失血性休克及其抢救
失血性休克及抢救.ppt
静脉回流↓ 凝 血 活 性
↑
失 血 性 休 克 发 病 机 制 示 意 图
重要生命脏器和细胞代谢障碍及结构损坏
• 3.临床表现
皮肤苍白 或花纹 神态淡漠 或昏迷 脉
四肢 湿冷
• 4.失血性休克的抢救
血液回输
三.实验材料
• 家兔，20%乌拉坦溶液，0.3% 肝素溶液， 生理盐水，微循环灌流液，哺乳动物手术 器材一套，BL-420生物机能实验系统，微 循环灌流装置， BI-2000图象分析系统， 输血输液装置，动、静脉套管，1m1、10ml 注射器各1只，光学显微镜，压力及张力换 能器。
二.实验原理及相关知识
1.失血性休克(hemorrhagic shock) 由于大量失血失液所引起.见于外伤、溃 疡出血、食管静脉曲张出血及产后大出血等。
2.影响因素
失血量 影响因素 失血速度 一般15分钟内失血
<全血量10%——可代偿
>全血量20%——休克 >全血量50%——可能死亡
失血失液 血容量急剧减少 血压下降 交感-肾上腺髓质系统兴奋 儿茶酚胺大量释放 微血管痉挛 微循环灌流量减少 组织缺氧,代谢性酸中毒 微循环淤血 DIC 血管容量↑ 大量血浆渗出 血压↓
五.注意事项
• 1．麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛 可引起神经源性休克。 • 2．尽量减少因手术而引起的出血。
• 3．拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。
• 4．动脉导管和注射器内应事先加入一定量 的肝素，静脉导管一经插入，即立刻输液 以防止血凝。
• 5．微循环观察最好保持同一视野，便于实 验过程中的比较。 • 6．由于步骤较多，术前人员分工和操作程 序要安排好，避免术中忙乱。
• 微循环的变化:
机能学实验 失血性休克及抢救
失血性休克及抢救学号xxxxxxx姓名xxxxxx 日期2010-5-28一．实验目的：1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机制3.分析失血性休克的抢救措施二．实验准备：1．动物：家兔一只，2.05kg，雄性2．药品：20%乌拉坦、肝素溶液（125U/ml）、3:2:1溶液（7.5%高渗盐水：低分子右旋糖酐：5%葡萄糖）、4% NaHCO3溶液、肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、异丙肾上腺素、多巴胺等3．器械：手术器械（剪毛剪，组织剪，止血钳，眼科剪，玻璃分针，止血夹等），注射器（50ml，20ml，10ml，1ml），针头（9号，16号），头皮针，动脉导管，气管插管，兔手术台，听诊器，压力换能器，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生理信号采集处理系统。
三．实验步骤：1．家兔称后固定于手术台上，左耳耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦共12ml麻醉，待家兔麻醉后仰卧位固定于手术台上。
2．颈部剪毛，分离右侧颈总动脉，动脉插管，并连接三通管记录血压。
3．分离气管，做气管插管，插管另一端连接呼吸流量换能器。
4．将针形电极分别插入四肢踝部皮下，导联线按右前肢（绿）、左后肢（红）、右后肢（黑）的顺序连接，以记录心电图波形。
5．腹部左侧距中线2cm左右剪毛，做纵行切口，打开腹腔，牵出部分回肠，肉眼观察失血前后小肠微循环的变化。
6．连接RM6240信号采集处理系统，监测血压、呼吸、心电等生理指标。
7．从颈总动脉放血，至血压降至40mmHg左右停止放血，共放血20ml。
维持大约15min 后，做血气分析，并观察以上生理指标的变化。
8．失血性休克模型完成，实施抢救（以下均从耳缘静脉注射）：（1）依次输全血5ml，3：2：1溶液10ml；（2）注射4% NaHCO3溶液5ml；（3）注射肾上腺素0.3ml；（4）注射酚妥拉明0.2ml；（5）注射异丙肾上腺素0.1ml；（6）继续扩容，依次输全血10ml，3：2：1溶液5ml；（7）注射去甲肾上腺素0.1ml，10min后再次注射0.2ml；（8）由于家兔血压一直维持在20mmHg左右，故继续采取扩容，注射肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等措施，但均未使血压恢复到正常水平，宣布抢救失败，实验结束。
