Boc和Fmoc保护氨基酸与M树脂和王氏树脂结合率的比较
多肽知识——精选推荐
多肽知识徐建明整理◎多肽的保存多肽在-20℃很稳定,特别是冷冻干燥并保存在干燥器中,在将它们暴露于空气之前,冷冻干燥多肽可以放于室温。
这将是湿度影响减少,当无法冷冻干燥时,最好的方法是以小的工作样量存放。
对于含Cys, Met orTrP的多肽,脱氧缓冲剂对其溶解必不可少,因为这种多肽可易空气氧化,在封瓶前,慢慢流过多肽的氮气或氩气也会降低氧化作用。
含Gln或Asn的多肽也容易降解,所有这些肽与不含这些有问题解苷的那些肽相比,生命期有限。
◎多肽的溶解性大多数肽的首选溶剂是超纯抽气水。
稀乙酸或氨水分别对于碱性或酸性多肽的溶解很重要。
这些方法不溶的多肽,需要DMF、脲、guanidiniam chloride或acetonitnle来溶解,这些溶剂可能某些实验有副作用。
所以我们建议设计多肽时要加注意。
残基Ala, Cys , Ile, Leu, Met, Phe和V al将全增加多肽的溶解难度。
您需要特殊的多肽或任何技术帮助,请随时与我们联系。
我们包你完全满意,对于我们不能适当合成的顺序,我们不收费。
◎多肽的保存和操作包装1mg或更少的多肽按净重包装,声明的小瓶重不含相关抗离子和水。
例如,氨基酸分析决定的肽含量是80%,在1mg样品中,那么瓶中毛重是1.25mg。
大量的多肽以毛重算。
标出的重量含相关抗离子和水,例如,25mg样品中肽百分比为90%,那么,实际肽量为25mg×90%=22.5mg不要把肽含量和纯度搞混了。
肽的纯度可能是100%,而肽含量相关带电基团(如Arg, Lys )的抗离子量和肽亲水性决定。
这是合成肽的本身特性。
◎冻干肽的保存所有产品应存于冰箱,最好为-20℃。
多数肽以此方法可以存放几年不变。
◎肽溶液的保存溶液肽远比冻干形式不稳定,溶液应为中性pH(pH5-7), -20℃保存的,为避免样品的反复冻融,最好分成小样存放。
一份样品融冻后未用完,应扔掉,细菌降解有时会成为溶液肽的麻烦,为克服此,肽应溶于无菌水,或肽溶液用0.2μ M滤膜过滤。
碳酸酯把手改构Wang树脂及其性能
碳酸酯把手改构Wang树脂及其性能张也;吴为辉;宗良;董俊军【摘要】基于碳酸酯结构易于亲核脱除的原理,使用氯甲酸氯甲酯改构Wang树脂,并探究了改构树脂与首位氨基酸的缩合效率.实验结果表明,改构后的Wang树脂与20种Fmoc保护氨基酸均能达到70%以上的缩合效率;且对于带有较大侧链基团的Fmoc保护氨基酸,通过降低树脂取代度或延长反应时间可提高其连接率.为了验证改构后的碳酸酯型树脂在裂解时侧链未受到影响,设计合成了3种模型肽,并用温和裂解剂3-吡啶甲醛肟铯盐进行裂解.实验结果表明,利用改构树脂能得到侧链全保护的肽片段,可初步应用到长链困难肽的合成中.【期刊名称】《高等学校化学学报》【年(卷),期】2019(040)003【总页数】6页(P462-467)【关键词】Wang树脂改构;碳酸酯把手;Fmoc氨基酸;侧链全保护肽【作者】张也;吴为辉;宗良;董俊军【作者单位】陆军防化学院学员五大队研究生队;化学防护系,北京102205;化学防护系,北京102205;化学防护系,北京102205【正文语种】中文【中图分类】O629.7自20世纪60年代以来, 多肽固相合成(SPPS)已取得突飞猛进的发展[1], 随着长链困难肽和小蛋白领域的研究越来越受到关注[2], 固相合成中合成长度受限[3]、产率和纯度不高[4]、困难序列难以合成[5]及成本昂贵[6]等诸多问题已成为人们关注的热点. 研究发现, 通过合成侧链全保护肽可以特异地连接活性基团, 从而降低副反应、延长肽链或得到特异性结构[7,8], 此途径是合成长肽、困难肽的新方法[2,9]. 合成侧链全保护肽的关键在于树脂的选择[10]. 目前, 基于得到侧链全保护肽片段的理念, 已设计出一些新型树脂[11], 如2-氯三苯甲基氯树脂(CTC树脂)[12]可以合成侧链全保护肽, 尤其是在合成环肽上有很好的效果. 但文献[13]研究结果表明, CTC树脂会在酸性缩合剂存在的情况下发生裂解[12], 过夜反应中产物损近60%. 基于合成侧链全保护肽的目的选择树脂, 关键在于树脂把手(Linker)的选择[14]. 把手的功能基团将决定随后组装目标化合物的反应类型、保护基形式及最后的裂解反应类型[15]. 首先, 把手的引入使多肽与把手形成的键比原来的苄酯键更稳定[16,17]. 其次, 把手上基团的电子效应可以调节肽链与载体形成的化学键对酸、碱及光照等切割条件的敏感度, 避免接肽过程中肽链的过早脱落及切割反应中使用强酸引起的副反应, 以期获得完全自由或部分保护的肽片段. 再次, 把手的空间隔离作用在相当程度上增加了肽链与载体的相容性, 有利于缩合反应的进行[17].本文基于碳酸酯结构易于亲核脱除的原理, 对目前广泛使用且价格便宜的Wang树脂进行改构, 设计了一种氯甲基碳酸酯型把手. 氯甲基碳酸酯的把手可将羟基型树脂变为氯甲基型树脂, 使其连接效率更高, 同时碳酸酯的结构可以在强亲核、弱碱条件下裂解而侧链保护基不受影响, 实现了获得侧链全保护肽片段的目的[18]. 在此基础上, 采用合成的系列侧链全保护肽片段, 通过片段缩合得到长肽(见Scheme 1), 突破了固相肽合成中存在的难题.Scheme 1 Illustration of carbonate-handle-modified Wang resin application改构树脂运用到肽链的合成中, 关键在于3个方面: (1) 树脂可以与首位氨基酸连接;(2) 树脂在反应过程中能稳定存在; (3) 反应结束后可以将目标产物温和裂解并保证侧链保护基不受影响. 制得改构树脂后, 对其性能进行了研究. 通过9-芴甲氧羰基(Fmoc)浓度标准曲线探究了改构树脂与20种Fmoc保护氨基酸的首位连接效率, 并进行了条件优化. 