急性毒性实验内容课件
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《动物毒理实验》课件:实验一 小鼠经口急性毒性试验
2. 设备与器械 吸管、烧杯、灌胃器、电子天 平(感量0.1 g)、外科手术剪、5 mL注射器、 10 mL注射器、干棉球 3. 实验动物 成年健康小鼠,18-22g,雌雄 各半
四、实验步骤
1. 剂量选择: 查阅文献,估计预期毒性中值;
预试验,求出受试化学物的0~100%或 10~90%大致致死范围,设计正式试验的剂 量和分组。
体重增加:低水平的化学毒物促进动物 生长,动物体重增长率大于对照组。
观察指标(3)
死亡数和死亡时间 十分重要的中毒机理研究信息;重
点观察和记录各个剂量组动物的死亡数; 每只动物死亡的时间(尤其是最早出现 死亡的时间)。
观察指标(4)
病理学检查及其他指标
及时剖检:对死亡动物的主要脏器进行肉眼观察, 重点检查主要脏器的大小、外观、色泽、有无充血、 出血、水肿等;
(2) 配制方法的选择:等浓度稀释法和等 容量稀释法。
等浓度稀释法:将受试化学物配制成一 种浓度,不同剂量组实验动物单位体重所给 受试化学物的体积不同,剂量越高,所用的 体积越大;剂量越低,所用的体积越小。
等容量稀释法
将受试化学物配制成不同浓度,不同剂量 组实验动物单位体重所给受试化学物的体 积相同,剂量越大,受试化学物配制的浓 度越高。
为避免操作误差,等容量稀释的传统方法 常用1︰K系列稀释法(K=各组剂量比值)。
根据实验设计要求确定最高剂量组所需受 试化学物的浓度和总体积,配制母液。
(3)等容量稀释法配制6个剂量组的染毒溶液
➢ 求母液浓度C1 绝对致死剂量为2500mg/kg,最低中毒剂
量为800mg/kg,每10g体重小鼠灌胃0.2mL C1=2500mg/kg×10g/0.2mL=125mg/mL ➢ 求公比r
四、实验步骤
1. 剂量选择: 查阅文献,估计预期毒性中值;
预试验,求出受试化学物的0~100%或 10~90%大致致死范围,设计正式试验的剂 量和分组。
体重增加:低水平的化学毒物促进动物 生长,动物体重增长率大于对照组。
观察指标(3)
死亡数和死亡时间 十分重要的中毒机理研究信息;重
点观察和记录各个剂量组动物的死亡数; 每只动物死亡的时间(尤其是最早出现 死亡的时间)。
观察指标(4)
病理学检查及其他指标
及时剖检:对死亡动物的主要脏器进行肉眼观察, 重点检查主要脏器的大小、外观、色泽、有无充血、 出血、水肿等;
(2) 配制方法的选择:等浓度稀释法和等 容量稀释法。
等浓度稀释法:将受试化学物配制成一 种浓度,不同剂量组实验动物单位体重所给 受试化学物的体积不同,剂量越高,所用的 体积越大;剂量越低,所用的体积越小。
等容量稀释法
将受试化学物配制成不同浓度,不同剂量 组实验动物单位体重所给受试化学物的体 积相同,剂量越大,受试化学物配制的浓 度越高。
为避免操作误差,等容量稀释的传统方法 常用1︰K系列稀释法(K=各组剂量比值)。
根据实验设计要求确定最高剂量组所需受 试化学物的浓度和总体积,配制母液。
(3)等容量稀释法配制6个剂量组的染毒溶液
➢ 求母液浓度C1 绝对致死剂量为2500mg/kg,最低中毒剂
量为800mg/kg,每10g体重小鼠灌胃0.2mL C1=2500mg/kg×10g/0.2mL=125mg/mL ➢ 求公比r
《动物毒理实验》课件:实验一 小鼠经口急性毒性试验
为避免操作误差,等容量稀释的传统方法 常用1︰K系列稀释法(K=各组剂量比值)。
根据实验设计要求确定最高剂量组所需受 试化学物的浓度和总体积,配制母液。
(3)等容量稀释法配制6个剂量组的染毒溶液
➢ 求母液浓度C1 绝对致死剂量为2500mg/kg,最低中毒剂
量为800mg/kg,每10g体重小鼠灌胃0.2mL C1=2500mg/kg×10g/0.2mL=125mg/mL ➢ 求公比r
三、实验试剂和材料
1. 药物与试剂 盐酸二甲硝咪唑、苦味酸酒精 饱和溶液和中性红溶液、记号笔
2. 设备与器械 吸管、烧杯、灌胃器、电子天 平(感量0.1 g)、外科手术剪、5 mL注射器、 10 mL注射器、干棉球 3. 实验动物 成年健康小鼠,18-22g,雌雄 各半
四、实验步骤
1. 剂量选择: 查阅文献,估计预期毒性中值;
式中,K:各组剂量的比值,K=1/r。 取母液m mL置一容器中,供最高剂量组染毒用;加入
m mL溶剂,稀释后的浓度为C2,C1︰C2=1︰K,取出 m mL供第二组动物染毒用;再加入m mL溶剂,稀释后的 浓度为C3,C2︰C3=1︰K,取出m mL供第三组动物染 毒用。依次类推,配制其它不同剂量组的试液。
可能的中毒表现: 兴奋,活动增加、骚动、窜跑、跳跃、呼吸加深加快; 抑制,活动减少、呆立、静卧、步态不稳、呼吸困难等; 刺激症状:搔鼻、尖叫、出汗、流涎、眼耳鼻等的出血。
观察指标(2)
体重 观察期间的体重变化可以反映动物中毒
后的整体变化,应3-5天测量一次; 体重减轻:可能是动物食欲下降、摄食
