脂肪干细胞治疗ED

脂肪干细胞治疗ED
脂肪干细胞治疗ED

EBioMedicine

研究论文

前列腺癌根治术后勃起功能障碍患者海绵体内注射自体脂

肪干细胞的安全性和潜在功能性研究:一个开放的I期临

床试验

Martha Kirstine Haahr a,e,f,1, Charlotte Harken Jensen b,e,1, Navid Mohamadpour Toyserkani

c,e,f,

Ditte Caroline Andersen b,e,f, Per Damkier b,f, Jens Ahm S?rensen c,e,f, Lars Lund a,e,f, S?ren Paludan Sheikh b,d,e,?

摘要

背景:前列腺癌是男性最常见的癌症,而前列腺癌根治术(RP)通常会导致勃起功能障碍(ED),严重影响患者术后的生活质量。当前的干预,主要包括PDE-5抑制剂,但治疗效果乏善可陈。有文献指出,利用脂肪干细胞来治疗ED得到了潜在的满意结果。本研究中我们使用自体吸脂后新鲜分离的脂肪来源的再生细胞(ADRCs)进行了一个前瞻性的一期的单臂临床试验。

方法:17名前列腺癌根治术后的ED患者,使用传统疗法,无法得到满意的效果。本研究为前瞻性的一期的单臂临床试验。所有受试者在入组之前进行5-18个月都经历了前列腺癌根治术,随访到海绵体内注射6个月后。ADRCs根据其干细胞表面标记物进行分选。主要终点是细胞治疗的安全性和耐受性,而次要结果是勃起功能的改善。记录任何不良事件,而勃起功能使用IIEF-5评分。本研究注册账号为:NCT02240823。

研究结果:在为期一个月的评估中,海绵体内注射ADRCs的耐受性良好,只有使用脂肪提取液引起的不良反应,而在其后的研究随访中均未见效果报道。在研究期间,总体而言,8人恢复了勃起功能并能完成性交。进行分层分析之后,非尿失禁患者(平均IIEF= 7(95% CI 5-12),11人中的8人恢复勃起功能(IIEF6个月= 17(6-23)),(P

= )。相比之下,失禁患者没有恢复勃起功能(中位IIEF1/3/6 个月= 5(95%CI 5-6); 平均差1(95%CI ),P >)。

解释:新鲜分离的自体ADRCs海绵体内注射是一种安全的手术。并且具有改善IIEF评分和勃起功能的作用。具有良好的应用前景

资金:丹麦医学研究理事会,欧登塞大学医院和丹麦癌症协会。

1.介绍

很多基础研究对于干细胞治疗效果的前景进行了报

道,并已吸引了非常广泛的研究瞩目。在临床实践中,然

而,这类研究大部分仍停留在实验室阶段,除了骨髓移植

和化疗期间的干细胞治疗。而临床使用干细胞治疗勃起功

能障碍(ED)是一种可行的临床实践方案。

有报道称,从骨髓或脂肪组织间充质干细胞可以在动物模型中纠正ED。前列腺癌是最常见的男性癌症,几乎影响了17%的男性其中约25%接受前列腺切除术。由于阴茎神经损伤,高达86%的患者存在术后ED。ED定义为持续性或复发性无法获得或维持满意的勃起功能。前列腺癌术后ED是较为常见的临床术后并发症,并且严重影响患者及配偶生活质量。除了前列腺,ED可见于其他疾病,如高血压和肥胖,药物使用,如β受体阻滞剂和抗抑郁药,以及生活方式,如吸烟和酗酒造成ED。此外,年龄是一个危险因素; 40岁的男性的大约三分之一报告ED症状,而60岁以上的男性几乎一半患者存在ED。虽然ED的患病率和影响仍然是巨大的,当前阴茎康复治疗以下前列腺主要采用PDE-5抑制剂或注射疗法,仅有27%的患者治疗存在效果。因此,这种情况亟待解决。

在细胞水平,ED被认为是由神经血管或激素功能紊乱,导致了阴茎动脉的血管舒张受损。当晨勃失败时,阴茎组织进入慢性缺氧状态,导致血管功能障碍。脂肪干细胞(ADRCs,也被称为脂肪基质血管成分,SVF)能够在体外分化成血管细胞和神经元,并且大量的临床前工作表明ADRC注射入海绵体可以取得一个令人惊奇的良好效果。一项人类研究中,7名糖尿病ED患者使用脐带血细胞可以改善勃起功能。后续研究证明在临床使用细胞疗法治疗ED的患者,对照前列腺癌根治术(RP)后的患者神经损伤明显减少。但注射将新鲜分离的非同源的脂肪来源的再生细胞安全性认未有相关报道。

我们在这里报告的前列腺癌根治术后17名男性使用自体干细胞治疗ED的从1期临床试验的结果。

2.方法

2.1.研究设计和入组标准

研究对象():2014年5月和2015年9月之间共17例RP(3名开放手术,14名机器人辅助腹腔镜前列腺切除术)之后ED的患者纳入本前瞻性,开放,单组和单中心研究。所有受试者都在5-18个月前在丹麦欧登塞大学医院完成手术。入选标准为:年龄>18岁。被随访期间前列腺肿瘤无转移。患者有强烈的保持性功能的要求,且术前性生活正常。药理学干预(PDE-5或PGE1类似物)以及使用足够长的时间并且已被证实没有哦明显作用。若患者使用药物有丝毫效果,我们仍建议患者继续使用药物,若患者使用药物没有没有初始效应,鼓励患者重试药物治疗,看看他们是否改变看法,以便研究是否对药物重新发生反应。患者被告知要继续在审判期间其他常规药物和理疗。

排除标准:使用抗凝药的患者,皮下脂肪欠缺的,缺乏性兴趣。

我们用下面的方法进行评估:

如上述(),勃起功能(IIEF-5)和勃起硬度评分(EHS)被用来在评价RP术前以及ADRC注射后1、3、6月后的勃起功能。

尿失禁通过尿失禁问卷进行研究(ICIQ-UI SF)。不良事

件记录了每次患者随访期间注射位置以及提问,“上次注射后是否存在任何不适?”,以及关于阴茎周围任何疼痛、肿胀或出血情况的详细问题。

2.2.伦理学认证

该研究得到了丹麦国家伦理委员会(编号37054),丹麦卫生和药品管理局(EUDRA-CT )和丹麦数据保护局(2008-58-0035)的认可。按照赫尔辛基和GCP指南的声明进行了研究,并由欧登塞大学医院GCP单位监控。所有患者都参与前签署知情同意书。这项研究被注册在(NCT02240823)。

2.3.程序

2.3.1.脂肪组织收集,转运和识别

脂肪组织在全身麻醉过程中进行,并用喷水辅助脂肪取样器进行。ADRC分离后,使用自动Celution?800 / CRS系统(圣迭戈,加利福尼亚州,美国),注射到海绵体。我们通过ADRCs细胞计数,活力和亚群进行了分析。详细信息,请参阅补充材料。

2.4.统计分析

这是一个探索性的试验研究和计算没有样本大小的估计。我们计划在到达15名评估的患者包括30例临时备用患者。数据表示为中位数和四分位数间距(IQR),ADRC 使用平均值(SD)。IIEF结果使用方差分析,表示为95%置信区间。EHS成果使用弗里德曼的非参数检验,使用邓恩的多重非参数分析。ICIQ-UI SF秩和检验完成。ADRCs吸脂和供者年龄的量之间的关联是由皮尔逊相关分析。组间ADRC表型是由U检验分析。