另外, 综合考虑实验效果、侧链保护情况和合成时间等因素, 初步设计合成了3种模型肽: (1) Fmoc-Ile-Phe-Gly(P1), 无侧链保护基, 可以验证改构树脂合成、裂解肽链的方法; (2) Boc-Lys(Z)-Ala-Asn(Trt)-OH(P2), 只有两端的氨基酸有侧链保护基, 因为多肽两端的氨基酸更容易在把手裂解时受影响; (3) Fmoc-Thr(tBu)-Glu(OtBu)-Lys(Z)(P3), 3个氨基酸分别带有—OH, —NH2和—COOH侧链保护基. 3个模型肽的设计各有侧重, 即无侧链保护、两端侧链保护和侧链全保护, 从3个层面验证新把手的适应性. 在3个模型肽中, 包含了多肽固相合成中常用的6个侧链保护基: Fmoc, Boc, tBu, OtBu, Trt和Z. 通过3个模型肽的合成和裂解反应验证了新型把手与常用侧链保护基的兼容性, 其中Fmoc在碱性条件下易脱除, 而亲核性的肟盐类裂解试剂本质上也是一种弱碱, Fmoc基团在裂解时能否稳定存在, 对新型把手的性能评价至关重要. 通过对其进行合成和裂解, 可以判断基于改构树脂能否得到侧链全保护的多肽.1 实验部分1.1 试剂与仪器Fmoc-氨基酸(纯度96%)和Wang树脂(负载量1.1 mmol/g)购于上海吉尔生化有限公司; 氯甲酸氯甲酯购于萨恩化学技术公司; 碳酸铯、 3-吡啶甲醛和一水合氢氧化铯购于多点化学试剂公司; 二氯甲烷(DCM)、 N,N-二甲基甲酰胺(DMF)和哌啶等试剂购于上海国药集团化学试剂有限公司; 实验室用水为纯水或超纯水. 实验所用试剂均为分析纯.SHKE2000型高性能摇床(美国Barnestad International公司); Heidolph 4600型旋转蒸发仪(德国Heidolph公司); JA-N2103N型电子天平(上海民桥精密科学仪器有限公司); UV-754型紫外分光光度计(上海紫一试剂厂); SynthwareP130010C型多肽合成管和P120025C型多肽合成管(北京欣维尔玻璃仪器公司); LCMSD-1100型液相色谱-质谱仪(美国Agilent公司).1.2 氯甲酸氯甲酯改构Wang树脂经过前期模拟实验研究, 选取吡啶作为敷酸剂, 利用氯甲酸氯甲酯改构Wang树脂, 并确定最优反应条件. 称取1 g(1.2 mmol/g) Wang树脂置于三口瓶中, 加入15 mL DCM, 缓慢搅拌溶胀2 h; 将89 μL(1 mmol)氯甲酸氯甲酯和96 μL(1.2 mmol)吡啶分别溶于5 mL DCM中, 缓慢滴入三口瓶中, 冰浴下缓慢搅拌反应4 h. 反应过程中需注意反应体系保证无水干燥, 并定时用DCM冲洗瓶壁上的树脂, 保证完全反应.反应结束后, 将反应液移入固相反应器中, 依次用DMF, DCM和DMF间隔洗涤4次后, 真空干燥过夜(12 h), 得到产物1.089 g, 产率96.7%. 利用下式计算得到改构树脂的取代度(SD1).(1)式中, 产率为初始取代度; m1为树脂用量; m0为初始树脂用量; m2为反应后增量; 为产物理论增量. 经计算得到改构树脂的取代度为1.065 mmol/g.1.3 改构树脂与首位氨基酸连接改构树脂与首位氨基酸的连接效率取决于氨基酸种类、树脂取代度和反应时间等因素. 将改构树脂利用铯盐法连接首位氨基酸, 利用Fmoc浓度法计算氨基酸的上载率[8].Fmoc浓度工作曲线的绘制: 取17 mg(0.05 mmol)氨基Fmoc保护的缬氨酸(Fmoc-Val-OH), 加入1 mL体积分数为20%的哌啶/DMF溶液, 置于摇床上反应30 min. 反应结束后, 用无水甲醇定容至50 mL, 再稀释10倍. 分别取稀释后的溶液1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8和9 mL定容至10 mL配成系列浓度梯度的标准溶液. 标准溶液分别与空白对照, 测定其在301 nm处的紫外吸收值. 吸光度与浓度数据如表1所示.Table 1 Concentration-absorbance data of FmocConcentra tion/(mmol·L-1)Abs.Concentration/(mmol·L-1)Abs.0.01000.1490.06000.6720.02000.2960.07000.7770.03000.3920.08000. 8720.04000.4710.09000.9850.05000.5680.10001.051改构树脂与Fmoc氨基酸连接: 先用甲醇和N,N-二异丙基乙胺(DIEA)封闭改构树脂未改构的位点. 取0.05 mmol封闭后的改构树脂加入5 mL DCM中, 置于摇床上溶胀2 h; 取0.2 mmol氨基酸溶于无水甲醇中, 加入0.15 mmol CS2CO3超声反应5 min, 生成氨基酸的碳酸铯盐; 旋转蒸发除去溶剂, 用5 mL DMF复溶, 将其加入到改构树脂中, 于摇床上反应2 h, 重复加料反应1次. 反应结束后, 加入1 mL 体积分数为20%的哌啶/DMF, 于摇床上裂解30 min. 分离出裂解液定容至50 mL, 再稀释10倍得到样品. 将体积分数为20%的哌啶/DMF溶液稀释500倍作为空白样品, 于301 nm波长下测定样品的吸光度值.根据测得的吸光度值计算首位氨基酸连接率[c(%)]:c(%)=cFmoc×0.001×500/m0×SD1×100%(2)式中: cFmoc为由Fmoc标准曲线计算得到的Fmoc浓度; 500为稀释倍数; SD1为改构后树脂的取代度. 对20种氨基酸按照上述方法分别进行实验并计算结果. 1.4 模型肽的合成为测试改构树脂的效果, 运用固相合成法合成了3种模型肽P1, P2和P3.1.4.1 模型肽的合成改构前、后的Wang树脂的活性基团不同, 故首位氨基酸上载的方式随之变化. 