量减少;也可能是化合物干扰代谢系统,影 响食物吸收、利用;
(1) 动物的禁食和复食:灌胃前禁食6~10h,使 动物保持空腹状态,且不至因禁食时间过长影响肝 脏,进而影响实验结果。灌胃后至少2~3h后才能 复食,灌服油剂比水剂要求复食时间更长; (2) 灌胃体积:小鼠每10g体重灌胃0.1~0.2mL, 最多不超过0.4mL。小鼠灌胃量的极限是0.5~1mL; (3) 灌胃方法和注意事项。
根据实验设计要求确定最高剂量组所需受 试化学物的浓度和总体积,配制母液。
(3)等容量稀释法配制6个剂量组的染毒溶液
➢ 求母液浓度C1 绝对致死剂量为2500mg/kg,最低中毒剂
量为800mg/kg,每10g体重小鼠灌胃0.2mL C1=2500mg/kg×10g/0.2mL=125mg/mL ➢ 求公比r
三、实验试剂和材料
1. 药物与试剂 盐酸二甲硝咪唑、苦味酸酒精 饱和溶液和中性红溶液、记号笔
2. 设备与器械 吸管、烧杯、灌胃器、电子天 平(感量0.1 g)、外科手术剪、5 mL注射器、 10 mL注射器、干棉球 3. 实验动物 成年健康小鼠,18-22g,雌雄 各半
四、实验步骤
1. 剂量选择: 查阅文献,估计预期毒性中值;
式中,K:各组剂量的比值,K=1/r。 取母液m mL置一容器中,供最高剂量组染毒用;加入
m mL溶剂,稀释后的浓度为C2,C1︰C2=1︰K,取出 m mL供第二组动物染毒用;再加入m mL溶剂,稀释后的 浓度为C3,C2︰C3=1︰K,取出m mL供第三组动物染 毒用。依次类推,配制其它不同剂量组的试液。
可能的中毒表现: 兴奋,活动增加、骚动、窜跑、跳跃、呼吸加深加快; 抑制,活动减少、呆立、静卧、步态不稳、呼吸困难等; 刺激症状:搔鼻、尖叫、出汗、流涎、眼耳鼻等的出血。
观察指标(2)
体重 观察期间的体重变化可以反映动物中毒
后的整体变化,应3-5天测量一次; 体重减轻:可能是动物食欲下降、摄食
量减少;也可能是化合物干扰代谢系统,影 响食物吸收、利用;
(1) 动物的禁食和复食:灌胃前禁食6~10h,使 动物保持空腹状态,且不至因禁食时间过长影响肝 脏,进而影响实验结果。灌胃后至少2~3h后才能 复食,灌服油剂比水剂要求复食时间更长; (2) 灌胃体积:小鼠每10g体重灌胃0.1~0.2mL, 最多不超过0.4mL。小鼠灌胃量的极限是0.5~1mL; (3) 灌胃方法和注意事项。
《急性毒性试验》课件
食品安全性评价
急性毒性试验:评 估食品中化学物质 的急性毒性
应用:用于食品添 加剂、农药残留、 食品包装材料等安 全性评价
意义:保障食品安 全,降低食品安全 风险
法规要求:各国食 品安全法规对急性 毒性试验有明确要 求
Part Six
急性毒性试验的局 限性
实验动物和人体的差异
物种差异:实验动物与人类在生理、 生化、遗传等方面存在差异
急性毒性与其他毒性试验的整合
整合目的:提高毒性试验的准确性和效率 整合方法:采用多学科、多领域的交叉研究 整合优势:降低试验成本,提高试验质量 整合挑战:需要解决不同毒性试验之间的差异和矛盾
急性毒性试验在特殊领域的应用
药物研发:评估药物的毒 性和副作用
环境监测:评估化学物质 对环境的影响
食品安全:评估食品添加 剂的安全性
代谢差异:不同物种对同一种物质的代谢能力可能不同 生理差异:不同物种的生理结构、功能可能不同,对同一种物质的反应可 能不同
实验条件和实际条件的差异
单击添加项标题
实验条件:实验室环境,可控因素较多
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实验条件:单一剂量,单一时间
单击添加项标题
实验条件:单一物种,单一环境
单击添加项标题
实验条件:短期观察,短期影响
毒性反应的机制分析
毒性反应的类型:急性、亚急性、慢性 毒性反应的机制:细胞毒性、组织毒性、器官毒性 毒性反应的影响因素:剂量、时间、个体差异 毒性反应的检测方法:生物标志物、病理学检查、生理学检查
Part Five
急性毒性试验的应 用和意义
药物研发和安全性评价
药物研发:急性 毒性试验是药物 研发过程中的重 要环节,用于评 估药物的安全性 和有效性
常见急性中毒新版培训课件
鉴别诊断 应与中暑、急性胃肠炎、脑炎等鉴 别外,必须与拟除虫菊酯类中毒相鉴别,前 者的口腔和胃无特出臭味,胆碱酯酶活力正 常,后者以嗜睡、发绀、出血性膀胱炎为主 要表现而无瞳孔缩小、大汗淋漓、流涎等。
常见急性中毒新版
41
治疗
★一般处理
迅速清除尚未吸收的毒物,防止毒物的继 续吸收。
立即离开现场,脱去污染的衣服,用肥皂水
低钾血症,考虑钡盐中毒 酒味提示甲醇或乙醇中毒。 昏迷、反复抽搐,考虑有机氟杀鼠剂、毒鼠强中毒 面色潮红、皮肤干燥,心动过速、烦躁谵妄,考虑莨菪类中毒 出现嗜睡、发绀、出血性膀胱炎考虑杀虫脒中毒
诊断
用试验治疗可帮助诊断。 毒物特异性检测可确诊
剩余食物、毒物、药物。 含毒标本:如呕吐物、胃内容物、血液、
低毒类 LD501000~5000mg/kg, 马拉硫磷 、辛硫磷。
常见急性中毒新版
20
有机磷杀虫药中毒的常见原因