所有的统计分析采用Prism6软件进行(GraphPad Software ,CA,USA)进行。

2.5.资金来源

该研究发起人在研究设计,数据收集,数据分析,数据解释或书面报告没有任何作用。所有作者有权使用所有数据。通讯作者有权决定提交发表。3.结果

我们共17名男子纳入研究()年龄分布于46至69岁(63(9)之间,中值(IQR))岁,前列腺切除术后患有ED,使用自体吸脂后新鲜分离的ADRCs注射至海绵体。所有患者具有高IIEF-5得分(23(3),中值(IQR))和EHS评分(4(1),中值(IQR)),和RP前具有活跃的性生活。11人名患者无尿失禁,而6是在入选时存在尿失禁,基线特征包括年龄,体重,吸烟,饮酒,体力活动,共患病和用药的程度两组无明显差异()。RP和ADRC治疗之间的时间

()(中位数(IQR)个月,无失禁和失禁男性之间没有差异(p = ,U检验)见于参考图。S1。

由自动化Celution?系统分选ADRCs的特性(),和之前先前ADRCs / SVF报道()在产率(ADRCs /克脂肪组织,×105,×104;平均,SD),细胞大小(,;平均值,SD),存活性(,;平均值,SD)和,生长形成单位(CFU%-F,%,;平均值,SD)等方面无明显差异。每名患者获得ADRCs的数量和脂肪抽吸物的相关(A),而我们观察(年龄和脂肪组织产量之间没有关系)。新鲜分离ADRCs大部分的表达下述表面标志物CD34(,%;平均,SD)和CD90(,%;平均值,SD),而CD31和CD73见于更小的亚群(%,%和%,%,分别;均值,SD)(C)。

所有男性注射ADRCs数量范围为亿,细胞在分离后立刻注射给患者,并且患者于当日出院。无严重不良事件报告。5名患者报告在为期一个月的评估时间点有发生由于取脂肪注射和ADRC注射位置的轻度不良反应。2人发货了短暂的红肿和注射部位肿胀。1个患者发生了有阴囊和阴茎血肿,但是在其后在14天内自愈。这名患者在治疗前有长时间服用NSAIDS药物史。最后2个例报道取脂2-6天后腹部疼痛和压痛且

无特殊干预,并在3位和6个月的评估解决所有的事件,没有患者报告的任何副作用或不良反应。

在研究期间,8名患者恢复了勃起功能病进行了完整的性生活)。事后分层网络提示无尿失禁是是否可恢复勃起功能的重要独立预测因子。无尿失禁组中,IIEF-5评分开始时为7(中位数(IQR)(平均(95%CI ),P = ,在治疗后1个月仍为7,但3个月后显着地提高到11(,()中,p = )6个月后提升到17(()中,p = )(B)。在EHS分数支持这些数据,但又存在细微的差别,虽然。EHS的数据在1个月和3个月都没有明显变化1(1)),而在6个月出现了明显的提示(3(1)(p值= ,(D)。

在尿失禁组,IIEF-5评分分别为1,3和6个月后类似没有差异(图5(1)(中位数(IQR)(平均1(95%CI 0·),p >,C)。同样,对于这组数据EHS在整个研究期间保持不变。而两组患者注射的ADRC并没有明显的差异。

为了估计RP术后ED的恢复速度,我们回顾2010 -2013年的医疗记录。其中包括165名患者的性生活能力和尿液失禁的信息记录。共有135名无尿失禁和30名存在尿失禁的人。在这些群体各有40和4名男子,恢复了足够的性功能,在术后6和术后12个月完成满意的性生活(F)。

此外,在尿失禁患者组中,尿失禁得分(ICIQ-UI SF)在6个月后显着的下降,这表明ADRC处理也可能对失禁本身具有积极效果。

4.讨论

近年来,干细胞治疗已经得到了广泛的关注,尤其在泌尿外科关于勃起功能障碍(ED)的治疗也得到了广泛的研究。但到现在为止,仅有1片文献报道了使用非同源型自体脐血细胞移植治疗男性2型糖尿病的的ED患者的作用。

在本研究中,新鲜分离的自体ADRCs海绵体内注射是治疗ED下前列腺癌根治术可行,安全和耐受性良好的方法。我们并没有观察到6个月内的任何严重不良事件,虽然笨研究并非是一个长期的关于治疗安全性的临床试验,仍然是令人欣慰的。已有临涵盖超过1000名患者床研究试验,对接受骨髓或脂肪组织干细胞的安全性进行和研究,并未发生严重的不良反应。并且在本研究中,大多数的RP术后ED的非尿失禁男性患者在3个月内恢复勃起功能,而且这种效果持续了6个月。且有效率较高,达到8/11(73%)。相反,失禁男性组中并不存在相关效果。这些不同的结果是不可能由于注射的干细胞的量或在其表型差异底层造成的,因为所有分析的参数组间统计学相等。

然而,失禁的人可能存在神经血管束损伤导致尿道括约肌神经支配的部分中断。此外,应该注意的是,这些患者相比,失禁患者IIEF5和EHS分数更低,5名患者治疗前即具有泌尿系的症状。这表明失禁患者有一个更严重的神经血管变性,有可能是心理因素,因为大小便失禁男性可能因为失禁的感觉不具有性吸引力。我们相信,失禁患者ADRC没有治疗效果,对患者治疗未来的研究和临床决策非常重要。ADRC疗法可以部分地缓解患者的尿失禁的症状。虽然临床显着性其是不清楚的,这些数据用于治疗失禁本身是有希望的。

我们的使用脂肪干细胞对ED患者进行治疗对其他研究有一定的协同作用,尤其是在使用从骨髓(NCT01983709)衍生的同种异体培养的干细胞,以及在宽范围的间充质干细胞治疗人类基本的方面。例如,如果培养非同源ADRCs干细胞或多能干(iPS)细胞对于治疗相关基本的安全性的研究。这将对后续研究有很大的影响,因为可以从干细胞库提取细胞进行治疗。我们仅仅研究RP术后的ED治疗,这被认为与神经损伤有关,但我们尚未知晓由于糖尿病,心血管疾病,下尿路疾病或只是年龄引起的ED是否有效。我们的研究结果以韩国关于糖尿病ED的研究表明,干细胞治疗可有效地用于不同类型的ED的。

我们的研究有一些局限性。这项试验研究为非盲研究且没有对照组。我们尚不能分辨究竟是相关的随访研究和心理刺激还是干细胞本身对患者ED症状进行了治疗。

我们并没有包括对勃起功能的恢复客观测量,如阴茎血流动力学和神经冲动测量。我们的结论都是在问卷调查的基础上产生的,为了减轻访员偏差,我们整个研究过程使用相同的面试官在,并使用同样的问题采访了患者在不同时间点。最近的一项研究表明,客观的测量和EHS之间的相关性。

总之,我们的研究表明,自体新鲜分离的ADRCs使用是安全的,也亟待后续治疗进一步证实该结论。

脂肪细胞的基础知识

脂肪细胞的基础知识 脂肪细胞的生长全过程及其形态变化脂肪母细胞,是指能向脂肪细胞分化的ADSCs在激素、生物活性因子、寒冷等因素刺激下均能逐渐分化成为单能干细胞。它可保持着干细胞增殖活跃的特性,脂肪母细胞再进一步分化为前脂肪细胞,即通常人们所说的脂肪细胞前体。前脂肪细胞再经历细胞融合、接触抑制和克隆扩增等步骤启动向成熟脂肪细胞分化,并在胰岛素、地塞米松等诱导剂作用下完成向成熟脂肪细胞的分化。全过程可以表示为:多能干细胞——脂肪母细胞——前脂肪细胞——不成熟脂肪细胞——成熟脂肪细胞。生长期前脂肪细胞的形态与成纤维细胞相似,经诱导分化,其细胞骨架和细胞外基质发生变化,开始进入不成熟细胞向成熟细胞转变。细胞形态由成纤维细胞样逐渐趋于类圆或圆形,胞体逐渐增大,胞质中开始出现小脂滴,脂质开始累积,以后小脂滴增多并融合为较大的脂滴,可经油红“O”染色等方法于显微镜下显色,从而获得成熟脂肪细胞的形态特征。此时的细胞无分裂增殖能力,为脂肪细胞分化的终末阶段。 张高娜,梁正翠.动物脂肪细胞的研究进展[J].饲料工业,2009,30(2):42-44. 脂肪细胞由起源于中胚层的间充质干细胞逐步分化形成,按间充质干细胞→脂肪母细胞→前脂肪细胞→不成熟脂肪细胞→成熟脂肪细胞的过程发展。前脂肪细胞在多种转录因子调控下,激活脂肪组织相关基因,并在这些基因的顺序性调控下,经一系列复杂的步骤分化为成熟脂肪细胞。 张艳.脂肪细胞分化过程中的分子事件[J].儿科药学杂志,2008,14(1):56-57.