失血性休克患者的术中抢救和护理配合
失血性休克患者的术中抢救和护理配合失血性休克是指由于大量出血导致循环血容量不足，心脏无法正常泵血，导致组织缺氧和器官功能衰竭的严重疾病。
术中抢救和护理配合是非常重要的，可以帮助患者尽快度过这个危险期，恢复健康。
下面将详细介绍术中抢救和护理配合的相关内容。
首先，在抢救和护理开始之前，需要明确患者的具体病情，包括出血原因、失血量、血流动力学指标等。
通过监测患者的体征和实验室检查，可以帮助判断患者的失血程度和严重程度。
抢救的第一步是迅速停止出血，尽快建立血容量。
在手术中，外科医生需要做到尽可能迅速止血，采取合适的措施，如打结、压迫、使用止血剂等。
同时，麻醉医生和护士还需要对患者的血压、心率、呼吸等进行监测，及时调整药物和液体的使用。
术中护理配合主要包括以下几个方面：1.给予输血、输液和输氧：在失血性休克患者的抢救中，输血是重要的手段之一、根据患者的具体情况和实验室检查结果，可以选择不同种类的血液制品进行输注，如红细胞悬液、血浆和凝血因子等。
同时，还需要给予适量的晶体液和胶体液来维持血容量，保证心脏能够正常泵血。
此外，氧气的供应也非常重要，可以通过气管插管和机械通气来辅助呼吸，提供足够的氧气。
2.保持体温和水电解质平衡：在手术过程中，患者易受寒冷刺激和全身分布情况改变的影响，导致体温下降。
因此，需要及时采取措施，如给予热水袋、暖气灯等，保持患者的体温在正常范围内。
此外，失血性休克患者由于大量失血，容易导致水电解质紊乱。
在输液的同时，还需要监测患者的电解质水平，并及时进行补充。
3.观察和记录患者的病情变化：在抢救过程中，护士需要密切观察患者的病情变化，包括血压、心率、呼吸、尿量、皮肤颜色等。
一旦患者出现血压下降、心率增快、呼吸急促、尿量减少等不良症状，需要及时向医生报告并采取相应的措施。
此外，护士还需要记录患者的输血量、输液量、药物使用、监测结果等，为后续的诊疗和护理提供依据。
4.心理支持和疼痛控制：失血性休克患者由于疾病的严重性和治疗的刺激，往往伴有焦虑、恐惧等不良情绪。
手术室失血性休克抢救与配合
演讲人
目录
01. 失血性休克的定义和分类 02. 失血性休克的抢救措施 03. 手术室失血性休克的配合 04. 失血性休克的预防
1
失血性休克的定 义和分类
失血性休克的定义
失血性休克是指由于 大量失血导致有效循
1 环血量减少，组织器 官灌注不足，细胞代 谢紊乱，进而引起全 身性功能障碍的综合 征。
流
填塞止血：使用纱 布、棉球等物品对 出血部位进行填塞，
阻止血液流出
手术止血：进行手 术，直接对出血部
位进行止血处理
补充血容量
01
快速输血：根 据失血量和患 者情况，快速 输注血液制品
02
液体复苏：使 用晶体液或胶 体液进行液体 复苏，补充血 容量
03
控制出血：找 到出血点，进 行止血处理， 减少失血量
01
密切观察生命体征， 及时发现异常情况
03
监测尿量，及时补充 水分
05
鼓励患者早期活动， 促进血液循环
02
保持输液通畅，防止 静脉导管堵塞
04
预防感染，保持伤口 清洁干燥
06
加强营养支持，提高 患者抵抗力
谢谢
失血性休克的分类
1
2
3
4
按照失血量分类： 轻度、中度、重度
失血性休克
按照失血速度分类： 按照病理生理分类： 按照病因分类：创
急性、慢性失血性 低血容量性、分布性、 伤性、非创伤性失
休克
心源性失血性休克
血性休克
失血性休克的危害
01
组织器官缺血缺氧：导致器 官功能障碍，甚至衰竭
02
循环功能障碍：血压下降， 心率加快，心输出量减少
失血性休克抢救流程
失血性休克抢救流程失血性休克是一种常见的急危重症，常见于外伤、手术、产科等情况下。
及时有效的抢救是挽救患者生命的关键。
下面将介绍失血性休克的抢救流程，以便医护人员在实际工作中能够正确、迅速地进行抢救。
1. 评估患者状况。
首先，医护人员需要迅速评估患者的状况，包括意识状态、呼吸、脉搏、血压等生命体征。
同时，要了解患者的伤情和失血量，以便制定后续的抢救方案。
2. 确认失血量。
