液)加入90ml水配成的, 37%-40%甲醛水溶液)加入90ml水配成的, 甲醛水溶液 90ml水配成的 此液实际上只有4%的甲醛。 此液实际上只有4%的甲醛。 4%的甲醛
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固定时间的长短视固定剂的不同要求而定, 5、固定时间的长短视固定剂的不同要求而定, 也与气温、组织块的大小有关。 也与气温、组织块的大小有关。温度高时则时 间缩短,组织块过大则应延长固定时间。 间缩短,组织块过大则应延长固定时间。 软组织或较大组织可先经2 6、软组织或较大组织可先经2-3小时固定后再 修整成小块重新投入新配制的固定液内继续固 定。 7、特殊要求的组织,常需要特殊的固定液,所 特殊要求的组织,常需要特殊的固定液, 取组织之前应做好准备。 以,取组织之前应做好准备。如各种神经组织 因显示内容不同,需不同的固定液与固定方法。 因显示内容不同,需不同的固定液与固定方法。
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铬酸:铬酸能沉淀蛋白质, (7)铬酸:铬酸能沉淀蛋白质,适用于核蛋白的 固定,并能增强核的染色能力,穿透速度慢, 固定,并能增强核的染色能力,穿透速度慢,一 般组织块的固定,需经12-24h,硬化程度中等, 般组织块的固定,需经12-24h,硬化程度中等, 12 收缩显著,除用作固定液外, 收缩显著,除用作固定液外,万分之一的铬酸水 溶液,可制作分离标本。 溶液,可制作分离标本。 (8)丙酮:丙酮能使蛋白质沉淀,渗透力强,但 丙酮:丙酮能使蛋白质沉淀,渗透力强, 对核固定欠佳,且使组织剧烈收缩。 对核固定欠佳,且使组织剧烈收缩。广泛用于组 织化学中酶的固定,其作用基本与酒精相同。 织化学中酶的固定,其作用基本与酒精相同。 三氯醋酸:作用与醋酸相似,很少单独使用, (9)三氯醋酸:作用与醋酸相似,很少单独使用, 在混合固定液中对组织起膨胀作用。 在混合固定液中对组织起膨胀作用。
4、断头法
青蛙、小鼠等小动物,可用剪刀剪去其头部, 青蛙、小鼠等小动物,可用剪刀剪去其头部,较大动物如 兔子等,可用斧头迅速砍头致死。 兔子等,可用斧头迅速砍头致死。
5、股动脉放血法
动物经吸入乙醚或氯仿稍麻醉后,立即切开股动脉放血。 动物经吸入乙醚或氯仿稍麻醉后,立即切开股动脉放血。 注意:上述各法,应根据制片需要选用, 注意:上述各法,应根据制片需要选用,如空气栓塞法不宜 用作血管注射标本的制作; 用作血管注射标本的制作;乙醚麻醉对丘脑下神经部分泌物 染色标本不利;股动脉放血法有利于肠系膜铺片的制作。 染色标本不利;股动脉放血法有利于肠系膜铺片的制作。
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)、固定液 (四)、固定液 固定液种类:一类是单纯固定液, 1、固定液种类:一类是单纯固定液,即只有一种 试剂;另一类是混合固定液, 试剂;另一类是混合固定液,由两种或两种以上试 剂组成。 剂组成。 作为较好的固定液,应有下列特性,首先, 作为较好的固定液,应有下列特性,首先,有 强渗透力,能迅速的渗入组织内部;其次, 强渗透力,能迅速的渗入组织内部;其次,不使组 织过渡收缩或膨胀, 织过渡收缩或膨胀,并能使组织内欲观察的成分得 以凝固为不溶性物质;最后, 以凝固为不溶性物质;最后,能使组织达到一定的 硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的 亲和力。 亲和力。
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3、常用混合固定液 (1)Bouin液:饱和苦味酸水溶液:75ml;甲醛 Bouin液 饱和苦味酸水溶液:75ml; 水溶液(40%):25ml;冰醋酸:5ml。 ):25ml 水溶液(40%):25ml;冰醋酸:5ml。三者在 配方中的实际比例为1 15, 配方中的实际比例为1:5:15,为实验室常用 固定剂,其渗透力强,对组织固定均匀且收缩 固定剂,其渗透力强, 较小,染色效果好。冰醋酸固定染色质, 较小,染色效果好。冰醋酸固定染色质,苦味 酸使组织适当硬化, 酸使组织适当硬化,甲醛水溶液调节两种试剂 对组织的膨胀作用。其固定时间以12-24h为宜。 对组织的膨胀作用。其固定时间以12-24h为宜。 12 为宜
2、空气栓塞法
如家兔可用50ml注射器将空气由耳静脉推入, 如家兔可用50ml注射器将空气由耳静脉推入,使动物很快 50ml注射器将空气由耳静脉推入 死亡。 死亡。
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3、击头法