间充质干细胞 概念: 不同文献中,分别命名为抽脂处理细胞(processed lipoaspirate cells, PLA),脂肪基质微管碎片细胞(stromal vascularfraction cells, SVF),脂肪组织源基质细胞(adipose-tissue derived stromal cells, ATSCs),脂肪源中胚层干细胞(adipose-derived mesodermal stem cells, ADMSCs)等。这些不一致的名称均指从脂肪组织中分离的、可在体外大量扩增并具有多向分化潜能的细胞。 李惠侠,屈长青. 脂肪组织源性干细胞研究进展[J]. 生理科学进展,2007,38(2) 脂肪细胞是由起源于中胚层的间充质干细胞(mesenchymal stem cell, MSC)逐步分化、发育而来,MSC主要分布于脂肪组织和骨髓中。脂肪细胞不同发育阶段的两类细胞系为多能干细胞系和前体脂肪细胞系,前者为不定向的细胞系,能转变为稳定的脂肪细胞、肌细胞和软骨细胞,后者为定向的细胞系,是目前体外研究脂肪细胞分化应用最为广泛的细胞系。 庞卫军,李影. 脂肪细胞分化过程中的分子事件[J]. 细胞生物学杂志,2005,27: 497-500. 脂肪来源的间充质干细胞(adipose tissue derived mesenchymal stem cells, ADMSCs) 间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)具有自我更新及多向分化潜能,是一种 具有潜力的组织工程种子细胞。目前研究得比较多的是骨髓来源的MSCs,但骨髓中的间 充质干细胞数量很少(约占细胞总数的1/105),且存在取材困难等问题。MSCs广泛分布于 其他组织中,包括肌肉、血管、肝脏、胰腺和脂肪等。 ADMSCs表面有CD29、CD44、CD71、CD90、CD105/SH-2、SH-3、STRO-1等多 种抗原标志。 李冬艳,宇丽. 脂肪来源的间充质干细胞分离方法的改进[J]. 暨南大学学报(医学版),2007,28(6). 脂肪源性干细胞(adipose-derived stem cells,ADSCs) Zuk等从脂肪组织中分离出了一种成纤维细胞样细胞,它与骨髓间充质干细胞(MSCs)形态相似,称之为脂肪干细胞(ADSCs),平均每300 ml脂肪组织可获得2×108~ 6×108个这样的细胞。ADSCs和MSCs具有相同的表现型,对CD29、CD44、CD71、 CD70、CD105/SH2和SH3为阳性反应,对CD31、CD34和CD45为阴性反应。此外, 它们还具有各自特征性的表达分化抗原:ADSCs具有特征性表达分化抗原CD49d,而MSCs具有特征性表达分化抗原CD106。 张高娜, 梁正翠. 动物脂肪细胞的研究进展[J]. 饲料工业,2009,30(2) 间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是一类具备干细胞特点的细胞系,具有自我更新能力、长期的活性和多系分化潜能。 脂肪来源的间充质干细胞(adipose tissue-derived mesenchymal stem cells,ADSCs),以其取材方便、来源丰富等多种优势逐渐取代骨髓间充质干细胞(bone marrow-derived mesenchymal stem cells,BMSCs)。 免疫表型:研究发现ADSCs主要表达CD13、CD44、CD73、CD90、CD105、CD106、CD166、CD29、CD49e和HLA-ABC,而不表达CD34、CD3、CD19、CD45、CD14、CD117、CD31、CD62L、CD95L和HLA-DR。这个结果和其他的MSCs几乎一致。但ADSCs与BMSCs也有差别:大部分BMSCs表达CD10,而表达CD10的ADSCs仅占5%~20%;几乎所有的ADSCs表达CD49f和CD54,而BMSCs极少表达。 周苏娜,张明鑫. 脂肪来源的间充质干细胞的生物学特征及临床应用[J]. 中国现代普通外科进展,2009,12(1). 不同细胞的表面标志是不同的,脂肪干细胞的表面标记为:CD9、CD10、CD13、CD29、CD10、CD44、CD49e、CD49d、CD54、CD55、CD59、CD90、CD105、CD107、CD146、

脂肪组织来源的干细胞提取、制备及储存质量管理专家共识

脂肪组织来源的干细胞提取、制备及储存质量管理专家共识 脂肪组织来源的干细胞(adipose tissue-derived stromal/stem cells,ASCs)是从脂肪组织中分离提取得到的,具有取材容易、对机体损伤小、体内储备量大、体外可大规模培养、可多向分化等优点。ASCs在人体修复重建、免疫调节及组织再生等方面的应用成为近年来干细胞研究的重要内容,也是组织工程及再生医学的研究热点。 大量研究表明,自体脂肪组织移植到软组织缺损部位后,其中40%~60%会被吸收,自体脂肪组织结合ASCs移植,能明显减少自体脂肪组织移植的吸收、液化、坏死及纤维化等情况发生,有利于构建具有生物学结构和功能的脂肪组织。同时,利用脂肪组织可以进行大规模的ASCs提取、制备、储存,为再生医学提供种子细胞。 目前,国内外尚缺乏ASCs提取、分离、制备及储存的标准和质量管理规范,导致各制备机构或研究应用机构之间无法进行统一评估和交流,严重制约了ASCs在皮肤软组织修复重建等相关领域的发展。为了建立安全、规范、稳定、可追溯的行业共识、指南及标准,从源头保证ASCs的提取、制备、储存的高质性和安全性,中国医药生物技术协会皮肤软组织修复与重建技术分会联合从事细胞制备和存储、皮肤软组织修复重建、分子生物学及整形和美容外科等多学科的专家,参照中国医药生物技术协会《细胞库质量管理规范》及《干细胞制剂制备质量管理自律规范》,组织起草脂肪组织采集及ASCs制备、检测、储存的标准和质量管理专家共识,旨在促进ASCs在皮肤软组织修复重建技术等领域研究成果的转化,进一步促进多学科的交流和发展。 1 脂肪组织采集 1.1 脂肪组织采集机构要求 脂肪组织的采集工作应在取得《医疗机构执业许可证》的医疗机构中实施。采集人员应持医师或者护士执业证书,经过相应的专业技术培训。采集机构应具有完整的标准化操作规程(standard operation procedure,SOP),并备有采集过程中的应急预案。采集过程应在层流手术室内进行无菌操作,最大限度地减少污染和交叉感染的发生。 1.2 脂肪组织供者要求 对供者健康状况进行全面检查(如一般信息、既往病史和家族性遗传病等)及病原微生物的感染筛查和在危险疫区停留情况的调查。身体状态良好、有完整体检报告、无遗传性家族病史、无恶性肿瘤、无急慢性传染病及血液系统疾病;血常规及分类、肝肾功能正常;人源性特定病毒(包括但不仅限于HIV、HBV、HCV、HTLV、EBV、CMV等)阴性、梅毒螺旋体阴性(提供脂肪组织的同时,另需提供不少于8ml外周血用于复检,ABO血型、HLA-Ⅰ类和Ⅱ类分型检查,以备追溯性查询)。若供者HBV、HCV、HTLV、EBV、CMV检查结果为阳性,实验室应具有处理感染性样本的独立物理空间、独立的空调系统,能做到使用后的器具和相关物品可经过灭活处理后再移出该区域。感染性样本与非感染性样本的处理及制备不使用同一设备,方可进行脂肪组织的采集,但必须使供者知情,同时通知接收、制备、质控及医护人员等做好防护措施。当实验室不具备上述相对应病原体阳性制备/培养区时,不得采集上述阳性供者的脂肪组织。若供者HIV、梅毒螺旋体检查结果为阳性时,不得采集供者的脂肪组织。高度怀疑HIV感染或者考虑HIV感染窗口期的供者不予采集。 1.3 采集方式、采集部位和采集量 1.3.1 采集方式 用肿胀液(生理盐水250ml+2%利多卡因10~15ml+肾上腺素0.25mg)局部浸润麻醉供脂肪组织区域,以20ml注射器配备口径1.5~3.5mm、侧孔3.0~5.0mm的吸脂针,进入供区,形成负压,呈扇形手动均匀吸取脂肪组织,吸出3~5mm3脂肪组织颗粒,若脂肪组织颗粒