生产性中度 使用性中毒 生活性中毒
常见急性中毒新版Biblioteka 21有机磷杀虫药中毒的常见原因
使用性中毒 是在使用过程中,施药人员喷洒杀虫 药时,药液污染皮肤或衣服后再由皮肤吸收,以及 吸入空气中杀虫药所致。
常见急性中毒新版
31
临床表现
反跳 出现AOPP患者经积极抢救治疗,症
状明显缓解的恢复期,病情突然恶化重新出 现AOPP的胆碱能危象,这种现象称为“反 跳”,多在中毒后2-9日。
常见急性中毒新版
32
临床表现
反跳原因是:目前不很清楚。
①毒物:氧化乐果、对硫磷等,
②毒物清除不彻底致残毒吸收,进食过早,
常见急性中毒新版
24
发病机制
OP主要是抑制乙酰胆碱(Ach),OP的毒性 作用是与胆碱酯酶(ChE)的酯解部位结合 成磷酰化胆碱酯酶(中毒酶),后者比较稳定 无分解Ach的能力;引起Ach蓄积,使胆碱 能神经受到持续冲动,导致先兴奋后衰竭的 一系列毒蕈碱样、烟碱样和中枢神经系统等 症状;严重患者因昏迷和呼吸衰竭而死亡。
常见急性中毒新版
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治疗
★一般处理
迅速清除尚未吸收的毒物,防止毒物的继 续吸收。
立即离开现场,脱去污染的衣服,用肥皂水
低钾血症,考虑钡盐中毒 酒味提示甲醇或乙醇中毒。 昏迷、反复抽搐,考虑有机氟杀鼠剂、毒鼠强中毒 面色潮红、皮肤干燥,心动过速、烦躁谵妄,考虑莨菪类中毒 出现嗜睡、发绀、出血性膀胱炎考虑杀虫脒中毒
诊断
用试验治疗可帮助诊断。 毒物特异性检测可确诊
剩余食物、毒物、药物。 含毒标本:如呕吐物、胃内容物、血液、
低毒类 LD501000~5000mg/kg, 马拉硫磷 、辛硫磷。
常见急性中毒新版
20
有机磷杀虫药中毒的常见原因
生产性中度 使用性中毒 生活性中毒
常见急性中毒新版Biblioteka 21有机磷杀虫药中毒的常见原因
使用性中毒 是在使用过程中,施药人员喷洒杀虫 药时,药液污染皮肤或衣服后再由皮肤吸收,以及 吸入空气中杀虫药所致。
常见急性中毒新版
31
临床表现
反跳 出现AOPP患者经积极抢救治疗,症
状明显缓解的恢复期,病情突然恶化重新出 现AOPP的胆碱能危象,这种现象称为“反 跳”,多在中毒后2-9日。
常见急性中毒新版
32
临床表现
反跳原因是:目前不很清楚。
①毒物:氧化乐果、对硫磷等,
②毒物清除不彻底致残毒吸收,进食过早,
常见急性中毒新版
24
发病机制
OP主要是抑制乙酰胆碱(Ach),OP的毒性 作用是与胆碱酯酶(ChE)的酯解部位结合 成磷酰化胆碱酯酶(中毒酶),后者比较稳定 无分解Ach的能力;引起Ach蓄积,使胆碱 能神经受到持续冲动,导致先兴奋后衰竭的 一系列毒蕈碱样、烟碱样和中枢神经系统等 症状;严重患者因昏迷和呼吸衰竭而死亡。
急性毒性试验PPT课件
编辑版pppt
12
(二)安全性评价
(1)根据急性毒性试验结果判断供试药物毒性的强弱、类型。国内尚无统—规 定。
(2)急性毒性试验结果对临床研究有指导意义,可以为临床研究时探索安全有 效剂量避免出现急性不良反应提供依据。
但是,鉴于人体与各种动物对各类化合物的吸收、分布、代谢、排泄以及各 类型毒性反应的差异,尚无规律可循,现有化学药品统计数据表明,在进行临 床研究时,仍应根据实验结果参考文献资料报道进行由低到高的安全治疗剂量 的探索。
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10
三、近似致死量试验
国外近年来有采用少量动物进行近似致死量测定的方法。其中有的类似 LD50的预试验或霍恩氏法。每组用3—4只动物,设多组,详细观察并汜 录动物毒性反应井进行血液学,血液生化以及病理组织学观察。有的采用 剂量递增法即—只动物一个剂量以几何级数递增,根据前个剂量的反应, 决定下—个剂量。或采用剂量累积法,同一批动物间隔一定时间、剂量由 小到大给药,观察毒性反应,同时结合血药浓度的测定,确定动物的急性 毒性反应、靶器官、中毒或致死剂量、毒性反应时的血药浓度。剂量递增 法类似于LD50测定的阶梯法(或称序贯法、上下法),适用小动物而且毒性 反应出现快的试验,10—20只动物即可测定。剂量累积法则适用大动物, 利用大约6只合格动物即可进行急性毒性试验的全面观察。另外,国外还 有采用固定剂量给药观察近似致死剂量,以决定药物毒性大小者。
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11
四、急毒试验结果评价 (一)可靠性评价
为保证急毒结果,实验条件应符合GLP的要求,供试品质量稳定, 动物合格,实验方案,实验原始记录,标准操作规程,总结报告应 符合要求。总结报告中应包括摘要、供试品、试验动物,试验环境、 给药方法、观察方法、毒性反应症状、体重变化、病理组织学变化、 雄性反应和死亡出现的时间、LD50和LD5及其可信限的计算方法、 结果讨论等。根据试验结果对急性毒性进行全面评价。
发光细菌法急性毒性实验课件
实验目的与内容
一、实验目的