经过模拟实验的探索, 确定采用铯盐法上载首位氨基酸[16], 即将氨基酸与碳酸铯反应生成氨基酸铯盐, 再与把手反应从而连接到树脂上.由于P1, P2和P3的合成方法相似, 故选择Fmoc-Ile-Phe-Gly-O-Linker(P1)为例描述其合成: 将0.5 g(1.065 mmol/g)改构树脂置于25 mL多肽合成器中, 加入DCM溶胀2 h, 抽滤DCM洗涤3次. 取654.1 g(2.2 mmol)甘氨酸(Fmoc-Gly-OH)充分溶解于20 mL甲醇中, 加入(1 mmol 0.325 g) CS2CO3后立即有气泡产生, 超声5 min至反应完全. 将氨基酸铯盐溶液减压蒸除溶剂后, 用20 mL DMF溶解, 加入固相反应器中, 于摇床上反应2 h后, 重复加料1次. 反应结束后, 抽除反应液, 用DMF和甲醇间隔洗涤树脂3次. 加入10 mL 20%哌啶/DMF溶液脱除Gly保护基, 分别反应10和20 min各1次, 抽滤, 依次用DMF, DCM和DMF各10 mL交替洗涤3次. 用毛细管沾取少量树脂进行Kaiser检测, 于100 ℃油浴中加热5 min, 发现树脂变蓝, 证明第一个氨基酸成功偶联.后续氨基酸按照Fmoc法的一般方法接入: 取0.778 g苯丙氨酸(Fmoc-Phe-OH)、0.568 g(0.15 mmol)苯并三氮唑-N,N,N,N-四甲基异脲六氟化磷(HBTU)、 0.203g(0.15 mmol)1-羟基苯并三唑(HOBT), 溶于20 mL DMF中, 加入0.49 mL(0.15 mmol)DIEA活化5 min后, 加入固相反应器中, 于摇床上反应2 h. 偶联结束后, 除去溶剂, 依次用DMF, DCM和DMF各10 mL交替洗涤3次. 用毛细管沾取少量树脂进行Kaiser检测, 直至不变蓝确定反应完全. 脱保护后, 采用同样的方法接入第3个氨基酸.1.4.2 模型肽的裂解以合成侧链全保护的肽片段为目的, 参照文献[19]方法使用温和型裂解剂3-吡啶甲醛肟铯盐裂解改构树脂.3-吡啶甲醛肟的制备: 将3.213 g(30 mmol)3-吡啶甲醛和3.129 g(45 mmol)盐酸羟胺溶于50 mL水中, 加入3.690 g(45 mmol)乙酸钠, 室温下搅拌1 h. 停止反应后, 静置0.5 h, 过滤, 用滤液洗涤滤饼2次. 将滤液置于冰箱中冷藏3 h后, 再次过滤, 合并2次滤饼, 经干燥得3.384 g产物, 产率92.2%.3-吡啶甲醛肟铯盐的制备: 将2.085 g(17 mmol)3-吡啶甲醛充分溶解于50 mL甲醇中, 加2.722 g(17 mmol)入氢氧化铯, 油浴下回流反应4 h. 反应结束后, 冷却至室温, 过滤, 得到淡黄色固体, 干燥后称重为4.380 g, 产率97%.模型肽的裂解: 取508 mg 3-吡啶甲醛肟铯盐加入30 mL DMF中, 超声溶解制成浓度为0.1 mmol/L的裂解液(pH=8). 分别取5 mL裂解液, 加入500 mg干燥的P1, P2和P3中, 常温下搅拌12 h. 将反应液分别抽滤至锥形瓶中, 滤液用柠檬酸调节pH=6, 静置10 min后, 用乙酸乙酯萃取3次, 饱和食盐水洗涤3次, 用无水硫酸钠干燥过夜; 过滤除去干燥剂, 减压蒸除溶剂得到粗品肽. 对粗品肽用高效液相色谱(HPLC)纯化, 色谱条件: 梯度洗脱, 流速2 mL/min, V(甲醇)∶V(水)=70∶30. 用紫外检测仪在301 nm处检测Fmoc基团, 收集出峰产品, 进行液相色谱-质谱检测.2 结果与讨论2.1 氨基酸种类对连接率的影响将20种常见氨基酸分别按照上述方法与改构树脂反应3次, 计算连接率并取平均值, 结果列于表2. 可见, 改构把手均可用于20种氨基酸. 通过与文献[20]报道的Wang树脂与首位氨基酸的连接率进行比较, 可得到以下结论: (1) 氯甲基碳酸酯改构树脂和Wang树脂在与氨基酸连接时均主要受到氨基酸侧链基团大小的影响, 侧链基团越大, 空间位阻较大, 连接率下降. (2) Wang树脂与部分氨基酸的连接效率非常低, 尤其是侧链基团较大的Arg, 连接率仅为52%, 但此类氨基酸改构把手的连接率高于与Wang树脂的连接率. 这是因为改构后的树脂连接了氯甲基碳酸酯的把手, 把手越长, 相当于拓宽了化学反应的空间, 与氨基酸反应的空间位阻相应减小, 对于位阻较大的氨基酸更有利. (3) 甲基氯与羧基反应效率大于羟基与羧基的反应, 因此总体上氯甲基碳酸酯把手树脂与保护氨基酸的连接效率更高, 但对于部分氨基酸, 其氨基酸的铯盐在DMF中的溶解度有限, 导致连接效率降低,Table 2 Connection rate of modified resin to 20 kinds of amino acidsAminoacidConnection rate(%)Amino acidConnection rate(%)Fmoc-Val-OH93.2Fmoc-Thr(tBu)-OH84.9Fmoc-pro-OH89.1Fmoc-Asn(Trt)-OH77.0Fmoc-Leu-OH92.0Fmoc-Trp(Boc)-OH80.3Fmoc-Ile-OH92.3Fmoc-Asp(otBu)-OH84.2Fmoc-Met-OH90.5Fmoc-Tyr(tBu)-OH82.1Fmoc-Phe-OH88.7Fmoc-Glu(otBu)-OH81.9Fmoc-Ala-OH94.0Fmoc-Cys(Trt)-OH78.5Fmoc-Gly-OH95.3Fmoc-Gln(Trt)-OH75.3Fmoc-Arg(Pbf)-OH65.0Fmoc-His(Trt)-OH70.2Fmoc-Lys(Boc)-OH80.3Fmoc-Ser(tBu)-OH86.2例如His.