脂肪干细胞的提取及鉴定

脂肪干细胞的提取及鉴定 一、脂肪干细胞(ASCs)的提取及鉴定 1、实验技术及原理: 运用细胞培养技术、流式细胞术(体外扩增后ACSs的表型会发生改变,主要体现在细胞表面蛋白和细胞因子表达的变化),差异离心术(可将基质血管细胞沉淀与悬浮的成熟脂肪细胞分离,沉淀中除ASCs,还包括血细胞、成纤维细胞和内皮细胞,基质血管细胞沉淀可以接种到孰料培养瓶中,基质细胞可贴壁,造血和其他杂质细胞不贴壁,在随后的传代过程中被出去,最终得到的ASCs可再很长时间内保持摸分化状态)。取C57BL,6 WT小鼠2只,常规麻醉消毒,取腹股沟脂肪组织剪碎至糊状,PBS液冲洗去麻药及血液,0.075%II型胶原酶消化(37?,30分钟)以去除外基质,生理盐水终止胶原酶的消化,离心(1200g,10分钟),去上清液及未消化的脂肪,10%FBS的DMEM重悬细胞沉淀,0.16mol/L氯化氨溶解剩余红细胞,离心洗涤,过200目铜网,得到单个核细胞。?镜下计数,按10个细胞/ml种植在培养瓶中,37?5%CO2孵箱培养,24小时后第一次换液,以后3天换液一次,80%融合后0.25% Trypsin,0.02%EDTA消化传代。细胞镜下作形态学观察及取第三代细胞用流式细胞仪作细胞周期及细胞免疫表型(CD29/CD44)的鉴定。 2、实验用品: 2.1 材料:C57BL,6 WT小鼠 2.2 试剂:PBS液,0.075%II型胶原酶消化,10%FBS,低糖DME M 2.3 仪器设备:超净工作台、恒温培养箱、普通显微镜、倒置显微镜、离心机、离心管、解剖剪、眼科剪、镊子(尖头、平头和有沟镊)、小烧杯,200目铜网过滤器,低糖DMEM、血球计数板、橡皮瓶塞、酒精灯、换药碗 3、细胞培养的方法与步骤:

脂肪源性干细胞与整形美容医学

脂肪源性干细胞与整形美容医学 一、脂肪干细胞介绍 二、ADSCs研究应用的三优势(脂肪干C应用及三大优势) 三、ADSCs在整形美容领域的应用研究 四、展望 一、脂肪干细胞介绍 1976年Fridenstein等首先报道从骨髓中分离出克隆源性的具有多向分化潜能的基质细胞-骨髓间充质干细胞(marrow-derived mesenchymal stem cells,MSCs)。Zuk等于2001年发现脂肪组织中除了含有已经定型的前脂肪细胞外,也包含一种具有多向分化潜力的细胞群,其性质与MSCs十分相似,但又不完全相同。 这些细胞已被证实不仅具有分化成为骨骼、软骨、脂肪、心肌、神经等组织的能力,而且同样具有促进伤口愈合、损伤组织细胞再生和减少疤痕的能力及抗衰老能力。 这种细胞被称为脂肪来源干细胞(adipose-derived stem cells,ADSCs)、脂肪来源成体干细胞(adipose-derived adult stem cells,ADAS cells)、脂肪来源成体间质细胞(adipose-derived adult stromal cells)、脂肪来源间质细胞(adipose-derived stromal

cells,ADSCs)、脂肪间充质干细胞(adipose mesenchymal stem cells,AdMSCs),成脂肪细胞(lipoblast)等等。现在被统称为脂肪源性干细胞(adipose-derived stem cells,ADSCs)。 二、ADSCs研究应用的三优势(脂肪干C应用及三大优势) 作为以修复重建为主旨的整形外科及以年轻化为核心的美容医学,再生医学一直是备受关注与研究探索的领域。由于MSCs获取途径与疾病治疗性价比的差异,整形外科领域再生医学研究与临床应用受到限制。脂肪源性间充质干细胞一经报道,首先在整形外科领域引起轰动效应,这种关注大大推动了ADSCs的研究,它的临床应用也正在追赶着MSCs的步伐。 首先,来源取材方便不仅是ADSCs一个最大的优势,也是整形外科的优势。一方面,脂肪组织在体内分布广泛,储量丰富;另一方面,吸脂术是整形外科成熟的常规手术,手术风险小,其作为常规“废弃的副产品”获取容易。 对患者来说,吸脂雕塑体形的同时享受干细胞的年轻化神奇功效是一次双赢的生命重塑,痛苦与恐惧感少于骨髓提取,亦无血源污染与免疫排斥风险,由此形成临床应用的优势。据国外报道,1994~2000年开展吸脂术的初期阶段,进行的66570例吸脂手术中,死亡率为0,发生