1.掌握发光细菌毒性测试的标准方法; 2.根据发光细菌发光强度的变化判断
受试化合物的毒性; 3.初步了解发光细菌毒性测试的影响因素。
二、实验内容
1.发光细菌的复苏; 2.发光细菌发光强度的测定; 3.受试化合物毒性的计算。
实验目的与内容
发光细菌是一种非致病性的普通细菌,具有发光能力,在正 常条件下经培养后能发出肉眼可见的兰绿色光,这种发光过程 是细菌体内一种新陈代谢反应,是氧化呼吸链上的一个侧支。 发光细菌的发光反应模式图(1)所示。发光细菌发光反应途径可 简单概述为:
3. 仪器: 生物发光光度计,配制2或5 ml测试管,当氯化汞标
准液浓度为0.10 mg/L时,发光细菌的相对发光度为50 %,其误差不超过10%。2或5 ml 测试样品管,具标准 磨口塞,为制造比色管的玻璃料制作,由专业玻璃仪 器厂制造,分别适用于相应型号的生物放光光度计。 注射器(1 ml)、微量注射器(10 μl)、定量加液瓶(5 ml)、 吸管(2.10、25 ml)、试剂瓶(100 ml)、量桶(100、500 ml)、棕色容量瓶(50、250、1000 ml)、半微量滴定管 (配磨口试液瓶,全套仪器均为棕色,10 ml)等若干。
发光细菌的复苏 从冰箱内取出含有0.5 g 发光细菌冻干粉和氯化钠
溶液, 置于含有冰块的小号保温瓶, 用1 ml注射器吸取 0.5 ml冷的氯化钠2.0 g/100 ml溶液(适用于5ml的测试 管)或1 ml 冷的氯化钠2.5%溶液(适用于2 ml的测试管) 注入冻干粉中, 充分混匀。2 min后菌即复苏发光, 可在 暗室观察, 肉眼可见微光。备用。
简介
采用现代光电检测手段(生物发光光度计)的发光菌生物 毒性实验是毒理学中生物测定的方法之一。 该方法快速、 简便、灵敏、廉价,在有毒物质的筛选, 环境污染生物学评 价等方面有重要的意义, 因而备受各国有关研究者的关注。
PPT课件-急性中毒
9
中毒的途径
呼吸道 消化道 皮肤、粘膜 注射等途径摄人体 内。
10
中毒的原因
(1)生产性中毒 主要发生在毒物的生产、贮存、转运过程中毒 (2)生活性中毒 毒物污染了食物、水源、空气所造成的中毒 (3)自杀与投毒 因身患顽疾、情感破裂等因素所致的自我服毒 和敌视者的人为投毒。 (4)医源性中毒 医务人员在治疗患者疾患时超大剂量用药时所 致的中毒。 (5)各种恐怖性袭击 (6)误食、误服有毒动植物所致的中毒。
根据来源和用途将毒物分为以下
1.工业毒物: ①窒息性化合物 氰化物、一氧化碳、硫 化氢 等。 ②刺激性气体 氮氧化物、氨、氯等。 ③有 机化合物 甲醇、四氯化碳、苯、酚等。 ④金属、类金属及其化合物 砷、汞、鉛、钡等 。
4
根据来源和用途将毒物分为以下
1.工业毒物: ①窒息性化合物 氰化物、一氧化碳、硫 化氢 等。②刺激性气体 氮氧化物、氨、氯等。 ③有机化合物 甲醇、四氯化碳、苯、酚等。 ④金属、类金属及其化合物 砷、汞、铅、钡等 。
40
实验室检查作为辅助诊断
毒物定性定 量检查
毒物体内代谢 产物检查
毒物选择性对器官损 害的机能检查
毒物中毒 机理检查
病情严重程度评估
1
有生命危险
2
3
有症状但 尚稳定
4
症状较轻 无症状
严重且情况 不稳定
急性中毒轻重程度的判断与预测病情危重指标
中毒可产生器官损害,引起多脏器功能失常和衰 竭。如出现下列情况者,说明病人的中毒进入危重期 ,必须严密观察病情变化,积极维持机体器官的功能 : ①中枢神经系统抑制 出现昏迷、呼吸抑制、 血压下降、惊厥、抽搐。 ②肺水肿 ③严重的心律失常 ④心脏骤停 ⑤发绀 ⑥急性溶血性贫血,血红蛋白尿 ⑦急性肾衰、少尿、尿毒症 ⑧肝性脑病 ⑨烧伤、化学灼伤、眼灼伤 43
中毒的途径
呼吸道 消化道 皮肤、粘膜 注射等途径摄人体 内。
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中毒的原因
(1)生产性中毒 主要发生在毒物的生产、贮存、转运过程中毒 (2)生活性中毒 毒物污染了食物、水源、空气所造成的中毒 (3)自杀与投毒 因身患顽疾、情感破裂等因素所致的自我服毒 和敌视者的人为投毒。 (4)医源性中毒 医务人员在治疗患者疾患时超大剂量用药时所 致的中毒。 (5)各种恐怖性袭击 (6)误食、误服有毒动植物所致的中毒。
根据来源和用途将毒物分为以下
1.工业毒物: ①窒息性化合物 氰化物、一氧化碳、硫 化氢 等。 ②刺激性气体 氮氧化物、氨、氯等。 ③有 机化合物 甲醇、四氯化碳、苯、酚等。 ④金属、类金属及其化合物 砷、汞、鉛、钡等 。
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根据来源和用途将毒物分为以下
1.工业毒物: ①窒息性化合物 氰化物、一氧化碳、硫 化氢 等。②刺激性气体 氮氧化物、氨、氯等。 ③有机化合物 甲醇、四氯化碳、苯、酚等。 ④金属、类金属及其化合物 砷、汞、铅、钡等 。
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实验室检查作为辅助诊断
毒物定性定 量检查
毒物体内代谢 产物检查