对于连接效率较低的精氨酸, 针对树脂取代度和反应时间等因素进行了优化实验, 结果如表3所示. 可见, 随着取代度的降低, 侧链基团较大的氨基酸与改构树脂的连接率增高, 结合肽合成实际综合考虑, 确定取代度约0.4 mmol/g为最优条件. 同时, 随着反应时间的延长, 连接率先上升后趋于平稳, 因此确定最优时间为3 h.Table 3 Effects of resin substitution degree and reaction time on connection rateSubstitution degree/(mmol·g-1)Yield(%)Reactiontime/hYield(%)1.0665.6265.00.8470.8372.10.4372.3471.40.2272.0571.82.2 模型肽的合成经过模型肽的合成和裂解, 对得到的目标肽进过了HPLC纯化和液相色谱-质谱检测. 结果表明, P1的相对分子量为557.6368, 峰位置m/z 557, 对应产物为Fmoc-Ile-Phe-Gly-OH; P2的相对分子量为527.6108, 峰位置m/z 530.9, 对应产物为Boc-Lys(Z)-Ala-Asn(Trt)-OH+Na+; P3的相对分子量为845.0213, 峰位置m/z 844.4, 对应产物为Fmoc-Thr(tBu)-Glu(OtBu)-Lys(Z)-OH. 由此可确认, 在合成过程中改构树脂能够在弱碱性亲核裂解剂的作用下得到侧链全保护的肽片段.3 结论利用氯甲酸氯甲酯改构Wang树脂, 进一步采用碳酸铯盐法将改构后的树脂与20种常用的Fmoc氨基酸进行首位连接, 在较小的树脂取代度和较长的反应时间下, 均能获得70%以上的连接率. 结果表明, 改构后的树脂可以用于固相多肽合成. 通过3种不同模型肽的设计、合成和裂解反应, 验证了改构树脂能够合成侧链全保护的肽片段, 为长链困难肽的合成提供了一种新的技术和方法.参考文献【相关文献】[1] Merrifield R. 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多肽合成研究进展
多肽合成研究进展曲朋;宋利;赵好冬;胡学生;孙佳明;张辉【摘要】多肽是一类生物活性很高的物质.本文从化学合成和生物合成两个方面综述了多肽的合成,介绍了固相合成、液相分段合成法、施陶丁格连接、天然化学连接、光敏感辅助基连接、可去除辅助基连接、化学区域选择连接、氨基酸的羧内酸酐(NCA)法、组合化学法、酶解法、基因工程法、发酵法等合成方法的原理及其优缺点,对多肽合成方法的发展及其中药资源领域的应用进行了展望,为相关研究提供参考.【期刊名称】《中国现代中药》【年(卷),期】2015(017)003【总页数】6页(P285-289,295)【关键词】多肽;合成;进展【作者】曲朋;宋利;赵好冬;胡学生;孙佳明;张辉【作者单位】长春中医药大学,吉林长春130117;长春中医药大学,吉林长春130117;长春中医药大学,吉林长春130117;长春中医药大学,吉林长春130117;长春中医药大学,吉林长春130117;长春中医药大学,吉林长春130117【正文语种】中文多肽是一类介于氨基酸和蛋白质之间的物质,由一种或多种氨基酸按照一定的排列顺序通过肽键结合而成。
已发现存在于生物体内的多肽达数万种。
多肽是一种蛋白质的结构片段,能起到蛋白质的活性基团作用,是人体新陈代谢、调节活动的重要物质。
通过研究多肽的结构与功能之间的关系,进而了解多肽中各氨基酸系列的功能。
在进行化合物的设计时,尽可能选择短肽,以便提高其生理活性,并且减少临床不良反应。
在美国FDA1999年允许大豆蛋白制品标注可以预防心血管疾病的功能之后,随着人们对多肽中各氨基酸系列功能了解的不断深入及多肽药物和保健品的持续高速发展、多肽合成技术的日益成熟,越来越多的活性多肽已被开发并广泛应用于医药领域,多肽药物的开发越来越受到人们的重视,其市场需求也在日益增加。
本文对近年来多肽的合成方法与研究进展进行综述[1-5]。
多肽的合成主要分为两条途径:化学合成和生物合成。
多肽的固相合成法研究进展
多肽合成主 要 分 为 全 化 学 合 成 与 酶 促 肽 键 合 成。全 化 学合成又分为液 相 多 肽 合 成 与 固 相 多 肽 合 成。近 年 固 相 多 肽 合 成 占 主 导 地 位, 这 主 要 是 由 于 它 运 用 了 洗 涤、 过滤等分 离技术来纯化反 应 中 间 体 和 最 终 产 物。传 统 的 液 相 多 肽 合 成既麻烦又费时, 而固相多肽合成作为一种日趋成熟的技术 越来越受到关注。 ; 多肽合成基本原理 先将多肽中不需 要 反 应 的 氨 基 或 羧 基 用 适 当 的 保 护 基 保护起来, 进行 藕 联 反 应。肽 链 如 需 继 续 延 长, 则可以通过 合适的试剂选择性的脱去 ) 端或 * 端保护基, 然后同新的 ) 保护氨基酸 (或肽) 或 * 保护氨基酸 (或肽) 藕联, 直至得到目 的肽链。 < 多肽合成发展简史 !$ 世纪初 K7:9A5< 首 次 合 成 具 有 特 定 序 列 的 多 肽。 .L-M 年 N7(’5&EB 合成了催产素, 此后化学合成活性多肽领域进入 蓬勃发展时期。.L#2 年 O5<<76754B 以树脂作为固相载体, 成功
boc固相合成和fmoc固相合成的区别boc固相合成fmoc固相合成树脂类型聚苯乙烯等聚苯乙烯聚酰胺等反应基团的导入形成苯酯或甲基二苯甲基胺聚烷氧苯基酯烷氧苄基胺保护基bocfmoc侧链保护基bocbuotbubzltosotbutrtpbf保护试剂tfach2clhatuhbtutbtu肽链切落试剂hftfa切落过程清除剂苯甲醚硫醇硅烷固相多肽合成中常用的树脂经过多年的发展合成肽的树脂已经有很多种
[:] 除反应过程中的 烷 化 作 用 。肽链切落后过滤, 在滤液中加
图!