脂肪干细胞治疗ED

脂肪干细胞治疗E D Prepared on 22 November 2020

EBioMedicine 前列腺癌根治术后勃起功能障碍患者海绵体内注射自体脂肪干细胞的安全 性和潜在功能性研究:一个开放的I期临床试验 Martha Kirstine Haahr a,e,f,1, Charlotte Harken Jensen b,e,1, Navid Mohamadpour Toyserkani c,e,f, Ditte Caroline Andersen b,e,f, Per Damkier b,f, Jens Ahm Srensen c,e,f, Lars Lund a,e,f, Sren Paludan Sheikh b,d,e, 摘要 背景:前列腺癌是男性最常见的癌症,而前列腺癌根治术(RP)通常会导致勃起功能障碍 (ED),严重影响患者术后的生活质量。当前的干预,主要包括PDE-5抑制剂,但治疗效果 乏善可陈。有文献指出,利用脂肪干细胞来治疗ED得到了潜在的满意结果。本研究中我们 使用自体吸脂后新鲜分离的脂肪来源的再生细胞(ADRCs)进行了一个前瞻性的一期的单 臂临床试验。 方法:17名前列腺癌根治术后的ED患者,使用传统疗法,无法得到满意的效果。本研究为 前瞻性的一期的单臂临床试验。所有受试者在入组之前进行5-18个月都经历了前列腺癌根 治术,随访到海绵体内注射6个月后。ADRCs根据其干细胞表面标记物进行分选。主要终 点是细胞治疗的安全性和耐受性,而次要结果是勃起功能的改善。记录任何不良事件,而 勃起功能使用IIEF-5评分。本研究注册账号为:NCT02240823。 研究结果:在为期一个月的评估中,海绵体内注射ADRCs的耐受性良好,只有使用脂肪提 取液引起的不良反应,而在其后的研究随访中均未见效果报道。在研究期间,总体而言, 8人恢复了勃起功能并能完成性交。进行分层分析之后,非尿失禁患者(平均IIEF= 7 (95% CI 5-12),11人中的8人恢复勃起功能(IIEF6个月= 17(6-23)),(P = )。相 比之下,失禁患者没有恢复勃起功能(中位IIEF1/3/6 个月= 5(95%CI 5-6); 平均差1 (95%CI ),P >)。 解释:新鲜分离的自体ADRCs海绵体内注射是一种安全的手术。并且具有改善IIEF评分 和勃起功能的作用。具有良好的应用前景 资金:丹麦医学研究理事会,欧登塞大学医院和丹麦癌症协会。 1.介绍 很多基础研究对于干细胞治疗效果的前景进行了报道,并已吸引了 非常广泛的研究瞩目。在临床实践中,然而,这类研究大部分仍停留在 实验室阶段,除了骨髓移植和化疗期间的干细胞治疗。而临床使用干细 胞治疗勃起功能障碍(ED)是一种可行的临床实践方案。

人脂肪来源间充质干细胞库的初步建立

人脂肪来源间充质干细胞库的初步建立 徐潇,张旭毅,闫俊灵,陈冲,赵欣,李明辉,汤苏阳 【摘要】[摘要]目的探讨建立生物学性状稳定的人脂肪来源间充质干细胞(hADSCs)库的可行性,旨在为组织工程种子细胞提供更多来源。方法对分离得到的hADSCs采用液氮低温冻存,并在一定时间复苏培养,以流式细胞仪检测其表面抗原Z在诱导培养基中对其进行成脂和成骨诱导培养,光镜下观察细胞形态Z 免疫组织化学方法检测成骨诱导的特异标志物碱性磷酸酶(ALP)的表达, 观察hADSCs在复苏前后的分化能力。结果从脂肪组织中分离培养扩增获得数目稳定的hADSCs ,经冻存并复苏后的hADSCs形态和表面抗原保持不变Z可继续扩增10代以上,倍增时间为48h o复苏后第2、第6、第10代hADSCs 均保持了较强的成脂及成骨分化能力。结论初步建立hADSCs库,可为再生医学修复重建组织工程提供较好的种子细胞。 【期刊名称】解放军医学杂志 【年(卷),期]2016(041)012 【总页数】6 【关键词】[关键词]脂肪来源间质干细胞;干细胞库;低温保存;可行性研究近年来,再生医学的迅速发展为组织工程修复组织缺损提供了种子细胞和可利用的细胞基质,其中脂肪干细胞与其他干细胞相比具有来源丰富、取材简单、便于培养、无组织配型及免疫排斥问题、可跨胚层多向分化、增殖速度快等显著优点Z是优秀的组织工程种子细胞[1-3]O人脂肪来源间充质干细胞(human adipose-derived Stem CeIlS , hADSCs)是从脂肪组织中分离获得的一种具有自我更新及多向分化潜能的干细胞[4],是极具前景的组织工程和基因治

脂肪源性干细胞在整形美容中的应用

脂肪源性干细胞在整形美容中的应用 施雨辰一、技术原理 干细胞是一类具有自我复制能力的多潜能细胞,在一定条件下,它可以分化成多种功能细胞,并具有较高的端粒酶活性,是人体的青春活力因子。随着年龄的增长,人体内的干细胞数量会不断降低,增殖分化潜能也不断的衰弱,直接导致衰老和疾病的发生发展。 而选择脂肪源性干细胞是因为,脂肪移植后成活率难以预测,且随着时间而发生变化。但绝大多数研究表明,脂肪源性干细胞可以通过种种方式显著提高脂肪移植后的成活率,而其他方法提高脂肪成活率的程度相对不明显,甚至其价值有待考证。 脂肪源性干细胞就是从脂肪组织中分离提取出来的具有多样分化功能和可塑黏附性的细胞群,所以可以代替病变细胞和老化细胞,起到治疗的作用。同时,脂肪源性干细胞较其他成体干细胞的分化能力强,抗衰老效果显著,疗效更持久。 在整形美容医学中,首先对患者实施常规肿胀麻醉,通过在患者脂肪比较集中部位进行脂肪的抽取,抽取脂肪50mL,然后在其中置入适量的胶原酶液进行震动,以220r/min的条件进行离心处理,混合物充分消化后进行过滤处理;当混合液离心后,会出现脂肪层、生理盐水层以及沉淀层;借助移液管将脂肪予以抽出,并将抽出的脂肪注射进患者的皮肤真皮层中,来重整功能细胞的供应系统,增加正常细胞的数量、活性,从而达到恢复肌肤状况,起到“表面”对抗衰老的目的。 二、技术应用 目前,干细胞医学美容技术在欧美、日本等国发展较为迅速。在中国,在美容整形外科中脂肪源性干细胞主要是应用于凹陷的填充或者各部位的年轻化治疗,且多用于临床试验,在广泛的临床应用中仍存在障碍。同时,一些打着“干细胞”技术的产品使得市场质量参差不齐,市场上销售的大部分“干细胞”技术或产品不是很规

脂肪干细胞的提取及鉴定

一、脂肪干细胞(ASCs)的提取及鉴定 1、实验技术及原理: 运用细胞培养技术、流式细胞术(体外扩增后ACSs的表型会发生改变,主要体现在细胞表面蛋白和细胞因子表达的变化),差异离心术(可将基质血管细胞沉淀与悬浮的成熟脂肪细胞分离,沉淀中除ASCs,还包括血细胞、成纤维细胞和内皮细胞,基质血管细胞沉淀可以接种到孰料培养瓶中,基质细胞可贴壁,造血和其他杂质细胞不贴壁,在随后的传代过程中被出去,最终得到的ASCs可再很长时间内保持摸分化状态)。取C57BL/6 WT小鼠2只,常规麻醉消毒,取腹股沟脂肪组织剪碎至糊状,PBS液冲洗去麻药及血液,0.075%II型胶原酶消化(37℃,30分钟)以去除外基质,生理盐水终止胶原酶的消化,离心(1200g,10分钟),去上清液及未消化的脂肪,10%FBS的DMEM重悬细胞沉淀,0.16mol/L 氯化氨溶解剩余红细胞,离心洗涤,过200目铜网,得到单个核细胞。镜下计数,按10⒋个细胞/ml种植在培养瓶中,37℃5%CO2孵箱培养,24小时后第一次换液,以后3天换液一次,80%融合后0.25% Trypsin,0.02%EDTA消化传代。细胞镜下作形态学观察及取第三代细胞用流式细胞仪作细胞周期及细胞免疫表型 (CD29/CD44)的鉴定。 2、实验用品: 2.1 材料:C57BL/6 WT小鼠 2.2 试剂:PBS液,0.075%II型胶原酶消化,10%FBS,低糖DMEM 2.3 仪器设备:超净工作台、恒温培养箱、普通显微镜、倒置显微镜、离心机、离心管、解剖剪、眼科剪、镊子(尖头、平头和有沟镊)、小烧杯,200目铜网过滤器,低糖DMEM、血球计数板、橡皮瓶塞、酒精灯、换药碗 3、细胞培养的方法与步骤: 3.1无菌操作的要领和要求。 3.2细胞原代培养: 3.2.1操作步骤 a.培养用品消毒后,安放在超净工作台内,紫外线消毒,做好洗手等准备工作。 b. 取材:取C57BL/6 WT小鼠2只,常规麻醉消毒,取腹股沟脂肪组织剪碎至糊状,PBS液冲洗去麻药及血液。 c. 消化:将漂洗后的组织至于平皿中,加入胶原酶(0.075%II型胶原酶, PH),用量(0.1-0.3ug/ml或200U/ml),再用移液管移至烧瓶中,置于37℃水浴或恒温箱中30分钟),每隔5-10min振荡一次。30min后,生理盐水终止胶原酶的消化。 d. 离心和计数:将离心管做好标记,平衡后以(1200g,1200r/min 10分钟),去上清液及未消化的脂肪,10%FBS的DMEM重悬细胞沉淀,0.16mol/L氯化氨溶解剩余红细胞,将收集的细胞悬液经200目铜网过滤,1200r/min 离心10分钟(先后顺序),得到单个核细胞。加入培养液吹打混匀后取样计数。根据计数结果调整细胞浓度为10⒋个细胞/ml。

