6核酸的分离与纯化剖析PPT课件

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医学课件-核酸的分离与纯化

医学课件-核酸的分离与纯化
技术发展推动
课程背景
化学组成
核酸是由核苷酸构成的,包括脱氧核糖核酸(DNA)和核糖核酸(RNA)两种。
结构特征
DNA的双螺旋结构以及RNA的单链结构是核酸的典型结构特征。
核酸简介
获得高纯度核酸
提高核酸检测灵敏度
研究和开发需求
分离与纯化的目的
02
核酸的分离
将生物样品处理成匀浆或细胞裂解液,以便释放其中的核酸。
要点一
要点二
自动化和智能化
未来的核酸分离和纯化技术将更加注重自动化和智能化,能够实现自动化操作、减少人为误差和增加批量化生产的能力。
应用领域的拓展
随着生命科学和医学的不断发展和进步,核酸分离和纯化技术的应用领域也将不断拓展,将会有更多的应用场景和用途被发现和应用。
要点三
谢谢您的观看
THANKS
xx年xx月xx日
医学课件-核酸的分离与纯化
CATALOGUE
目录
引言核酸的分离核酸的纯化核酸的鉴定实验方案设计总结与展望
01
引言
核酸是生物体内的重要遗传物质,对于研究基因组、基因表达、基因功能等生物学核心问题具有重要意义。
生物学研究需求
随着生物学和生物技术学的不断发展,不断有新的核酸分离与纯化方法和技术出现,推动了医学和生物医学领域的发展。
步骤
将细胞裂解后,加入酚氯仿混合液,充分混匀,离心,取上清液,再加入氯仿充分混匀,离心,取上清液,最后加入异戊醇沉淀核酸。
实验方案设计一:酚氯仿抽提法
原理
乙醇沉淀法是一种利用乙醇沉淀核酸的方法。
步骤
将细胞裂解后,加入乙醇,充分混匀,离心,弃去上清液,再加入乙醇洗涤沉淀,离心,弃去上清液,最后干燥沉淀得到核酸。

《核酸分离检测》PPT课件

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∆∆CT -0.65 -1.39 -1.36 -2.45 -3.44 -3.25
0
小鼠肺发育不同阶段P311 mRNA的表达
P311 表达相对倍数
12
10
86Leabharlann 420E14.5 E16.5 E18.5 P5
P11
P14
P30
Bio-Rad iQ5TM荧光定量PCR仪
ABI Prism 7500型荧光定量PCR仪
具用0.1%二乙基焦碳酸盐〔diethyl pyrocarbonate, DEPC〕处理. 加强的蛋白变性剂如硫氰酸胍、异硫氰酸胍等. 加核糖核酸酶阻抑蛋白〔RNasin〕等RNase的抑 制剂.
质粒DNA的提取——碱裂解法
• 溶液I:50 mM葡萄糖, 25 ,10 mM EDTA,pH 8.0— — Tris-Cl→ pH;葡萄糖→大肠杆菌悬浮;EDTA →金属离子螯合剂.
常用于测序〕
核酸样品的保存
DNA: DNA样品溶于pH8.0的TE,4 ℃或-20 ℃保存; 长期保存样品中可加入1滴氯仿. RNA: RNA样品溶于0.3 mol/L NaAc <pH5.2>或双蒸灭菌
水中,-70 ℃保存; 长期保存可以沉淀形式贮于乙醇中; 在RNA溶液中,加1滴0.2 mol/L VRC<氧钒核糖核苷
➢ 化学作用:一定p H 和变性条件下,细胞破裂,蛋白变性 沉淀,核酸→水相.变性条件:加热、表面活性剂<SDS、 Triton X-100 、Tween 20 、NP-40 等> 、强离子剂<异 硫氰酸胍、盐酸胍等> .p H 环境:强碱<NaOH> 或缓 冲液 < TE、STE 等>. 金属离子螯合剂< EDTA 等> 螯 合Mg2+ 、Ca2+,抑制核酸酶活性.