"#$% 树脂
王树脂合成肽机理
王树脂合成肽机理引言肽是由氨基酸通过肽键连接而成的生物大分子,在生物体内具有重要的生理功能和药理活性。
合成肽的方法有很多种,其中王树脂合成肽是一种常用且有效的方法。
本文将详细介绍王树脂合成肽的机理。
王树脂合成肽的原理王树脂是一种固相合成肽的载体,它的特点是具有高的反应活性和良好的稳定性。
合成肽的过程中,首先将一端修饰了保护基的氨基酸与王树脂上的活性基团发生缩合反应,将氨基酸连接到载体上。
然后,通过去保护基和缩合反应的交替进行,逐步将其他氨基酸加入到肽链中。
最后,通过适当的方法从载体上将合成好的肽分离出来。
王树脂合成肽的步骤1.预处理王树脂:将王树脂与适当的溶剂进行搅拌,使其膨胀,然后用碱性溶液进行清洗,去除表面的杂质。
将王树脂与活性基团进行缩合反应,形成活性载体。
2.修饰氨基酸:将氨基酸的一端修饰为保护基,常用的保护基有BOC、Fmoc等。
修饰后的氨基酸具有较好的溶解性和稳定性。
3.缩合反应:将修饰了保护基的氨基酸与活性载体发生缩合反应。
缩合反应一般是通过活化剂催化进行的,常用的活化剂有DCC、HATU等。
在缩合反应中,保护基起到保护氨基酸的作用,防止与其他氨基酸发生非特异性反应。
4.去保护基:通过酸或碱的作用,去除氨基酸上的保护基。
去保护基后,氨基酸上的氨基重新获得活性,可以继续参与下一步的缩合反应。
5.重复缩合反应:重复以上步骤,逐步将其他氨基酸加入到肽链中。
每次缩合反应后,都要进行去保护基的步骤,以保证肽链的正常延长。
6.分离纯化:合成完毕后,通过适当的方法将合成好的肽从王树脂上分离出来。
常用的方法有酸解法、碱解法、酶解法等。
王树脂合成肽的优点1.反应条件温和:合成肽的过程中,反应条件一般较温和,不会对活性基团和氨基酸产生不可逆的破坏。
2.产率高:王树脂合成肽的产率较高,能够得到较纯的产物。
3.反应时间短:王树脂合成肽的反应时间相对较短,可以在较短的时间内完成合成。
4.可重复使用:王树脂具有良好的稳定性,可以反复使用,节约成本。
BOC保护氨基与脱保护
3. 常见的烷基类氨基保护基 三苯甲基(Trt) 、2,4-二甲氧基苄基(Dmb) 对甲氧基苄基(PMB) 、苄基(Bn)
氨基保护基的选择策略
选择一个氨基保护基时,必须仔细考虑到所有的反应物,反 应条件及所设计的反应过程中会涉及的底物中的官能团。
对水较为敏感的氨基衍生物,采用Boc2O/TEA/MeOH or DMF 在40-50℃下进行较好。有空间位阻的氨基酸而言, 用Boc2O/Me4NOH.5H2O/CH3CN是十分有利的。
1.2.2 叔丁氧羰基的引入示例(一)
NH2 COOH
Boc2O
NaOH, t-BuOH, H2O 78%
NHBoc COOH
MeO OMe NH COOMe
S ynth. C om m un.; 1989, 3139-3142.
BocHN
S iO 2, h e atin g TB S O Tf, Lutidine
H 2N
G
N
Z nB r2 , C H 2C l2
G N
R
ZnB r2, R S H , C H 2C l2
R
➢ 还要从电子和立体的因素去考虑对保护的生成和去除速率的选 择性
➢ 如果难以找到合适的保护基,要么适当调整反应路线使官能团 不再需要保护或使原来在反应中会起反应的保护基成为稳定的; 要么重新设计路线,看是否有可能应用前体官能团(如硝基 等);或者设计出新的不需要保护基的合成路线。
第一部分: 烷氧羰基类氨基保护基
➢ 中性条件TBSOTf/2.6-lutidine 的组合或ZnBr2/CH2Cl2 也可对BOC很好的脱除。如果底物对叔丁基碳正离子特 别敏感,也可以ZnBr2/CH2Cl2体系中加碳正离子清除剂
fmoc法和boc法
Fmoc法(9-氟米基氯甲酰酰胺法)和Boc法(tert-丁氧羰甲酰酰胺法)都是固相合成中的两种常用的保护基策略,用于合成多肽和蛋白质。
1. Fmoc法(9-氟米基氯甲酰酰胺法):•原理: Fmoc法使用9-氟米基氯甲酰酰胺(Fmoc-Cl)或其衍生物作为保护基。
这个方法基于Fmoc的氨基保护作用,可以在多肽合成中选择性地保护氨基(氨基酸的N-末端)。
它的主要特点是易于去除,通常使用碱性溶液(例如,弗洛伊尔溶液,piperidine)来去除Fmoc保护基。
•优点:–Fmoc氨基保护基容易去除,不需要强酸。
–Fmoc反应比较温和,适用于多肽和蛋白质的合成。
–反应条件适中,适合用于自动多肽合成。
•缺点:–Fmoc法在反应条件下对半胱氨酸和组胺等特定氨基酸不够稳定,需要额外的保护策略。
–Fmoc法需要使用含氰基化合物的底物,这些底物需要谨慎处理。
2. Boc法(tert-丁氧羰甲酰酰胺法):•原理:Boc法使用tert-丁氧羰甲酰酰胺(Boc-ON)或其衍生物来保护氨基,通常在氨基酸合成的开始阶段添加Boc保护基,然后使用强酸(通常是三氟甲磺酸,TFA)来去除它。
•优点:–Boc氨基保护基比较稳定,适用于多肽合成的早期阶段。
–Boc反应适用于多种氨基酸,不需要额外的保护策略。
•缺点:–Boc法在去除保护基时需要使用强酸(TFA),这可能对某些实验室条件造成腐蚀性影响。
–去除Boc保护基后,残留的TFA需要彻底去除,以避免对生物分子产生影响。
选择使用Fmoc法还是Boc法通常取决于合成的具体需求和合成策略。
有时也会采用混合策略,根据需要在合成过程中切换不同的氨基保护基。
这两种方法都在固相合成和化学生物学中发挥着关键作用。
多肽固相合成—Fmoc法与Boc法
多肽固相合成—Fmoc法与Boc法
多肽合成是一个重复添加氨基酸的过程,固相合成顺序一般从C 端(羧基端)向N端(氨基端)合成。
过去的多肽合成是在溶液中进行的,称为液相合成法。
现在多采用固相合成法,从而大大的减轻了每步产品纯化的难度。
为了防止副反应的发生,参加反应的氨基酸的侧链都是被保护的,而羧基端是游离的,并且在反应之前必须活化。