根据患者的伤情和失血症状，医护人员需要尽快确认失血量的大小，包括明显出血的部位和数量，以及隐匿性失血的可能性。
3. 停止出血。
在确认了失血量后，医护人员需要尽快停止患者的出血。
对于明显出血的部位，可以采取直接压迫或使用止血带等方法；对于内部出血，需要尽快进行手术或介入治疗。
4. 补充血容量。
失血性休克患者往往伴随着血容量不足，因此需要迅速补充血容量以维持循环功能。
可以通过输液、输血等方式进行补充，但需要注意监测患者的心脏功能和肾功能，避免发生液体负荷过多的情况。
5. 维持循环功能。
在补充血容量的同时，医护人员需要密切监测患者的循环功能，包括心率、血压、尿量等指标。
必要时可以使用血管活性药物来维持患者的循环稳定。
6. 保护重要器官。
失血性休克容易导致重要器官缺血缺氧，因此需要采取措施保护重要器官的功能。
包括保持呼吸道通畅、维持氧供、监测心脏功能等。
7. 密切观察。
在抢救过程中，医护人员需要密切观察患者的状况变化，及时调整抢救措施。
同时，要与患者和家属进行沟通，给予必要的心理支持。
以上就是失血性休克的抢救流程，希望医护人员能够熟练掌握并灵活运用，及时有效地挽救患者的生命。
在实际工作中，要根据患者的具体情况制定个性化的抢救方案，以达到最佳的抢救效果。
失血性休克及抢救PPT课件
休克病程分期
根据微循环变化特点，一般可将休克病 程分为三期：
（一）休克代偿期（compensatory stage）
（二）休克失代偿期（decompensatory stage ）
（三）休克难治期（refractory stage）
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正常Байду номын сангаас循环的变化
微循环(microcirculation)是指微动脉和微静脉之间微血管的血液循环，是血液 和组织进行物质代谢交换的基本结构和功能单位，正常微循环由微动脉、后微动 脉、毛细血管前括约肌、微静脉、真毛细血管、直捷通路及动静脉短路构成；主 要受神经及体液因素的调节。
失血性休克 (Hemorrhagic shock) 创伤性休克 (Traumatic shock) 烧伤性休克 (Burn shock) 感染性休克 (Infective shock) 心源性休克 (Cardiogenic shock) 过敏性休克 (Anaphylactic shock) 神经源性休克 (Neurogenic shock)
3、组织灌流情况 少灌少流、灌少于流
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4、代偿表现 主要分三个方面： （1）自身输血 （2）自身输液 （3）血液重分布 5、代偿意义 ⑴有利于维持动脉血压 ⑵有利于心脑的血液供应
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（二）休克失代偿期（decompensatory stage） 即休克第二期，又叫休克期或微循环淤滞期或淤血性缺氧期
此期由于组织持续缺血缺氧使组胺、激肽等扩血管物 质生成增多，导致毛细血管通透性增高，血浆外渗。大量 血浆外渗致使血液浓缩，红细胞压积上升，红细胞、血小 板聚集，血液粘度增加。 （4）组织间隙亲水性↑
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（一）休克代偿期（compensatory stage）
《失血性休克及抢救》PPT课件
加强宫缩
应用宫缩剂加强子宫收缩，减 少出血。
手术治疗
对于难以控制的产科出血，需 及时采取手术治疗，如子宫切
除术等。
术后失血性休克
监测生命体征
密切观察患者生命体征变化， 及时发现休克征象。
补充血容量
根据失血量及生命体征变化， 及时补充晶体液、胶体液及血 液制品。
查找出血原因
对于术后出血患者，应积极查 找出血原因并采取相应止血措 施。
监测电解质水平，及时补充钾、钠、 氯等离子，维持电解质平衡。
应用血管活性药物与激素
应用血管活性药物
根据病情需要，给予多巴胺、去甲肾上腺素等血管活性药物，维 持血压稳定。
应用激素治疗
在严重休克或合并感染等情况下，可给予地塞米松等激素类药物 ，减轻炎症反应和水肿。
监测药物反应