脂肪来源干细胞免疫原性和免疫调节作用的实验研究_韩铮

收稿日期:2009-05-22 作者简介:韩铮(1982-),硕士,E-mail:allenhz520@ 脂肪来源干细胞免疫原性和免疫调节作用的实验研究 韩铮,姜平,高建华,鲁峰,付冰川,陈晓炜(南方医科大学南方医院整形外科,广东广州510515) 摘要:目的探讨脂肪来源干细胞(ADSCs)在体外的免疫原性,以及ADSCs 在家兔同种异体皮片移植中的免疫调节作用。方法将家兔淋巴细胞分别与自体和异体ADSCs 混合培养48h 后加入CCK-8试剂,并用酶标仪检测OD 值;在家兔同种异体移植皮片下注射自体ADSCs ,观察移植皮片的坏死时间,并于术后第7日切取移植皮片的周边组织进行组织学观察。结果家兔淋巴细胞与自体、异体ADSCs 混合培养后用酶标仪检测OD 值分别为(1.527±0.402)和(1.615±0.351),两组OD 值差异无统计学意义;家兔同种异体移植皮片下注射ADSCs 的移植皮片的坏死时间为(7.170±1.472)d ,未注射ADSCs 的对照组移植皮片的坏死时间为(5.830±1.169)d ,两组皮片坏死时间差异具有统计学意义;术后第7日组织学观察见实验组皮下浸润的炎症细胞较少,皮下组织结构完整、清晰;对照组皮下浸润的炎症细胞较多。结论脂肪来源干细胞在体外的免疫原性低,对家兔同种异体皮片移植有免疫调节作用。关键词:脂肪来源干细胞;免疫原性;免疫调节;组织工程中图分类号:Q813 文献标识码:A 文章编号:1673-4254(2009)10-2144-03 脂肪来源干细胞(ADSCs)是成体干细胞的一种,自Zuk 等[1]报道以来,以其来源广泛、取材简便的特点和可多向分化的潜能,成为干细胞及组织工程研究领域的热点[2]。近年来有关ADSCs 的研究主要集中于其多向分化潜能[3-6],而对其免疫学特性仍未展开较深入的研究。本实验以家兔作为动物模型,对家兔 ADSCs 的体外免疫原性及体内的免疫调节作用开展 初步探讨,试为扩充组织工程种子细胞的来源及拓展ADSCs 的应用领域提供实验基础。1材料和方法 1.1实验动物与试剂 健康新西兰大白兔10只,雌雄兼有,体质量 2.0~2.5kg ,由南方医科大学SPF 级动物实验中心提供并饲养。DMEM 高糖培养基,RPMI 1640培养基, 胰酶,FBS (Hyclone ),Ⅰ型胶原酶,CCK-8试剂盒, Percoll 淋巴细胞分离液,PHA (植物凝集素)。1.2方法 1.2.1家兔ADSCs 的分离及体外培养取家兔腹股 沟皮下脂肪5ml ,PBS 缓冲液反复冲洗后剪成约1 mm 3大小的脂肪颗粒,0.1%胶原酶在37℃条件下消化30min 左右。使用等量完全培养基(含10%FBS 的DMEM 高糖培养基)中和,离心(1200r/min )5min 后 去除上清,沉淀混悬后尼龙网过滤并接种于细胞培养瓶中,于37℃、5%CO 2孵箱培养。于24h 后更换培养液,此后每3d 换液1次。观察细胞生长情况,待 6~7d 细胞生长融合达80%~90%后,0.1%胰酶消化后按1∶3进行传代培养。1.2.2体外实验 1.2.2.1家兔淋巴细胞的刺激增殖实验取家兔耳缘静脉血5ml ,用Percoll 淋巴细胞分离液通过密度梯度离心法分离出外周血淋巴细胞,计数后与PHA 混 合培养于96孔培养板,具体实验分组如下,实验组:家兔淋巴细胞(1×104/孔)和PHA (100μg/ml ,20μl/孔)混合培养;对照组:单独家兔淋巴细胞培养组(1× 104/孔)。实验组与对照组各培养孔均培养48h 后加入CCK-8试剂(10μl/孔),继续混合培养4h 后用酶 标仪检测培养板上各孔的OD 值。 1.2.2.2家兔ADSCs 体外免疫原性检测实验通过前 述方法分离出家兔淋巴细胞,将其分别与自体 ADSCs 和同种异体ADSCs 混合培养于96孔培养 板,具体实验分组如下,对照组:家兔淋巴细胞(1× 104/孔)和自体家兔的ADSCs (3×103/孔)混合培养;实验组:家兔淋巴细胞(1×104/孔)和同种异体家兔的ADSCs (3×103/孔)混合培养。实验组与对照组各培养孔均培养48h 后加入CCK-8试剂(10μl/孔),继续 混合培养4h 后用酶标仪检测培养板上各孔的OD 值。 1.2.3体内实验家兔10只,随机分成5组(记为A 、B 、C 、D 、E 组),每组2只互为同种异体皮片移植对象。在每只家兔的两侧臀部设计直径为3cm 的圆形 皮片,切取后组内、同侧之间交互移植。实验组(左侧臀部):皮片移植的同时在皮片下注射含自体ADSCs (1×106/kg )的完全培养基2ml ;对照组(右侧臀部):皮片移植的同时在皮片下注射不含自体ADSCs 的完全培养基2ml 。术后每天观察各组家兔臀部移植皮片的存活情况并记录移植皮片的坏死时间(移植皮片红润,质地柔软,视为皮片存活良好;若皮片变为暗褐色且质地坚硬的面积>2/3,视为皮片坏死),于术后第7日将C 组和E 组两组家兔的实验组及对照组移 南方医科大学学报(J South Med Univ)2009;29(10) 2144··