多肽化学合成方法有两种,即Fmoc合成法和Boc合成法。
Boc合成法
Boc合成法是采用TFA(三氟乙酸)可脱除的Boc(叔丁氧羰基)为α-氨基保护基,侧链保护采用苄醇类。
合成时将一个Boc氨基酸衍生物共价交联到树脂上,用TFA脱除Boc,用三乙胺中和游离的氨基末端,然后通过DCC活化,偶联下一个氨基酸,最终脱保护多采用HF法或TFMSA(三氟甲磺酸)法。
用Boc法已成功地合成了许多生物大分子,如活性酶、生长因子、人工蛋白等。
在Boc合成法中,反复地用酸来脱保护,这种处理带来了一些问题:如在肽与树脂的接头处,当每次用50%TFA脱Boc基时,有约1.4%的肽从树脂上脱落,合成的肽链越长,这样的损失越严重;此外,酸处理会引起侧链的一些副反应,Boc合成法尤其不适于合成含有色氨酸等对酸不稳定的肽类。
Fmoc合成法
与Boc合成法的根本区别在于采用了碱可脱除的Fmoc(9-芴甲氧羰基)为α-氨基的保护基,侧链的保护采用TFA可脱除的叔丁氧基等,树脂采用90%TFA可切除的对烷氧苄醇型树脂,最终的脱保护避免了强酸处理。
多肽固相合成中2-CTC树脂首位氨基酸连接效率影响因素的研究
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多肽知识
氨基、羧基、侧链的保护及脱除
要成功合成具有特定的氨基酸顺序的多肽,需要对暂不参与 形成酰胺键的氨基和羧基加以保护,同时对氨基酸侧链上的活性 基因也要保护,反应完成后再将保护基因除去。同液相合成一样, 固相合成中多采用烷氧羰基类型作为α氨基的保护基,因为这样 不易发生消旋。最早是用苄氧羰基,由于它需要较强的酸解条件 才能脱除,所以后来改为叔丁氧羰基(BOC)保护,用TFA(三 氟乙酸)脱保护,但不适用含有色氨酸等对酸不稳定的肽类的合 成。changMeienlofer和Atherton等人采用Carpino报道的 Fmoc(9-芴甲氧羰基)作为α氨基保护基,Fmoc基对酸很稳定,但 能用哌啶-CH2CL2或哌啶-DMF脱去,近年来,Fmoc合成法得到 了广泛的应用。羧基通常用形成酯基的方法进行保护。甲酯和乙 酯是逐步合成中保护羧基的常用方法,可通过皂化除去或转变为 肼以便用于片断组合;叔丁酯在酸性条件下除去;苄酯常用催化 氢化除去。
对于合成含有半胱氨酸、组氨酸、精氨酸等带侧链功能基的 氨基酸的肽来说,为了避免由于侧链功能团所带来的副反应,一 般也需要用适当的保护基将侧链基团暂时保护起来。保护基的选 择既要保证侧链基团不参与形成酰胺的反应,又要保证在肽合成 过程中不受破坏,同时又要保证在最后肽链裂解时能被除去。如 用三苯甲基保护半胱氨酸的S-,用酸或银盐、汞盐除去;组氨酸 的咪唑环用2,2,2-三氟-1-苄氧羰基和2,2,2-三氟-1-叔丁氧羰基乙 基保护,可通过催化氢化或冷的三氟乙酸脱去。精氨酸用金刚烷 氧羰基(Adoc)保护,用冷的三氟乙酸脱去。 固相中的接肽反应原理与液相中的基本一致,将两个相应的 氨基被保护的及羧基被保护的氨基酸放在溶液内并不形成肽键, 要形成酰胺键,经常用的手段是将羧基活化,变成混合酸酐、活 泼酯、酰氯或用强的失去剂(如碳二亚氨)形成对称酸酐等方法 来形成酰胺键。其中选用DCC、HOBT或HOBT/DCC的对称酸酐 法、活化酯法接肽应用最广。
多肽合成方法科普
多肽合成方法科普多肽合成是指通过化学方法将氨基酸分子按照特定的顺序连接起来形成多肽链的过程。
多肽合成方法包括固相合成和液相合成两种主要方法。
以下将详细介绍这两种方法以及它们的优缺点。
一、固相合成方法(Solid-phase peptide synthesis,SPPS)固相合成方法是目前多肽合成中最常用的方法之一、这种方法利用聚合物固相材料作为载体,在上面逐步进行氨基酸的化学反应,最终形成多肽链。
固相合成方法的步骤如下:1. 首先在聚合物固相材料上固定一个保护基团,常见的保护基团有Fmoc(9-氟芴甲酰氨基),Boc(正丁氧羰基)等。
2.将保护基团暴露出来,使之暂时解除保护,连接第一个氨基酸的氨基到固相材料上。
3.通过反应剂将氨基酸连接到固相材料上,形成肽键。
反应剂一般为活化剂,如DCCI(二乙基氨基甲酰氯)等。
4.让制得的肽链继续暴露出下一个氨基酸的保护基团,再次与上述步骤中的第3步相同的方式来连接下一个氨基酸。
5.重复步骤3和步骤4,直到合成完整的多肽。
固相合成方法的优点:1.可以方便地控制肽链的长度和序列,灵活性很高。
2.高化学纯度,少数杂质的污染程度较低。
3.可以合成较长的多肽。
固相合成方法的缺点:1.比较复杂且需要多个步骤进行,合成周期较长。
2.合成规模的限制,只能合成尺寸较小的多肽。
3.一些氨基酸可能会出现降解。
二、液相合成方法(Liquid-phase peptide synthesis,LPPS)液相合成方法是另一种常用的多肽合成方法,该方法在溶液中逐步进行氨基酸的化学反应,最终形成多肽链。
液相合成方法的步骤如下:1.首先需要选择合适的保护基团,将氨基酸的羧基和氨基保护起来。
2.将保护基团暴露出来,使之暂时解除保护,连接第一个氨基酸。
3.将制得的肽链反应溶液与新的氨基酸反应,形成肽键。
4.重复步骤2和步骤3,直到合成完整的多肽。
液相合成方法的优点:1.可以合成大尺寸的多肽。
2.合成速度较快,合成周期较短。
Fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展
Fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展摘要:综述了各种用于Fmoc法肽合成赖氨酸的正交保护方法,这些保护方法对多肽的化学修饰起着十分重要的作用。
介绍了各种正交保护赖氨酸的合成、脱除方法及在肽合成中的应用实例,分析了各种保护基的特点、相互间的互补性及不足之处。
关键词:正交保护;肽合成;赖氨酸1963年,Merrifield创立了固相多肽合成法〔1〕,从此以各种保护氨基酸为原料的固相合成研究及其应用引起了人们的广泛关注。