密切观察患者对药物的反应和副作用，及时调整用药方案。
发病原因
主要包括外伤、手术、产后出血 、消化道溃疡、肝脾破裂等。
病理生理机制
01
02
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失血后机体反应
失血后，机体通过神经和 体液调节，启动一系列代 偿机制以维持重要器官的 血液灌注。
微循环障碍
随着失血量增加，微循环 灌注不足，组织缺氧加重 ，乳酸堆积，导致代谢性 酸中毒。
器官功能障碍
持续失血可导致多器官功 能障碍综合征（MODS） ，表现为心、肺、肝、肾 等器官功能受损。
手术治疗
对于严重术后失血性休克患者 ，需再次手术止血。
05
失血性休克患者护理要点
观察病情变化，及时发现并处理并发症
密切观察患者生命体征
定期测量血压、心率、呼吸频率和体温，及 时发现异常变化。
观察意识和精神状态
失血性休克抢救流程
失血性休克抢救流程一、失血性休克抢救流程失血性休克是因大量出血而导致的，而且休克较急性。
因此，在出现失血性休克后，要及时出现抢救方法，及早治疗，避免严重后果产生。
步骤1：心跳、呼吸停止者立即行心肺复苏，采取边救治边检查或先救治后诊断的方式进行抢救。
对于血压、脉搏及意识的情况进行判断。
步骤2：抽血做交叉配血试验，写好领血证，准备输血并按医嘱准备平衡液，碳酸氢钠等。
同时，配合病因治疗的护理。
步骤3：保持呼吸道通畅，并采用鼻导管吸氧，必要时床边紧急气管插管或气管切开，给予呼吸机辅助通气。
同时，监测血压、脉搏、呼吸，注意体温变化，同时应观察神志、皮肤色泽和肢体温度，记录尿量，监测中心静脉压。
步骤4：最后，做好抢救后物品的清理、消毒、补充、检查及家属安抚工作，急救设备还原成备用状态。
做好健康教育及心理护理。
二、动脉出血救治时间是多少人一旦失血过多，很容易就失去生命，动脉出血，出血量非常多，要立刻急救。
动脉血由心脏挤压出来，压力很高，动脉一破，血就像泉水一样往外涌。
如果是大动脉出血，血液甚至还会喷出来，颜色鲜红。
如果不处理，不到5分钟人就会休克。
四肢较大的动脉出血时，用止血带止血。
最好用较粗而有弹性的橡皮管进行止血。
如没有橡皮管也可用宽布带以应急需。
用止血带时，首先在创口以上的部位用毛巾或绷带缠绕在皮肤上，然后将橡皮管拉长，紧紧缠绕在缠有毛巾或绷带的肢体上，然后打结。
止血带不应缠得太松或过紧，以血液不再流出为度。
上肢受伤时缚在上臂，下肢受伤时缠在大腿，才会达到止血目的。
缚止血带的时间，原则上不超过一小时，如需较长时间缚止血带，则应每隔半小时松解止血带半分钟左右。
在松解止血带的同时，应压住伤口，以免大量出血。
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失血性休克及其抢救
一、实验目的复制家兔失血性休克的模型；观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发病机制。
了解失血性休克的抢救。
二、实验材料：
体重2.5〜3.0 kg兔；血压换能器，呼吸换能器，生物信号采集系统， 1 ml 、10ml、50 ml 注射器；氨基甲酸乙酯，生理盐水，微循环灌流液，肝素。
三、实验方法：
1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统 2 通道。
启动
RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz灵敏度100ml/s ;采样频率800Hz。
2.麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入
200g/L 氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5〜10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml 注射器。
3. 颈部手术
i.备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的
被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）