毒物选择性对器官损 害的机能检查
毒物中毒 机理检查
病情严重程度评估
1
有生命危险
2
3
有症状但 尚稳定
4
症状较轻 无症状
严重且情况 不稳定
急性中毒轻重程度的判断与预测病情危重指标
中毒可产生器官损害,引起多脏器功能失常和衰 竭。如出现下列情况者,说明病人的中毒进入危重期 ,必须严密观察病情变化,积极维持机体器官的功能 : ①中枢神经系统抑制 出现昏迷、呼吸抑制、 血压下降、惊厥、抽搐。 ②肺水肿 ③严重的心律失常 ④心脏骤停 ⑤发绀 ⑥急性溶血性贫血,血红蛋白尿 ⑦急性肾衰、少尿、尿毒症 ⑧肝性脑病 ⑨烧伤、化学灼伤、眼灼伤 43
急性中毒PPT课件
(二)毒物分类
1.化学品中毒: 工业毒物:氰化物、亚硝酸盐、甲醇、乙醇中毒 农药:有机磷农药、杀鼠剂、除草剂 药物:任何药物过量,有毒药物(包括毒品) 2.生物品中毒: 微生物:葡萄球菌肠毒素、大肠杆菌肠毒素、肉毒梭菌毒素、 植物:毒蕈、乌头、马钱子、发芽马玲薯、未煮熟的四季豆、 动物:鱼胆、河豚、海蛰、毒蛇、毒虫、毒蜂等
“三大”诊断要素
1、相关毒物接触史 2、特征性中毒表现 3、实验室检查
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(一)、相关毒物接触史
14
1、集体发病
对诊断中毒最有提示价值,如有共同的毒物接触史, 尔后出现集体发病,则应首先想到并可确诊为中毒事件。 集体发病具有“五同”的特性: 在同一时间(相近) 同一地点(相邻) 同一经历(相似) 的同一人群 有同样的症状
常见的毒物:一氧化碳、氰化物、硫化氢、亚硝酸盐、 硝酸盐、杀虫脒等化学品
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3、感染性毒:
主要表现为胃肠道和全身菌毒血症的中毒症状,往往死 于感染性休克和多脏器功能衰竭, 常见毒物:细菌性食物中毒, 微生物毒素性食物中毒
4、神经性毒:
主要作用于神经系统使神经未梢失能,严重者造成胸 廓呼吸运动被抑制,伴有全身神经和肌肉麻痹,往往死于急 性呼吸衰竭。 常见的毒物:有机磷农药中毒 莨菪碱类植物 肉毒杆菌中毒 毒蛇咬伤中毒 河豚中毒 毒鼠强中毒
4、直接进入血液循环:
中毒出现的时间最快,症状最重,往往由直接静脉注射方 式或动物蛰咬伤造成
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(二)、毒理机制
1、腐蚀性毒:
主要表现为接触局部的腐蚀性损害和全身 吸收中毒症状,往往死于其后的全身并发症,
常见毒物:强酸或强碱类
2、窒息性毒:
主要表现为全身缺氧(组织细胞缺氧),往 往死于严重的低氧血症,
急性毒性实验内容
如:丙烯腈,过氧化二碳酸二环己酯
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急性毒性试验目的
了解外源化学物急性毒性的强度,求出LD50 了解外源化学物毒作用的性质、毒效应的特征
及可能的靶器官,初步评价外源化学物的危险 性。
探求外源化学物的剂量-反应(效应)关系, 为亚慢性毒性、蓄积毒性和慢性毒性及特殊毒 性试验染毒剂量的设计和观察指标的选择提供 参考。
初步了解动物致死的原因,为研究毒作用的机
制提供线索,进而为制定中毒急救治疗措施提
供依据。
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由急性毒性试验可得到两类毒性参数
上限参数 是以死亡为终点的毒性,包 括绝对致死量、半数致死量、最小致 死量、最大耐受量等;
下限参数 是以非致死性急性毒作用 为终点的毒性,包括急性阈剂量和无 作用剂量等。
适用于大、小鼠。
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烙印法: 将铸铁号码加热后,在动物体表部位烧烙,以 破坏毛囊,留下印记。适用于大动物。
挂牌法: 用金属或塑料制成号牌,固定在动物的耳部或 系于其颈部。适用于较大动物。
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实验动物分组
目的:减少个体差异对实验结果的影响;原 则:按统计学原则随机分组,使非处理因素 最大限度地保持一致,提高每组实验动物间 的均衡性。
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校正公式
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LD50的标准误
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43Βιβλιοθήκη LD50 的95 %可信限
LD50 的95 %可信限 =log-1(log LD50±1.96×Sx50)
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i—组距,即相邻两组剂量对数剂量之差