今天,固相合成法得到了很大发展。
正交保护是指在一定条件下,分子中的一组保护基可被选择性地脱除,而其他保护基不受影响〔2〕。
一般情况下,正交保护是指基于机理之间的区别,例如半永久性和临时性保护基之间的区别,而且正交保护策略一般能提供较温和的反应条件。
Lys中的ε氨基碱性很强,同时具有亲核作用。
Fmoc策略中,Boc基团是比较好的保护基团,对碱的稳定性好,可以有效抑制副反应的发生。
赖氨酸是双氨基的氨基酸,同时Lys一般也是进行化学修饰的位点,这时需要特殊的保护基团,一般使用Alloc〔3〕、Dde〔4〕、ivDde〔5〕等进行正交保护。
1Dde保护的赖氨酸Dde保护基团在肽合成中主要用于保护伯胺,它是由2乙酰基5,5二甲基1,3环己二酮在DMF溶液中形成的〔6〕。
由于它易于被2%肼/DMF溶液脱除和在TFA和哌啶溶液中相对稳定,所以Dde保护的赖氨酸在Fmoc/tBu肽合成策略中用于合成支链肽、环肽和侧链氨基修饰的肽。
1.1FmocLys(Dde)OH的合成FmocLys(Dde)OH的合成方法较多。
由于醛酮和伯胺反应生成含碳氮双键的亚胺(西佛碱),亚胺在稀酸中水解,又回到原来的羰基化合物及胺,可以用这一机理来保护赖氨酸中的ε氨基。
PrasadS.Raje等〔7〕报道用茴香醛在碱性条件下和赖氨酸形成西佛碱临时性地保护ε氨基,然后选择Fmoc保护α氨基。
稀酸水解西佛碱去除ε氨基保护,最后选择保护基保护ε氨基。
经济实用的Boc保护氨基酸键合氯甲基树脂的方法研究
标肽的 C 端为没有侧链保护的残基如 Ala, Gly, Leu, Ile, Phe, Tyr, Ser, Thr, Val 时可以用本文的条件进行与氯甲 基树脂键合. 随后的序列组装完全可以用 Fmoc 保护的 氨基酸进行手工或仪器合成. 这样兼顾了 Boc 与 Fmoc 两种方式的优势, 使固相肽合成变得更经济、可行.
采用“一锅法”制备 Boc 保护氨基酸树脂: 用 K2CO3 代替文献中常用的较昂贵的铯盐, 并在反应时, 加入少量 KI 催化使反应更容易进行. 反应所用的溶剂 DMF 为市售分析纯, 无需处理.
10.0 g 氯甲基树脂(取代度为 0.53 mmol/g)经上述方 法处理后的增重(∆W), 氮含量及平均转化率结果见表 1.
·研究简报·
有机化学
Chinese Journal of Organic Chemistry
Vol. 27, 2007 No. 4, 536~540
经济实用的 Boc 保护氨基酸键合氯甲基树脂的方法研究
韩 香 龚 喜 杨潇骁 王德心*
(中国医学科学院中国协和医科大学药物研究所 北京 100050)
摘要 在固相多肽合成中, 探索一种经济有效的 Boc 保护氨基酸键合氯甲基树脂的方法. 采用 K2CO3/KI 作为键合试剂, 一步合成产物, 反应条件为: Boc 保护氨基酸 2.5 倍量, K2CO3 2.5 倍量, KI 0.01 倍量, 氯甲基树脂 1.0 倍量, 普通 DMF 作反应溶剂, 70 ℃空气浴中旋转反应 25 h. 考察了 28 种不同结构的氨基酸底物在此条件下与氯甲基树脂的键合收率, 大多数氨基酸都能得到几乎定量的酯化产率. 并选取了不同空间位阻的 4 种 Boc 保护氨基酸, 比较了 KOH, Cs2CO3, TEA/KI, DCHA/KI, DIPA/KI, Cs2CO3/KI 和 K2CO3/KI 等不同键合条件对收率的影响. 结果表明, 除 Boc-Asn-OH 外, K2CO3/KI 条件与 Cs2CO3/KI 的效果大体相同, 但 K2CO3/KI 更为经济、可行. 关键词 Boc 保护氨基酸; 氯甲基树脂(Merrifield 树脂); 固相合成; 多肽
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420
有机化学
H2N—AA—M树脂的制备
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酬一Rh一盔一。:n,
O—cs+人反应瓶中,加入l 3 mL重蒸DMF和 l 599 Imd的M树脂(交换当量:0.7 IIlll谳e/E)和7 mLⅣ一甲基吡咯烷酮,充人氮气,密封,50℃,磁力 搅拌反应3lh。接着按下述步骤洗涤:①分别用 DMF,DMF:H20(7:3),DMF各洗三次,每次2面n;② DMF:H20(9:1),DMF:10%醋酸(9:1),DMF:H20(9: 1)各洗三次,每次2血n;③DMF洗5次,前3次每次 2miIl。后两次各次5 Hun;④DcM洗5次,前两次每 次2min,后3次每次5血n。真空干燥,恒重。得 B0c—AA—M树脂样品,分别称重并取样做脱帽处 理后测自由氨基。
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万方数据
氨基酸与树脂的结合产物即Fnm—AA一王氏树
脂和H2N一从一王氏树脂进行比较,其中Frmc—
Plle一王氏树脂(56.1%)和H2N—P11e一王氏树脂 (56.3%)的结合率的差值最小,为o.2%。而FITm— cly一王氏树脂和H2N—ay一王氏树脂的结合率差 值最大,为2.7%。在Boc策略中,差值最小和最大 的分别是B0c—Phe—M树脂(90.o%)与H2N— Phe—M树脂(89.2%)(差值为o.8%)以及B0c— G1y—M树脂(9 O 4%)与H2 N—Gly—M树脂 (87.8%)(差值为2.6%)。该结果表明两种方法测 得的结合率十分吻合。这表明重量法也是测定结合 率的可行方法之一,而且重量法更方便,易行。仅需 准确称出树脂的投料量和合成产物的重量,就可求 出实际交换当量和结合率。而水杨醛法操作步骤较 为烦琐,且需要特制的装置。
P}Ie一0一cs+按下列程序合成:将10 mL蒸馏水加人 反应瓶中,再加入2.o nmDl csHc鸭,pH 9 o,尔后