脂肪干细胞成脂诱导及鉴定程序

脂肪干细胞成脂诱导及鉴定程序 一、试剂准备 (一)成脂分化诱导液(Adipogenic Medium, AM)配方【1】: 试剂名称浓度商品信息 1.极限必须培养基 (Dulbecco’S Modified Eagle Medium ,DMEM) 1.0 L (SH30021.01B, Hyclone) 2.胎牛血清 (Fetal Bovine Serum,FBS)10% (ES-009-B, Millipore) 3.青霉素/链霉素 (Penicillin/Streptomycin)1% (TMS-AB2C, CHEMICON) 4.地塞米松 (Dexamethasone,DM) 1μmo/L 分子量:392.46 (D4902-25MG, Sigma) 5.胰岛素 (Insulin, IS) 10 μmol/L 分子量:5808 (91077C—1g, Sigma) 6.3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 (Isobutylmethylxanthine,IBMX) 0.5 mmol/L 分子量:222.24 ( I5879-100MG, Sigma) 7.吲哚美辛 (Indomethacin,ID) 200 μmol/L 分子量:357.79 (I7378—5G, Sigma) (二)成脂分化诱导液浓储液配制 试剂名称质量浓缩倍数配制方法 1.Stock A 胎牛血清1ml/管1X( liquid)分装1ml/管X100 保存:-20℃ 2.Stock B 青霉素/链霉素0.1ml/管100X( liquid)分装0.1ml/管X100 保存:-20℃ 3.Stock C 地塞米松0.0117738 g 1000X 溶于30ml 无水乙醇(0.1%) 分装0.1ml/管X300 保存:-20℃ 4.Stock D 胰岛素0.05808 g100X 溶于10ml Hcl(0.1 mol/L,PH2.0) 分装0.1ml/管X100 保存:4℃ 5.Stock E 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤0.05556 g 200X 溶于2.5ml DMSO(0. 5%) 分装0.05ml/EP管X50 保存:-20℃ 6.Stock F 吲哚美辛0.07155 g 500X 溶于2ml 无水乙醇(0.2%) 分装0.02ml/管X100 保存:-20℃ (三)成脂分化诱导液工作液配制(10ml) 1.取DMEM(L)8.72ml加入15ml离心管(BD); 2.加1管Stock A(1ml); 3.加1管Stock B(0.1ml); 4.取1管Stock C(0.1ml)溶解,加入0.01ml; 5.加1管Stock E(0.05ml);

脂肪干细胞

?专科小词典? 脂肪干细胞 脂肪干细胞(adipose-derivedstemcells,ADSCs)是一种从脂肪组织中分离提取出的能够贴壁生长、具有可塑性、黏附性和多向分化潜能的中胚层来源的成体干细胞。 2001年,Zuk等通过脂肪抽吸术,在吸出的人体脂肪悬液中第一次分离得到了多向分化的干细胞。传代后培养的ADSCs,多角细胞逐渐减少,传代至第三代时基本消失,大多为梭形细胞,胞浆核仁十分丰富,与骨髓间充质细胞基本没有区别,多次传代后细胞生长速度也无减慢趋势,显示出ADSCs具有易获得、易扩增、不易衰老的明显优势。ADSCs表面的免疫标识会随传代的次数而发生改变,其中CD166、CD106、CD90、CD73、CD63、CD44、C29在最初表达量较低,随传代次数的增加而显著增加;与干细胞相关的表面标志CD34一直持续较高的表达水平。ADSCs一般不表达CD62、CD56等。ADSCs可以分化为源于中胚层的多种细胞类型,包括骨骼肌、心肌、软骨、脂肪、成骨等,向心肌细胞分化能力是最低的。此外还可以分化为源于外胚层的神经细胞和源于内胚层的胰腺细胞。ADSCs还可能有助于血管和造血细胞的生成。 由于脂肪组织在人体大量存在,取材容易,少量组织即可获取大量干细胞,能够在体外稳定增殖且衰亡率低,适宜大规模培养,对被采集者身体健康影响小,加上真空负压抽脂术已是成熟的整形技术。因此ADSCs显示出了其他干细胞所不能及的应用前景。 (广州医科大学附属第一医院骨科严广斌整理)?853?中华关节外科杂志(电子版)2016年6月第10卷第3期 ChinJJointSurg(ElectronicEdition),June2016,Vol.10,No.3

人脂肪组织来源的干细胞在骨组织工程中的应用

?综 述? 人脂肪组织来源的干细胞在骨组织工程中的应用 冯 林综述 张锡庆审校 中图分类号 R687 文献标识码 A 文章编号 1005-8478(2005)08-0620-02 作者单位:苏州大学附属儿童医院骨科, 215003 作者简介:冯林,女,河南郑州人,在读博士。研究方向:小儿矫形。 1987年,美国国家科学基金会(NSF )在加利福尼亚举行的专家讨论会上,首次提出了“组织工程”的概念,其定义为[1]:组织工程就是运用工程学和生命科学的原则和方法,研究哺乳类动物正常和病理组织的结构与功能的相互关系,并发展可恢复、保留或改善组织功能的生物替代品。骨组织工程是组织工程的一个重要分支,并且被认为是目前最具有前途和可行性的一个领域。骨组织工程学的研究中种子细胞、支架材料和细胞与材料的相互作用是研究重点。其中种子细胞是组织工程研究中最基本也是首要的环节。 脂肪干细胞是近年来从脂肪组织中分离得到的一群多能干细胞,具有向多种组织分化的潜能。2001年,Zuk 等[2]从人抽脂术中抽取的脂肪组织悬液中第一次分离取得了多向分化干细胞,命名为Pr ocessed L i poas p irate (P LA )。研究发现这些P LA 细胞可以在体外稳定的增殖且衰亡率低。免疫荧光和流式细胞仪检测表明P LA 细胞中的大部分来源于中胚层或间质。因为脂肪组织取材容易,因此虽然发现较晚,但研究非常迅速深入,目前已证实脂肪组织来源的干细胞能向脂肪细胞、成骨细胞、软骨细胞、肌肉细胞及心肌细胞定向转化,可作为组织工程的种子细胞,有很重要的研究价值。 1 人脂肪组织来源干细胞的多向分化能力1.1 向成骨细胞的定向分化 Zuk 等 [2] 通过实验发现:在向成骨方向诱导4d 后,P LA 细胞的结构开始发生变化,由一个狭长的类成纤维细胞形态转变为一种圆形、立体的形状。7d 后,这些细胞开始分泌出岛状的细胞外基质。2周后内源性碱性磷酸酶染色阳性并形成矿化结节。从第2~4周,培养孔中钙化的细胞外基质的量明显增加,具有统计学意义。而且,P LA 细胞向成骨细胞分化的能力可以维持相当长的时间,其表达碱性磷酸酶活性最迟可达培养的175d 。研究证明了P LA 细胞向成骨细胞分化的能力。 1.2 向软骨方向诱导 Huang 、Zuk [3] 等应用组织学和分子生物学的方法证实在 高密度的培养条件下,培养基中加入TGF 2 β、胰岛素、干扰素和抗坏血酸,48h 内可以诱导P LA 细胞形成明显的软骨结节并表达软骨特异性标记Ⅱ型胶原,硫酸软骨素-4和硫酸角质素。逆转录多聚酶链反应分析也确认了Ⅱ型胶原和软骨 特异性蛋白聚糖—聚集蛋白聚糖的表达。因此认为这种多能干细胞确实具有向软骨方向转化的能力。尽管P LA 细胞不是真正的软骨细胞,但是它们所显示出来的原始软骨组织的特征使得其有望成为软骨组织工程的种子细胞。国内的余方圆等[4]从新西兰大白兔体内切取的脂肪组织进行一系列处理后,将获得的脂肪组织干细胞向软骨方向进行了诱导分化,结果发现细胞逐渐变圆,并聚集形成软骨样结节,Ⅱ型胶原呈强阳性、聚集蛋白聚糖表达阳性、番红0、阿利新蓝染色阳性,也说明了干细胞向软骨的定向分化。 1.3 向肌肉方向诱导 M izuno 等 [5] 将P LA 细胞置于肌源性诱导条件下6周后通 过结构学、组织学和逆转录多聚酶链反映观察到肌源性标记 MyoD1和肌球蛋白重链的表达。研究者发现,诱导3周后,P LA 细胞形成多核巨细胞并提示有肌管形成。另外;MyoD1 和肌球蛋白重链表达的时间不同,在P LA 细胞分化的过程中 MyoD1的表达先于肌球蛋白重链。研究结果揭示:大约有15%的P LA 细胞在诱导6周后向肌肉方向分化。目前,骨骼 肌组织工程主要用来治疗原发性的骨骼肌病变和因创伤和缺血继发的骨骼肌的丧失。对于这些疾病现今尚无有效的治疗,尽管P LA 细胞向肌肉方向分化与其向脂肪组织和成骨方向分化的水平相比较低,但通过应用一些外源性的因素进行干扰以及改善培养条件有希望提高P LA 的分化水平,提高其临床应用价值。 1.4 向非中胚层组织的分化 P LA 细胞为多能干细胞,它可以分化成为多种中胚层来 源的组织,如骨、软骨、脂肪和肌肉。A shjian 等[6]则通过研究发现P LA 细胞可以诱导分化为外胚层来源的早期神经祖细胞。未分化的P LA 细胞本身就表达一些特征性的神经细胞标记,如神经原特异性烯醇化酶(NSE )、波形蛋白和神经原特异性核蛋白(Neu N )。在用异丁基甲基黄嘌呤(I B MX )吲哚美辛和胰岛素诱导2周后,大约20%~25%的P LA 分化形成具有典型神经细胞形态特征的细胞;同时伴随着NSE 、波形蛋白和神经生长因子受体tr12A 表达增加。但是,诱导后的 P LA 细胞并没有表达成熟神经原标记MAP 或成熟星型细胞标 记GF AP 。而且向神经原方向诱导的P LA 细胞出现了一个延迟的整流器即K +电流(一种早期发育的离子通道),同时伴有形态学的改变和神经原特异性标记表达的增加。研究结果揭示,尽管向神经原方向诱导的P LA 细胞并未表现出成熟神经原细胞和神经胶质的特异性标记,但其表现出的早期神经