Xm—最大剂量对数 P—各剂量组死亡率(死亡率均用小数表示)
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急性毒性试验目的
了解外源化学物急性毒性的强度,求出LD50 了解外源化学物毒作用的性质、毒效应的特征
及可能的靶器官,初步评价外源化学物的危险 性。
探求外源化学物的剂量-反应(效应)关系, 为亚慢性毒性、蓄积毒性和慢性毒性及特殊毒 性试验染毒剂量的设计和观察指标的选择提供 参考。
初步了解动物致死的原因,为研究毒作用的机
制提供线索,进而为制定中毒急救治疗措施提
供依据。
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5
由急性毒性试验可得到两类毒性参数
上限参数 是以死亡为终点的毒性,包 括绝对致死量、半数致死量、最小致 死量、最大耐受量等;
下限参数 是以非致死性急性毒作用 为终点的毒性,包括急性阈剂量和无 作用剂量等。
适用于大、小鼠。
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烙印法: 将铸铁号码加热后,在动物体表部位烧烙,以 破坏毛囊,留下印记。适用于大动物。
挂牌法: 用金属或塑料制成号牌,固定在动物的耳部或 系于其颈部。适用于较大动物。
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实验动物分组
目的:减少个体差异对实验结果的影响;原 则:按统计学原则随机分组,使非处理因素 最大限度地保持一致,提高每组实验动物间 的均衡性。
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41
校正公式
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42
LD50的标准误
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43Βιβλιοθήκη LD50 的95 %可信限
LD50 的95 %可信限 =log-1(log LD50±1.96×Sx50)
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44
i—组距,即相邻两组剂量对数剂量之差
Xm—最大剂量对数 P—各剂量组死亡率(死亡率均用小数表示)
食品的测定实验急性毒性实验
食品的测定实验急性毒性实验
n 致死量的测定常以半数致死量为标准。半数致死量是指能 够引起试验动物一半死亡的剂量,妈药物致死量对数值, 用符号LD50表示。由于LD50的测定较简便、可靠,而且 稳定,现已成为标志动物急性中毒程度的重要常数。 LD50测定的方法有多种,如Bliss法、改进寇氏法、简化 机率单位法、累积插值法、机率单位-加权直线加归法等 等。以上方法虽各有特点,但都有共同的要求:
食品的测定实验急性毒性实验
n 分组完毕和各组剂量算出后,分组灌服或注射不同剂量的 受试药物。为能得到理想的结果,实验最好从中间剂量开 始,以便从最初几个剂量组动物接受药物后的反应来判断 两端剂量是否合适,便于调整剂量和组数。为了提高实验 的精确度和节省药物,受试药物可按“低比稀释法”配置。 即使每只动物的用药体积相等(0.2ml/10g),而溶质不 等。给药后逐日观察并记录中毒反应、死亡率和死亡情况。
食品的测定实验急性毒性实验
五、实验结果记录与计算
组 剂量 Logd(X) 死亡数 死亡率 P2
别 g/kg(d)
(P)
P-P2
1
2
3
4ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
食品的测定实验急性毒性实验
n 公式1: (logLD50) X50=Xm-i(ΣP-05)
n
则LD50=log-1 X50
n 公式2: Sx50=i*
n 公式3:LD50的95%可信限=lg-1(X50±1.96S X50)
n (1)动物:均选用体重17~22克健康小鼠(同次试验体 重相差不得超过4克),或选用体重120~150克(同次试 验体重相差不得超过10克)健康大鼠作实验动物。性别相 同或雌雄各半。
食品的测定实验急性毒性实验
n 致死量的测定常以半数致死量为标准。半数致死量是指能 够引起试验动物一半死亡的剂量,妈药物致死量对数值, 用符号LD50表示。由于LD50的测定较简便、可靠,而且 稳定,现已成为标志动物急性中毒程度的重要常数。 LD50测定的方法有多种,如Bliss法、改进寇氏法、简化 机率单位法、累积插值法、机率单位-加权直线加归法等 等。以上方法虽各有特点,但都有共同的要求:
食品的测定实验急性毒性实验
n 分组完毕和各组剂量算出后,分组灌服或注射不同剂量的 受试药物。为能得到理想的结果,实验最好从中间剂量开 始,以便从最初几个剂量组动物接受药物后的反应来判断 两端剂量是否合适,便于调整剂量和组数。为了提高实验 的精确度和节省药物,受试药物可按“低比稀释法”配置。 即使每只动物的用药体积相等(0.2ml/10g),而溶质不 等。给药后逐日观察并记录中毒反应、死亡率和死亡情况。