加lo rnL甲醇,混匀,再将1.88 rnmol Boc一从一oH
加入反应瓶,pH 7.O,反应释放c02。然后再加1.O Ⅱml c棚c03,pH 8.O~9.0,反应10删n,直至无c02 放出,保持pH 8—9.o。最后减压除去甲醇,得到的
多肽的固相合成有叔丁氧羰基(B0c)和芴甲氧 羰基(nnoc)两种Ⅳ端保护策略。在c一端羧基肽 的合成中,第一个Ⅳ一端保护氨基酸与树脂的结合 率的多少直接影响最终合成目的肽的产量。在Boc 策略中,c一端羧基肽合成常采用的树脂的功能基 团为氯代甲基衍生物,与Boc保护氨基酸的羧酸盐 反应,形成酯键,将第一个保护氨基酸附着到树脂 上H-。而Ffrloc策略中,多采用的树脂功能基为羟
样品冷冻干燥,获白色B0c一从一O—cs+于粉。
P}Ie—M树脂按下列步骤脱帽:取约45 nlg B0c—AA —M树脂,加DcM提泡30Ⅱlin,洗三次。再加50% Ⅱ、A,48%DcM,2%苯甲醚(v:v:v)液处理5 mill,20 谢n两次。K茧se T如£阳性。DMF洗三次,DCM洗5
次,每次2Ⅱ曲,真空干燥恒重。得H2N一从一M树
c一端羧基肽的合成中,第一个保护氨基酸与 树脂酯化的结合率测定,对指导第二个保护氨基酸 的投料量具有十分重要的意义。国内一般采用水杨 醛法测定自由氨基来确定实际交换当量,并据此求 出结合率。本研究比较了重量法测定Ⅳ端保护氨 基酸一树脂结合率和水杨醛法测定相应脱帽产物结
合率,其结果(见%k 1)表明:n,10c策略中,每种
R:Side chaln of锄ine acid
P:W虮g化s.n
张志刚等
C11inese Joumal 0f O曙a工lic CheⅡis时
421
l材料与方法 1.1材料
csHcO,,Ⅳ一甲基吡咯烷酮,FIrm苯丙氨酸
(nnoc—Phe—OH),Fnloc甘氨酸(FrIloc—Gly—OH),
nI琳亮氨酸(F抵一ku—oH),王氏树脂(w噼
形+[(肼×形)×(MⅣj一盯W2)/1000]
肼:树脂的交换当量 形:树脂的重量 肘矽l:B0c(或Frnoc)氨基酸的分子量
^邢2:H20的分子量或B0c(或Fnm)基团分子
量和cscl(或H20)分子量之和。
422
有机化学
2结果 2.1重量法及水杨醛法测定结合率的比较
采用重量法测定B0c一从一M树脂和hm—
1.4 B0c—AA—M树脂脱帽[4] 将Boc—ku—M树脂,B0c—Glv—M树脂和B0c 万方数据
耽:B0c(或F瑚oc)氨基酸一树脂重量 Ⅳt:树脂重量 加他:B0c(或nnoc)氨基酸分子量 M臃:cscl(或H20)的分子量
理论交换当量的计算公式是
理论交换当量(mmole/g)= 丝!里
B0c—AA—O—cs+与M树脂酯化产物Boc一从一M
树脂和相应脱帽产物H2N—AA—M树脂两者结合 率的均值进行比较,结果见Tablel:B0c—ku一0一一 Cs+与M树脂,fhoc—Leu—OH与王氏树脂酯化产 物的结合率分别为87,3%和44.2%;B0c—ay—O一一 cs+与M树脂,nnoc—Glv—OH与王氏树脂酯化产 物结合率分别为89.1%和30.4%;B0c—Phe—o一一 cs+与M树脂。Frnoc—Phe—OH与王氏树脂酯化,其 结合率分别为89 6%和56.2%。
脂,水杨醛法¨1测定每克氨基酸一树脂的自由氨基, 求H2N—Phe—M树脂的交换当量。
1.5 Fhm—AA一王氏树脂的制备及脱帽 按照张志刚等的方法、60合成FⅡm—ku一王氏
树脂,FInoc—Gly一王氏树脂和F概一P11e一王氏树
脂及脱帽。王氏树脂(o.56 Imde/g或1蛐mle/g): Fmoc—AA一0H:Dcc:DMAP摩尔比为1:3:4:1。其 中合成nnoc—Phe一王氏树脂时反应18h取样一 次,其他合成反应均48h停止反应。脱帽样品用水 杨醛法测定自由氨基。
(1岫抽船。,胁,柳n鲫1憎G砌n脯ⅧE矗&螗8,爿,oD,凸此H)
AI,stmd ne yieIds of tfle attachⅡ1ent of Boc一工^le—O—cs+,B0c—cJy—O—cs+or B0c—Phe—O—cs+(1.2
。qv.)toM盯rmeld瑚i11(1.O eqv)for 31 hoursis 87 3%,89.1%or 89 6%(山e mean values 0f出0se detected by
AA一树脂的实际交换当量。水杨醛法测定H2N— AA—M树脂和H2N—AA一王氏树脂的实际交换当 量,并据此计算结合率。结果见Table 1。
三种氨基酸中每种氨基酸两种策略合成产物用 重量法和水杨醛测得的结合率的最大差值不超过
2.7%。
2.2保护氨基酸与王氏树脂和M树脂结合率的比 较
将每种FInoc—AA—oH与王氏树脂酯化结合生 成的nTm—AA一王氏树脂及脱帽后相应的H2N— AA一王氏树脂两种产物的结合率取均值与各相应
基,与FInoc保护的氨基酸的羧基进行酯化使第一个 F’Ⅱm氨基酸与羟基树脂结合【2J。为了了解两种机 制中,保护氨基酸与树脂的结合,以便选择适当的 合成策略为合成c一端羧基肽提供依据.本研究比 较了三种B0c氨基酸铯盐和三种nmc氨基酸分别 与M树脂和王氏树脂的结合率。
化学反应式如下:
1 R批eivedl999—07—28;Revisedl999—10—28;Accep州1999一11—25 广西区科技厅攻关项目基金资助。 1现 万在方桂数林医 据学院生化教研室工作。
3讨论 DMF和DcM是肽固相合成中常用溶剂,尤其是
DMF对作用物和产物均具有溶解度高的优点而被 广泛应用多种反应系统中l“。但是,DMF对Dcc— DMAP催化的羟基树脂与hm氨基酸的成酯反应 有抑制作用。相反,DcM在成酯反应中对Dcc— DMAP催化的反应系统则是良好的溶剂_6J。故此, 本实验Frnoc策略中Dcc—DMAP系统采用DcM为 溶剂。