核酸的分离纯化优秀课件

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前言
核酸(nucleic acid)是遗传信息的携带者, 是基因表达的物质基础。
无论是进行核酸结构还是功能研究,首先 需要对核酸进行分离和纯化。
核酸样品质量将直接关系到实验的成败。
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核酸的分离纯化优秀课件
一、核酸分离、纯化原则
(一)保持核酸分子一级结构的完整性
1 意义
遗传信息全部储存在一级结构之中,核酸 的—级结构还决定其高级结构的形式以及和其 他生物大分子结合的方式。
核酸的分离纯化优秀课件
General process of gene engineering
1. 从生物有机体基因组中, 分离出带有目的基因的DNA片 段。
2. 将带有目的基因的外源DNA片段连 接到能够自我复制的并具有选择记号 的载体分子上,形成重组DNA分子。
3. 将重组DNA分子转移到适当的受体 细胞(亦称寄主细胞)并与之一起增 殖。 4. 从大量的细胞繁殖群体中,筛选出 获得了重组DNA分子的受体细胞,并筛 核酸的分离纯选化出优秀已课件经得到扩增的目的基因。
1952年Hershey和Chase证实噬菌体DNA 侵染细菌实验
核酸的分离纯化优秀课件
2. 50年代揭示了DNA分子的双螺旋结构模型和半 保留复制机制,解决了基因的自我复制和世代交 替问题;
Rosalind Franklin拍出 了第一张 能反映DNA美丽双螺旋结构的X
射线照片
X-ray source
(3) 肝素 (4)复合硅酸盐(Macaloid) (5)RNase阻抑蛋白(RNasin) (6)氧钒核糖核苷复合物 (Vanadyl-
Ribonucleoside Complex, VRC)
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核酸的分离纯化优秀课件

核酸的分离纯化

核酸的分离纯化

(2)异丙醇 )
优点: 优点: 需体积小,速度快,适于浓度低、 需体积小,速度快,适于浓度低、体积大的 DNA样品沉淀 一般不需低温长时间放置。 样品沉淀。 DNA样品沉淀。一般不需低温长时间放置。 缺点: 缺点: 易使盐类、蔗糖与DNA共沉淀. DNA共沉淀 易使盐类、蔗糖与DNA共沉淀.异丙醇难以挥 发除去。所以,最后用70 乙醇漂洗数次。 70% 发除去。所以,最后用70%乙醇漂洗数次。
(2) DEPC(二乙基焦碳酸盐 (C2H5OCOOCOOC2H5) 二乙基焦碳酸盐) 二乙基焦碳酸盐
粘性液体,很强的核酸酶抑制剂。 粘性液体,很强的核酸酶抑制剂。
作用机制:与蛋白质中 结合使蛋白变性 结合使蛋白变性。 作用机制:与蛋白质中His结合使蛋白变性。 使用注意: 使用注意: 1)DEPC也能破坏单链核酸中大部分腺嘌呤环。 ) 也能破坏单链核酸中大部分腺嘌呤环。 但浓度比使蛋白质变性的浓度大100~1000倍。 ~ 2)容易降解,保存在4 ℃或液氮中; )容易降解,保存在 或液氮中; 3)提RNA时,0.1% DEPC浸泡器皿 ℃ 2 h。 ) 浸泡器皿37℃ 时 浸泡器皿 。 4)剧毒。 )
1.1.2 分离核酸原则: 分离核酸原则:
1)温度不要过高; 温度不要过高; 不要过高 控制pH 范围(pH pH值 (pH值 2)控制pH值范围(pH值5-9); 保持一定离子强度 离子强度; 3)保持一定离子强度; 减少物理因素对核酸的机械剪切力 机械剪切力. 4)减少物理因素对核酸的机械剪切力.
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2.2
核蛋白的解聚、 核蛋白的解聚、变性蛋白的去除
核酸与蛋白质的结合力主要是正负静电 吸力(核酸与碱性蛋白的结合) 吸力(核酸与碱性蛋白的结合)、氢键和非 极性的范德华力。 极性的范德华力。 分离核酸最困难的是将与核酸紧密结合 分离核酸最困难的是将与核酸紧密结合 最困难 的蛋白质分开,同时避免核酸降解。 的蛋白质分开,同时避免核酸降解。

《核酸的分离与纯化》课件

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凝胶层析
柱体上填充的凝胶为物质提供 分子筛作用,不同大小的分子 在凝胶中被阻碍的程度不同。
结论与要点
1 核酸是由核苷酸组成的生物高分子。 2 常见的核酸类型有DNA和RNA。
3 分离技术包括盐析、凝胶电泳、超
速离心和柱层析等。
5 超速离心技术包括差速离心和密度
梯度离心。
4 凝胶电泳可分为琼脂糖凝胶、聚丙
差速离心
通过旋转离心管,根据密度差异使分子分层。
密度梯度离心
将不同密度的离子或分子加入离心管,创建密 度梯度,然后离心管使分子按照密度梯度分 层。
柱层析
吸附层析
利用柱体上填充的化学吸附剂 与物质的亲和性差异使其分离。
离子交换层析
利用电荷性质进行分离,负载 离子的功能团能够与物质中带 正电荷的离子相互作用。
《核酸的分离与纯化》 PPT课件
此课件旨在介绍核酸的分离与纯化方法,从而为纯核酸的获得提供帮助。
核酸是什么
1 分子组成
核酸是由核苷酸组成的生物高分子。每个核苷酸由糖、碱基和磷酸基团三部分组成。
2 功能与作用
核酸参与了生命活动的多个方面,包括传递遗传信息、调控基因表达等。
3 常见类型
常见的核酸有DNA、RNA等多种类型,它们在分子组成和生物功能上存在差异。
核酸的分离方法
1
盐析
通过调节溶液的离子强度,使核酸与溶
凝胶电泳
2
液中的其他物质分离。
利用电场作用使核酸在凝胶中移动,根
据大小和电荷差异分离不同的核酸。
3
超速离心
通过调节离心力和离心时间,使不同重
柱层析
4
量的分子沉淀到不同位置。
利用柱体中填充的吸附剂、离子交换剂、 凝胶等材料,按照不同的物性实现分离。