食品的测定实验急性毒性实验
五、实验结果记录与计算
组 剂量 Logd(X) 死亡数 死亡率 P2
别 g/kg(d)
(P)
P-P2
1
2
3
4ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
食品的测定实验急性毒性实验
n 公式1: (logLD50) X50=Xm-i(ΣP-05)
n
则LD50=log-1 X50
n 公式2: Sx50=i*
n 公式3:LD50的95%可信限=lg-1(X50±1.96S X50)
n (1)动物:均选用体重17~22克健康小鼠(同次试验体 重相差不得超过4克),或选用体重120~150克(同次试 验体重相差不得超过10克)健康大鼠作实验动物。性别相 同或雌雄各半。
食品的测定实验急性毒性实验
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染色法
优点: 简单方便,不痛苦,无损伤。
缺点: 时间较长时,染色剂易褪色; 标记容易模糊不清。
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耳缘孔口法:
在耳缘先用针穿孔和用剪刀剪口,再用酒精墨 汁涂抹,使黑色渗入孔口,伤口愈合后不易脱 落,这种标号亦可标号1~99。
适用于大、小鼠。
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• 初步了解动物致死的原因,为研究毒作用的机
制提供线索,进而为制定中毒急救治疗措施提
供依据。
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由急性毒性试验可得到两类毒性参数
上限参数 是以死亡为终点的毒性,包 括绝对致死量、半数致死量、最小致 死量、最大耐受量等;
下限参数 是以非致死性急性毒作用 为终点的毒性,包括急性阈剂量和无 作用剂量等。
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实验动物的年龄与体重的关系
动物
大鼠 小鼠 豚鼠 兔 犬 猫
成年年龄(周) 3 2 2 3~4 3~4 3~4
体重(克) 150 15 250 1.5kg 7~15kg 1kg
寿命(年) 2~3 2~3 6~8 4~9 15~20 10~12
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急性毒性试验的动物体重
四 3 11 16 17 20
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随机区组设计
将动物称重,按体重顺序依次排列编号,分成若 干个区组,每一区组的动物体重相近,每一区组的 动物数即为组数。再从随机数字表上任意抄下随机 数字,依次标在每个动物的编号下,如欲将动物分 为4组,则将每一区组动物编号下的随机数字,按 顺序分别用4、3、2、1除之,根据余数大小将 动物分入各组。
7
急性毒性试验项目
• 急性半数致死量测定 • 半数耐受限量测定 • 7d喂养试验 • 其他:近似致死量试验、固定剂量法、急性毒
性分级法、阶梯法、金字塔法、限量试验、急 性系统毒性试验等。
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急性毒性试验设计
▪ 实验动物选择
▪品种 ▪品系 ▪个体 性别 年龄 体重 生理病理状况
对外源化学物毒性反应与人近似; 易于饲养管理,方便实验操作; 原则 易于获得,品系纯化,价格低廉。
急性毒性试验方法
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1
一、急性毒性
急性毒性指人或动物一次或24 h之 内多次接触外源化学物后,在短期内 所发生的毒性效应,包括致死效应。
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2
一次:指瞬间给实验动物染毒,如经 口、经静脉注射染毒。 24 h之内多次:指外源化学物毒性过 低,需给予动物较大剂量。
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3
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实验动物的标记
➢ 染色法 ➢ 耳缘孔口法 ➢ 烙印法 ➢ 挂牌法
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13
染色法
用不同颜色的染料涂擦于动物不同部位来 表示不同号码,适用于大鼠、小鼠和豚鼠。 常用染料: 3%~5%苦味酸酒精饱和液,呈黄色; 甲基紫酒精饱和液,呈紫色; 0.5%中性红或品红溶液,呈红色等。
