一步法构建同源重组载体
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一步法构建同源重组载体
王海艳
(中国农业大学)
同源重组载体构建需要分别克隆目的片段两端的同源臂(长度~1kb),并与Marker基因进行连接。传统的构建方法是两段同源臂分别克隆构建到目的载体,
费时费力。在本例中,本人已经成功应用汉恒生物科技(上海)有限公司的
HB-Infusion TM无缝克隆试剂盒,将同源臂及Marker基因一步成功构建到载体上,
现将实验过程及结果分享如下:
1. 目的片段引物的设计
用NEB builder(https:///watch?v=8_-t5xtJ3y8),或snapgene,genome compiler等软件,将三个目的片段的基因序列、线性化载体的基因序列按照软件使用说明依
次填入,将自动生成所需要的引物序列(如下表)。将引物提交华大基因进行合成。
引物序列列表
Primers Seq Tm GC(%) Len Fragment dDNA-P1 attgggtaccgggccctctagATATACTCGACAGGGCCCGC 73.5 61 41
3'-flank dDNA-P2 gtcactgtacGTGTGGCATTGCCCAGTCA 64.3 55 29
dDNA-P3 aatgccacacGTACAGTGACCGGTGACTCTTTCTG 66.8 51 35
5’-flank dDNA-P4 atcggtgcTCGAGTGGAGATGTGGAGTGG 65.7 59 29
dDNA-P5 atctccactcgaGCACCGATGTCGCCACGC 68.5 63 30 Marker
fragment dDNA-P6 aagggaacaaaagctggagctGTAGTAGAGAACTTGGACTTCGGCG 70.8 50 46
2. 目的片段的扩增
反应体系
DNA(248ng/μL) 1 μL
Forward Primer (10μM) 2 μL
Reverse Primer(10μM) 2 μL
ExTaq premix 25 μL
DDW 20 μL
Total 50 μL
(注:此步反应中的酶最好用高保真酶,以免产物出现错配)PCR反应程序
95℃ 4 min
95℃30 s
65℃30 s
72℃1~2.5 min
72℃10 min
将扩增到的PCR产物,用1%琼脂糖凝胶电泳后,进行胶回收并用Nanodrop 测量核酸浓度。
图1. 三个目的片段凝胶电泳结果
3. 载体的线性化
酶切:
34cycles
Plasmid 2 μg SacI 2 μL XbaI 2 μL 10×M b μffer 5 μL DDW 39 μL Total
50 μL
37℃酶切4h 后,用1%凝胶电泳进行分析,并用Axygen 凝胶回收试剂盒进行胶回收。
图2. 载体酶切及胶回收实验结果
A :质粒;
B :质粒酶切产物;
C :目的片段胶回收产物。
4. 冰上融化并且充分混匀HB-inf μsion TM Master mix ,配制反应体系
将各个片段按照说明书的要求计算用量并配制反应体系,如下表所示:
片段
碱基对数
(bp )
浓度
(ng/μL) OD260/280 所需mol 数
所需质量
(ng ) 所需体积
(μL) 3'-flank 1000 129.5 1.84 0.2 130.00 1.00 5’-flank 1000 141.4 1.89 0.2 130.00 0.92 Marker fragment 2518 184.9 1.88 0.2 327.34 1.77 Lineared vector 2875 95.2 1.85 0.1 186.88 1.96 HB-inf μsion MIX 10 DDW 4.34 Total
20
5. 将上述反应体系置于50℃孵育60min 。
6. 转化感受态大肠杆菌 1) 在冰上融化一支50 μL 的DH5α感受态菌。
2)
取20 μL 反应样品加入融化好的感受态菌中,轻轻混匀,将该混合物至
于冰上30 min 3) 放入42℃金属浴中热激90s ,迅速放入冰中静置5 min
4)
在超净工作台中,向上述管中加入1 mL LB (不含抗生素),然后固定到
摇床上37℃震荡1 h ,摇床转速180 rpm 。 5)
在超净工作台中,取上述转化混合液200 μL ,滴到含有Amp+抗性的LB
固体平板上,用酒精灯烧过的涂布棒将液滴涂布均匀,37℃恒温箱中倒置培养过夜。 6) 挑取平板上的单克隆,用载体上的引物M13F/M13R 对目的片段进行扩
增。 7)
用1%的琼脂糖凝胶电泳进行检测,实验结果如图。
8)
将5号转化子提交华大生物科技有限公司进行测序。结果表明重组片段
的序列与目的序列信息一致。
图3. 菌落PCR 试验结果