ii.切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
实验后创口不需缝合的，也可用止血钳提起两侧皮
肤，距胸骨上1cm处的正中线剪开皮肤约1cm 的切口，用止血钳紧贴皮下向头部钝性分离皮下筋膜，再用钝头剪刀剪开5-7cm。
用止血钳提起皮肤并分离结缔组织，将皮肤向外侧牵拉。
iii.颈总动脉、颈外静脉及神经分离：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。
依次将左侧颈总动脉、右侧颈外静脉分离出来，剔尽周围结缔组织。
每根血管分离出3~ 4cm长，并在各血管下穿一条不同颜色的线备用。
iv.颈动脉插管：游离出长3〜4cm的颈总动脉，尽可能向远心端游离，在动脉下穿 2 根线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动脉夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。
用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在远心端结扎线的近心侧0.3cm 处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的动脉导管由切口向心脏方向插入动脉内。
用已穿好的线扎紧插入导管的血管，于远心端结扎线打一死结，以拉住导管防止其滑脱。
使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适当固定。
其中，左颈动脉插管计血压。
v.颈外静脉插管：颈外静脉浅，位于颈部皮下，其属支外腭静脉和内腭静脉，颈部正中切口后，用手指从皮肤外将一侧部组织顶起，在胸锁突乳肌外缘，即可见很粗而明显的颈外静脉。
仔细分离长约3〜4cm的颈外静脉，穿两线备用。
先将静脉远心端结扎，靠近结扎点的向心端作一剪口，将导管插入剪口，然后一边拉结扎线头使颈外静脉与颈矢状面、冠状面各呈45 度角，一边轻柔地向心端缓慢插入，遇有阻抗即退回改变角度重插，切不可硬插（易插破静脉进入胸腔）。
导管插管成功后，用细线扎紧导管与静脉的连接处，防止导管掉出。
4.腹股沟插管
股动脉和股静脉插管与颈动脉插管类似，所不同的是位置的区别。
先在大腿根部近腹股沟处摸到股动脉搏动点，局部剪毛，以搏动最明显处为中点沿血管走行的方向作长约4cm的切口，股动脉、股静脉、股神经行走于同一鞘内，位置比较表浅，向下分离后很快就能见到。
其余方法与颈动脉插管相同。
5.复制失血性休克模型
i.少量放血：打开股动脉上的动脉夹，按7ml/kg 体重的量放血，观察
10min 的心率、血压、呼吸变化，待其血压曲线恢复正常后继续进行下一项实验。
ii.大量放血：少量放血10min 后，按14〜18ml/kg 体重的量开始放血（包括少量放血），放血时间约为3〜5min,使平均动脉压
降至40mmH左右。
如血压回升，可再放血，在30〜40min的观察期内维持平均动脉压在40mmHg勺水平。
观察的心率、血
压、呼吸变化，记录失血总量。
iii. 失血性休克的抢救：将注射器内的血液移入输液瓶内，从
右侧颈外静脉回输原血。
输血后，观察家兔心率、血压、呼吸是否恢复正常。
然后再输入生理盐水（60〜100滴/min ）进行抢救，直至上述生理指标恢复正常。
6.实验观察
i.记录放血前动物的心率、血压、呼吸及皮肤黏膜颜色。
ii.记录少量放血时的10min内上述各项指标。
iii.记录大量放血时的30〜40min内上述各项指标
iv.记录输血、输液后上述各项指标。
四、实验结果:
五、实验讨论：试验的重要点1 .麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛可致神经源性休克。
麻醉过程或麻醉后若出现呼吸暂停，应及时作人工呼吸。
试验讨论本次试验由于我们在技能课上过，基本步骤比较了解，我们认为本次试验的难度是股动脉插管，我们第一次由我负责插管，失败告终，第二次有其他组员插管，股动脉断裂，我们决定用止血钳夹住一端而后再进行插管，最后成功，这次试验使我们第一次在断裂的动脉进行插管，让我们进步很大
参考文献:
1.陆源、林国华、杨午鸣主编《机能学实验教程第二版》2010.6
2008.1。