【CN110343661A】一种人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法【专利】

(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201910335143.0 (22)申请日 2019.04.24 (71)申请人 朗姿赛尔生物科技(广州)有限公司 地址 510000 广东省广州市白云区机场路 131号四楼D09房 (72)发明人 陈忠平  (74)专利代理机构 广州一锐专利代理有限公司 44369 代理人 杨昕昕 (51)Int.Cl. C12N 5/0775(2010.01) (54)发明名称 一种人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方 法 (57)摘要 本发明涉及细胞工程技术领域,具体涉及一 种人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,包含 人体脂肪干细胞的提取步骤和人体脂肪干细胞 的培养扩增步骤;人体脂肪干细胞的提取通过人 脂肪消化液实现,所述的人脂肪消化液包含:胆 酸、甘氨酸、α1-抗胰蛋白酶、二甲基亚砜、0.9% 生理盐水、氯化镁、氯化胆碱、Trypsin -EDTA;人 体脂肪干细胞的培养扩增通过脂肪干细胞培养 基实现,所述的脂肪干细胞培养基包含:DMEM/ F12基础培养基、甲状腺素、胰岛素、谷氨酰胺、葡 萄酸铁、硒酸钠、维生素C、成纤维细胞生长因子、 L -脯氨酸、氯化胆碱、青霉素;本发明所述人体脂 肪干细胞的提取及培养扩增方法,可显著提高所 获得的干细胞的数量、 成活率和活性。权利要求书2页 说明书5页 附图1页CN 110343661 A 2019.10.18 C N 110343661 A

1.一种人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,包含如下步骤:人体脂肪干细胞的提取步骤和人体脂肪干细胞的培养扩增步骤。 2.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,所述人体脂肪干细胞的提取通过一种人脂肪消化液实现,所述的人脂肪消化液包含:0.3~0.8 mg/ml 胆酸、0.5~1.5 mg/ml甘氨酸、0.5~2.5 mg/ml α1-抗胰蛋白酶、3~25μl/ml二甲基亚砜、175~220mg/mL 0.9% 生理盐水、60~85 mg/ml氯化镁、10~30mg/mL氯化胆碱、2.5~7.5mg/ml Trypsin -EDTA。 3.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,所述人体脂肪干细胞的提取通过一种人脂肪消化液实现,所述的人脂肪消化液包含:0.5~0.7 mg/ml 胆酸、0.8~1.2 mg/ml甘氨酸、1~2 mg/ml α1-抗胰蛋白酶、10~18μl/ml二甲基亚砜、200~210mg/mL 0.9%生理盐水、70~80 mg/ml氯化镁、15~25 mg/mL氯化胆碱、4~6mg/ml Trypsin -EDTA。 4.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,所述人体脂肪干细胞的提取通过一种人脂肪消化液实现,所述的人脂肪消化液包含:0.6 mg/ml胆酸、1 mg/ml甘氨酸、1.5mg/ml α1-抗胰蛋白酶、15μl/ml二甲基亚砜、205 mg/mL 0.9%生理盐水、75 mg/ml氯化镁、20 mg/mL氯化胆碱、5 mg/ml Trypsin -EDTA。 5.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,所述的人体脂肪干细胞的培养扩增通过一种脂肪干细胞培养基实现,所述的脂肪干细胞培养基包含:DMEM/F12基础培养基、8~20μg/ml甲状腺素、5~10μg/ml胰岛素、8~12mmol/L谷氨酰胺、100~300ng/ml葡萄酸铁、10~25mg/ml硒酸钠、5~18mg/ml维生素C、20~30mg/ml成纤维细胞生长因子、5~13mg/ml L -脯氨酸、0.5~4.5mg/ml氯化胆碱、1~2mg/ml青霉素。 6.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,所述的人体脂肪干细胞的培养扩增通过一种脂肪干细胞培养基实现,所述的脂肪干细胞培养基包含:DMEM/F12基础培养基、12~16μg/ml甲状腺素、6~9μg/ml胰岛素、9~11mmol/L谷氨酰胺、150~250ng/ml葡萄酸铁、15~20mg/ml硒酸钠、10~15mg/ml维生素C、22~28mg/ml成纤维细胞生长因子、7~10mg/ml L -脯氨酸、1~3.5mg/ml氯化胆碱、1.2~1.8mg/ml青霉素。 7.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,所述的人体脂肪干细胞的培养扩增通过一种脂肪干细胞培养基实现,所述的脂肪干细胞培养基包含:DMEM/F12基础培养基、14μg/ml甲状腺素、8μg/ml胰岛素、10 mmol/L谷氨酰胺、200 ng/ml葡萄酸铁、18mg/ml硒酸钠、12mg/ml维生素C、25mg/ml成纤维细胞生长因子、9mg/ml L -脯氨酸、2.5mg/ml氯化胆碱、1.5 mg/ml青霉素。 8.根据权利要求1所述人体脂肪干细胞的提取及培养扩增方法,其特征在于,人体脂肪干细胞的提取通过包含如下步骤的方法实现: 将人脂肪组织置于入离心分离装置中,再加入生理盐水置完全浸没后充分搅拌均匀,使用离心装置分离人体脂肪组织,得上层油层、中层脂肪层、下层沉积层;将中层脂肪层置于离心分离装置中,添加等体积的人脂肪消化液混合均匀,离心分离后去浮游脂肪并取上层液体,再向上层液体中加入Dulbecco ’s磷酸盐缓冲液,然后离心,取下层沉积细胞,使用Dulbecco ’s磷酸盐缓冲液重复离心洗涤2次,下层沉积细胞即为人体脂肪干细胞;将下层沉积层置于离心分离装置中,加入等体积的脂肪组织消化剂混合均匀,离心后的下层沉积细 权 利 要 求 书1/2页2CN 110343661 A

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