《核酸的分离与纯化》ppt课件

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可实现自动化作业。
.
核酸提取方法——分别与纯化
——加热煮沸法 1、高速离心富集含核酸物质;
2、参与促细胞裂解的化学物质〔SDS、Triton X-100 、Tween 20 、NP-40 、CTAB、sarcosyl 、Chelex-100 〕等;参与蛋白酶K消 化一段时间,也可不加,直接95℃以上加 热10分钟左右;
过程中可加热。 高速离心后,提取沉淀核酸。 2、蛋白酶消化过夜,直接处置全部液体。
3、Saccomno液+DTT
.
实验室常见样本核酸提取方法
——痰标本提取方法: Saccomno液:每50毫升固定液中含50% 乙醇48 mL,2%聚乙 二醇1 mL、0.3利福平1 mL ; DTT (二硫苏糖醇)液: 0.1g DTT、0.78g NaCl、0.02g KCl、0.112g 磷 酸二氢钠、0.02g 磷酸二氢钾,加水至2L,使DTT浓度为0.005 %; 上述两种液体等体积混合,1~2倍体积参与到痰液中,振摇液 化30min,高速离心,沉淀提取核酸。
性在临床可接受范围。 2、磁珠法; 本钱较高
.
实验室常见样本核酸提取方法
——血清样本核酸提取方法: 血清中微生物来源RNA提取方法:
1、 酚氯仿法; 繁琐,手工操作反复性较差
2、磁珠法; 方便,易于自动化,反复性很好,本
钱较高
.
实验室常见样本核酸提取方法
——血清样本核酸提取方法: 血清中循环核酸提取方法:
.
核酸提取方法——分别与纯化
——盐析法-NaAC 1、细胞裂解同前述;并参与蛋白酶K消化
2、参与1/10体积的3mol/L的NaAC,与1体积 的细胞裂解液混合,震荡混匀,-20℃孵 育 ~15 min;台式离心机最大速度离心 15—20min;
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2020年9月28日
5
• 3.氯仿能加速有机相与水相分离,去除植物 色素和蔗糖。用氯仿抽提以去除迹量酚。
• 4.用水饱和的乙醚抽提最后一次,彻底去除 迹量酚和氯仿。然后68℃水浴10分钟蒸发迹 量乙醚。
• 5.异戊醇可减少蛋白质变性操作过程中产生 气泡。
• 酚/氯仿抽提法标准程序是:
• 酚抽提一次,酚/氯仿抽提一次,氯仿抽提一 次。
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• 1.CsCl沉降平衡超速离心
• CsCl沉降平衡超速离心是纯化DNA分子的主要方 法:
• ①可分离CC(双链闭合环状)、OC(开环双链)、 L(线性)三种结构的DNA分子。质粒DNA的这三 种结构分子与EB结合能力不同(L>OC>CC),EB 插入DNA分子中可使其浮力密度下降,结合EB越 多、浮力密度越小。。
• 2. 酚的水饱和:饱和酚的pH值接近8.0,可减少离心 后水酚双向的交界面上的DNA滞留;由于在酸性pH值条 件下,DNA分配于有机相,因此使用前必须对酚进行平 衡使其pH值在7.8以上。
制好的饱和酚贮于棕色瓶中4℃可保存1个月。因酚 的氧化随pH值的增高而增加,如所用平衡缓冲液的 pH值>8及RNA的提取都应使用新鲜饱和的酚。
• 2.蔗糖密度梯度超速离心
• 可用于分离不同大小的DNA片段
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13
• 五.核酸的沉淀浓缩法
• 原理:核酸与Na、K、Mg等形成的盐在许多种有 机溶剂中不溶解,但也不会被有机溶剂变性。
• (一)核酸沉淀的盐类及浓度
• 1.NaAc:最常用,终浓度为0.3M(pH5.0)
• 2.NaCl:终浓度为0.2M,除去SDS。
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6
蛋白杂质
水相(核酸溶液) 有机相
•高速离心后的分层情况(酚/氯仿抽提法)
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• 注意事项:
• 1. 一般酚是透明无色的结晶。酚结晶如呈现粉红色或 黄色,表明其中含有酚的氧化产物如醌、二酸等。变 色的酚溶液不能用于实验,因其中的酚氧化物可破坏 核酸的磷酸二酯键,并引起DNA链的交联。
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8
• 二、层析法