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实验动物的标记
方法一:
6
按右前肢、右肋、右后肢、颈部、背中、尾根、左
前肢、左肋、左后肢,顺序编号为1~9号,不染色
为10号。在动物相同部位涂染另一种颜色染料表示
十位,两种颜色可编1~99号。
方法二:
以头部为1号,顺时针方向依次从右耳、右前肢、右
后肢、颈部、背中、尾根、左耳、左前肢、左后肢
急性毒性效应出现的快慢和毒性反应的强度与外 源化学物的性质和染毒剂量的大小有关。
如:丙烯腈,过氧化二碳酸二环己酯
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4
急性毒性试验目的
• 了解外源化学物急性毒性的强度,求出LD50
• 了解外源化学物毒作用的性质、毒效应的特征 及可能的靶器官,初步评价外源化学物的危险 性。
• 探求外源化学物的剂量-反应(效应)关系,为 亚慢性毒性、蓄积毒性和慢性毒性及特殊毒性 试验染毒剂量的设计和观察指标的选择提供参 考。
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6
用小动物试验可求出外源化学物对一种或几种 实验动物的急性LD50或LC50; 用大动物试验可求出近似致死剂量 (approximate lethal dose, ALD);
根据LD50(LC50)值可进行急性毒性分级,以 初步评价外源化学物对机体急性毒性大小和急性
毒作用的强度。
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• 大鼠 120~150g
• 小鼠 18~22g
• 豚鼠 200~250g
• 家兔 2~2.5 kg
• 犬 10~15kg(成年)
• 变异范围不得超过所用动物平均体重
的10%。
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急性毒性试验的动物要求
• 动物数量:小动物4~6组,每组至 少10只;犬等大动物每组6只。 • 性别:雌雄各半,也有例外,如,致 畸试验的剂量准备,只作雌性动物 LD50。 • 年龄:刚成年,未曾受孕、交配
常用方法:完全随机和随机区组
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20
完全随机设计
将实验动物编号,从随机数字表上任意横行或 纵行的任意数字开始,顺序取下数字,标于每个 动物号下,然后用计划组数去除随机数字,所得 余数即为所属组别。如将20只动物分为4组, 从随机数字表的第11行开始,顺序取20个数 字,用4除的余数即为组别。
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21
20只动物的完全随机分配
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22
完全随机分配后各组所属动物号
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23
20只动物完全随机分配的结果
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20只动物的完全随机分配
动物编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 随即数字 54 83 80 53 90 75 53 78 93 47 72 09 54 66 95 44 68 67 67 86 除4后余数 2 3 0 1 2 3 1 2 1 3 0 1 2 2 3 0 0 3 3 2 所属组别 二 三 四 一 二 三 一 二 一 三 四 一 二 二 三 四 四 三 三 二
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烙印法: 将铸铁号码加热后,在动物体表部位烧烙,以 破坏毛囊,留下印记。适用于大动物。
挂牌法: 用金属或塑料制成号牌,固定在动物的耳部或 系于其颈部。适用于较大动物。
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实验动物分组
目的:减少个体差异对实验结果的影响;原则: 按统计学原则随机分组,使非处理因素最大限度地 保持一致,提高每组实验动物间的均衡性。
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完全随机分配后各组所属动物号
组别动Βιβλιοθήκη 编号一4 7 二1 59 12 8 13 20 14
三 2 6 10 15 18 19
四 3 11 16 17
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20只动物完全随机分配的结果
组别
动物编号
一 4 7 9 12 19
二1 三2
5 8 13 14 6 10 15 18