• 利用物质在静止相和移动相之间分配系数的差异, 进行物质的分离和纯化的技术称为层析。层析体 系中一般由两个互相不溶• 羟磷灰石是一类特殊的层析材料,对核酸有较大的亲和 力,并在大多数条件下不吸附蛋白质和多糖,所以能纯 化核酸。双股DNA与羟磷灰石的结合较牢固,如将细胞的 溶解液流经羟磷灰石柱,然后用低浓度磷酸缓冲液流洗, 以去除RNA、蛋白质及其它物质。随即再用浓度高的磷酸 缓冲液洗脱,即可获得DNA。
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• ④纯化DNA分子。在中性CsCl溶液中,DNA的 浮力密度为1.7g/ml,RNA为2.0g/ml,蛋白 质的浮力密度为1.3~1.4g/ml。在起始密度 为1.7g/ml的CsCl溶液中进行超速离心,可 以很好地将三者区分开。蛋白质浮在上层液 面,DNA分子在离心管中间形成区带,RNA沉 于管底,从而达到从DNA样品中去除微量RNA 和蛋白质的目的。
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4
第二节 分离制备核酸的常用方法及基本原理
• 一.溶解法: • 酚/氯仿抽提法的基本原理
• 1.交替使用酚、氯仿这两种不同的蛋白质变性 剂,以增加去除蛋白杂质的效果。
• 2.氯仿与苯酚混合使用,对于RNA的提取显得更 加重要,因酚可有效变性蛋白质,但不能完全 抑制RNA酶的活性。而且酚能溶解10~15%的水, 从而溶解部分Poly(A)RNA。
• ②可分离双链DNA分子的两条互补链。
• ③分离浮力密度不同的DNA分子或其他分子颗粒, 如图1。
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图1 氯化铯梯度纯化λ噬菌体
噬菌体在1.45g/ml与1.50g/ml氯化铯界面之间形成一肉眼可
见的带。在1.45g/ml与1.50g/ml氯化铯界面之间可看到一个
由噬菌体颗粒形成的浅蓝色带。
• 3.NH4Ac: 去除dNTP,铵盐抑制磷酸化等反应。
• 4.LiCl:高浓度(0.8M)可直接沉淀大分子量RNA。抑 制反转录酶反应和翻译(蛋白合成)实验。
• 5.KAc:与NaAc相似,钾盐形式难溶于含SDS的溶液。
• 6.MgCl2:对于浓度低于0.1μg/ml或长度小于100个核
苷酸的样品,可提高核酸沉淀的回收率。
第六章 核酸的分离与纯化
分子生物学技术实验室免疫研究室
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1
一、概述
• 核酸分离提取的原则 • 常用方法及基本原理 • DNA的分离纯化 • RNA的分离纯化
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第一节 核酸分离提取的原则
• 一、基本原则
• 1.保证核酸一级结构的完整性。 • 2.排除其它分子的污染。
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• 样品溶液中含盐浓度过高,应用TE进行稀释。
• (二)核酸的有机沉淀剂
• 1. 乙醇:沉淀DNA的首选有机溶剂。DNA沉
淀用2倍体积,RNA沉淀用2.5~3倍体积。
• 2.异丙醇:所需体积小速度快。0.54~1倍
• 二、注意事项
• 1.简化操作步骤,减少对核酸的破坏。 • 2.避免过酸(碱)等化学因素的影响(pH4~10)。 • 3.减少物理因素对核酸的降解。 • 4.防止核酸的生物降解。
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3
• 三. 主要步骤:
• 1.破碎细胞。 • 2.去除与核酸结合的蛋白质,多糖以及脂类等
生物大分子。
• 3. 去除其它不需要的核酸分子。 • 4. 沉淀核酸,去除盐类、有机溶剂等杂质。 • 5. 核酸纯化。
• 核酸提取的方案,应根据具体生物材料和待提取的核 酸分子的特点而定。只有采取合适的核酸提取方法, 才可获得完整性和纯度两方面质量均高的核酸分子。 下面介绍核酸分离纯化的基本方法及不同来源DNA的分 离提取方法。
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• 三、电泳法
• 凝胶电泳由于其操作简单、快速、灵敏等优点, 已成为分离、鉴定和提纯核酸首选的标准方法。 常用于核酸分离的凝胶电泳主要有琼脂糖电泳 和聚丙烯酰胺凝胶电泳。
• 四、超速离心法
• 根据核酸分子的物理特性如分子量、密度等的 不同,可用密度梯度超速离心的方法加以分离 纯化。
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